To prove the buffering contribution of mitochondria to the increase of intracellular $Ca^{2+}$ level ($[Ca^{2+}]_i$) via background nonselective cation channel (background NSCC), we examined whether inhibition of mitochondria by protonophore carbonylcyanide m-chlorophenylhydrazone (CCCP) affects endothelial $Ca^{2+}$ entry and $Ca^{2+}$ buffering in freshly isolated rabbit aortic endothelial cells (RAECs). The ratio of fluorescence by fura-2 AM ($R_{340/380}$) was measured in RAECs. Biological state was checked by application of acetylcholine (ACh) and ACh ($10{\mu}M$) increased $R_{340/380}$ by $1.1{\pm}0.15$ ($mean{\pm}S.E.$, n=6). When the external $Na^+$ was totally replaced by $NMDG^+$, $R_{340/380}$ was increased by $1.19{\pm}0.17$ in a reversible manner (n=27). $NMDG^+$-induced $[Ca^{2+}]_i$ increase was followed by oscillatory decay after $[Ca^{2+}]_i$ reached the peak level. The increase of $[Ca^{2+}]_i$ by $NMDG^+$ was completely suppressed by replacement with $Cs^+$. When $1{\mu}M$ CCCP was applied to bath solution, the ratio of $[Ca^{2+}]_i$ was increased by $0.4{\pm}0.06$ (n=31). When $1{\mu}M$ CCCP was used for pretreatment before application of $NMDG^+$, oscillatory decay of $[Ca^{2+}]_i$ by $NMDG^+$ was significantly inhibited compared to the control (p<0.05). In addition, $NMDG^+-induced$ increase of $[Ca^{2+}]_i$ was highly enhanced by pretreatment with $2{\mu}M$ CCCP by $320{\pm}93.7$%, compared to the control ($mean{\pm}S.E.$, n=12). From these results, it is concluded that mitochondria might have buffering contribution to the $[Ca^{2+}]_i$ increase through regulation of the background NSCC in RAECs.
Lysophosphatidylcholine (LPC), which accumulates in atherosclerotic arteries, has been reported to inhibit endothelium-dependent relaxation (EDR) in many different species. However, the underlying mechanism of LPC-induced inhibition of EDR is still uncertain. In the present study, we measured simultaneously both isometric tension and cytosolic free $Ca^{2+}$ ($[Ca^{2+}]_i$) in rabbit carotid strips, and examined the effect of LPC on tension and $[Ca^{2+}]_i$. In carotid strips with intact-endothelium, high $K^+$ (70 mM) increased both tension and $[Ca^{2+}]_i$, and cumulative addition of acetylcholine (ACh) from 0.1 to $10{\mu}M$ induced dose dependent increase of $[Ca^{2+}]_i$ with concomitant relaxation. In the presence of L-NAME (0.1 mM), ACh increased $[Ca^{2+}]_i$ without affecting the amplitude of high $K^+-induced$ tension. These ACh-induced change of $[Ca^{2+}]_i$ and tension was abolished by removal of endothelium or 10 nM 4-DAMP (muscarinic receptor antagonist) pretreatment. Pretreatment of LPC ($10{\mu}M$) inhibited ACh ($10{\mu}M$)-induced change of tension and $[Ca^{2+}]_i$ in endothelium-intact carotid artery. On the other hand, LPC had no effect on ACh-induced change of tension and $[Ca^{2+}]_i$ in endothelium denuded artery. In $Ca^{2+}$-free external solution, ACh transiently increased $[Ca^{2+}]_i$, and pretreatment of LPC significantly inhibited ACh-induced transient $[Ca^{2+}]_i$ change. Based on the above results, it may be concluded that LPC inhibits the ACh-induced $[Ca^{2+}]_i$ change through inhibition of $Ca^{2+}$ mobilization in vascular endothelial cells, resulting in decreased production of NO and concomitant inhibition of endotheliumdependent vascular relaxation.
Effects of oxidized low-density lipoprotein (ox-LDL), $1-{\alpha}-stearoyl-lysophosphatidylcholine$ (LPC), on intracellular $Ca^{2+}$ concentration were examined in mouse endothelial cells by measuring intracellular $Ca^{2+}$ concentration $([Ca^{2+}]_i)$ with fura 2-AM and reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR). LPC increased $[Ca^{2+}]_i$ under the condition of 1.5 mM $[Ca^{2+}]_o$ but did not show any effect under the nominally $Ca^{2+}-free$ condition. Even after the store depletion with $30{\mu}M$ 2,5-di-tert- butylhydroquinone (BHQ) or $30{\mu}M$ ATP, LPC could still increase the $[Ca^{2+}]_i$ under the condition of 1.5 mM $[Ca^{2+}]_o.$ The time required to increase [$Ca{2+}$]i (about 1 minute) was longer than that for ATP-induced $[Ca^{2+}]_i$ increase $(10{\sim}30\;seconds).$ LPC-induced $[Ca^{2+}]_i$ increase was completely blocked by $1{\mu}M\;La^{3+}.$ Transient receptor potential channel(trpc) 4 mRNA was detected with RT-PCR. From these results, we suggest that LPC increased $[Ca^{2+}]_i$ via the increase of $Ca^{2+}$ influx through the $Ca^{2+}$ routes which exist in the plasma membrane.
Park, Sung-Jin;Kim, Byung-Joo;Zhu, Mei-Hong;So, In-Suk;Kim, Ki-Whan
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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제9권6호
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pp.341-346
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2005
The mechanism underlying oxidant-induced intracellular $Ca^{2+}$ ($[Ca^{2+}]_i$) increase was studied in cultured bovine aortic endothelial cells (BAECs) using fura-2 AM. In the presence of 2 mM extracellular $Ca^{2+}$, the application of DTBNP ($20{\mu}M$), a membrane-permeable oxidant, caused an increase in $[Ca^{2+}]_i$, and DTT (2 mM) as a reductant completely reversed the effect of DTBNP. The $[Ca^{2+}]_i$ increase induced by DTBNP was also observed in an extracellular $Ca^{2+}$-free/2 mM EGTA solution, indicating the release of $Ca^{2+}$ from intracellular store(s). After endoplasmic reticulum was depleted by an $IP_3$-generating agonist, ATP ($30{\mu}M$) or an ER $Ca^{2+}$ pump inhibitor, thapsigargin ($1{\mu}M$), DTBNP-stressed BAECs showed an increase of $[Ca^{2+}]_i$ in $Ca^{2+}$-free/2 mM EGTA solution. Ratio-differences before and after the application of DTBNP after pretreatment with ATP or thapsigargin were $0.42{\pm}0.15$ and $0.49{\pm}0.07$, respectively (n=7), which are significantly reduced, compared to the control value of $0.72{\pm}0.07$ in a $Ca^{2+}$-free/2 mM EGTA solution. After the protonophore CCCP ($10{\mu}M$) challenge to release mitochondrial $Ca^{2+}$, the similar result was obtained. Ratio-difference before and after the application of DTBNP after pretreatment with CCCP was $0.46{\pm}0.09$ (n=7). Simultaneous application of thapsigargin and CCCP completely abolished the DTBNP-induced $[Ca^{2+}]_i$ increase. The above results together indicate that the increase of $[Ca^{2+}]_i$ by DTBNP resulted from the release of $Ca^{2+}$ from both endoplasmic reticulum and mitochondria.
Kim, Moon-Young;Liang, Guo-Hua;Kim, Ji-Aee;Choi, Soo-Seung;Choi, Shin-Ku;Suh, Suk-Hyo
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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제13권1호
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pp.27-32
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2009
The effects of oxidized low-density lipoprotein(OxLDL) and its major lipid constituent lysophosphatidylcholine(LPC) on $Ca^{2+}$ entry were investigated in cultured human umbilical endothelial cells(HUVECs) using fura-2 fluorescence and patch-clamp methods. OxLDL or LPC increased intracellular $Ca^{2+}$ concentration($[Ca^{2+}]_i$), and the increase of $[Ca^{2+}]_i$ by OxLDL or by LPC was inhibited by $La^{3+}$ or heparin. LPC failed to increase $[Ca^{2+}]_i$ in the presence of an antioxidant tempol. In addition, store-operated $Ca^{2+}$ entry(SOC), which was evoked by intracellular $Ca^{2+}$ store depletion in $Ca^{2+}$-free solution using the sarcoplasmic reticulum $Ca^{2+}$ pump blocker, 2, 5-di-t-butyl-l,4-benzohydroquinone(BHQ), was further enhanced by OxLDL or by LPC. Increased SOC by OxLDL or by LPC was inhibited by U73122. In voltage-clamped cells, OxLDL or LPC increased $[Ca^{2+}]_i$ and simultaneously activated non-selective cation(NSC) currents. LPC-induced NSC currents were inhibited by 2-APB, $La^{3+}$ or U73122, and NSC currents were not activated by LPC in the presence of tempol. Furthermore, in voltage-clamped HUVECs, OxLDL enhanced SOC and evoked outward currents simultaneously. Clamping intracellular $Ca^{2+}$ to 1 ${\mu}M$ activated large-conductance $Ca^{2+}$-activated $K^+(BK_{ca})$ current spontaneously, and this activated $BK_{ca}$ current was further enhanced by OxLDL or by LPC. From these results, we concluded that OxLDL or its main component LPC activates $Ca^{2+}$-permeable $Ca^{2+}$-activated NSC current and $BK_{ca}$ current simultaneously, thereby increasing SOC.
Lysophosphatidylcholine (LPC) is a major phospholipid component of oxidized low-density lipoprotein (ox-LDL) and is implicated in its atherogenic activity. This study investigated the effects of LPC on cell viability, intracellular calcium homeostasis, and the protective mechanisms of chlorogenic acid (CGA) in human umbilical vein endothelial cells (HUVECs). LPC increased intracellular calcium ($[Ca^{2+}]_i$) by releasing $Ca^{2+}$ from intracellular stores and via $Ca^{2+}$ influx through store-operated channels (SOCs). LPC also increased the generation of reactive oxygen species (ROS) and decreased cell viability. The mRNA expression of Transient receptor potential canonical (TRPC) channel 1 was increased significantly by LPC treatment and suppressed by CGA. CGA inhibited LPC-induced $Ca^{2+}$ influx and ROS generation, and restored cell viability. These results suggested that CGA inhibits SOC-mediated $Ca^{2+}$ influx and ROS generation by attenuating TRPC1 expression in LPC-treated HUVECs. Therefore, CGA might protect endothelial cells against LPC injury, thereby inhibiting atherosclerosis.
Although arginase primarily participates in the last reaction of the urea cycle, we have previously demonstrated that arginase II is an important cytosolic calcium regulator through spermine production in a p32-dependent manner. Here, we demonstrated that rhaponticin (RPT) is a novel medicinal-plant arginase inhibitor and investigated its mechanism of action on Ca2+-dependent endothelial nitric oxide synthase (eNOS) activation. RPT was uncompetitively inhibited for both arginases I and II prepared from mouse liver and kidney. It also inhibited arginase activity in both aorta and human umbilical vein endothelial cells (HUVECs). Using both microscope and FACS analyses, RPT treatments induced increases in cytosolic Ca2+ levels using Fluo-4 AM as a calcium indicator. Increased cytosolic Ca2+ elicited the phosphorylations of both CaMKII and eNOS Ser1177 in a time-dependent manner. RPT incubations also increased intracellular L-arginine (L-Arg) levels and activated the CaMKII/AMPK/Akt/eNOS signaling cascade in HUVECs. Treatment of L-Arg and ABH, arginase inhibitor, increased intracellular Ca2+ concentrations and activated CaMKII-dependent eNOS activation in ECs of WT mice, but, the effects were not observed in ECs of inositol triphosphate receptor type 1 knockout (IP3R1-/-) mice. In the aortic endothelium of WT mice, RPT also augmented nitric oxide (NO) production and attenuated reactive oxygen species (ROS) generation. In a vascular tension assay using RPT-treated aortic tissue, cumulative vasorelaxant responses to acetylcholine (Ach) were enhanced, and phenylephrine (PE)-dependent vasoconstrictive responses were retarded, although sodium nitroprusside and KCl responses were not different. In this study, we present a novel mechanism for RPT, as an arginase inhibitor, to increase cytosolic Ca2+ concentration in a L-Arg-dependent manner and enhance endothelial function through eNOS activation.
외부 자극에 의해 세포 내 $Ca^{2+}$이 증가하면 $K^{+}$이 유출되는 기전을 통해 세포 외 $K^{+}$이 증가하는데, 이 $K^{+}$ 의 증가가 혈관 수축에 미치는 영향을 규명하고자 쥐 대동맥 혈관내피세포를 이용해 실험을 시행하였다. 대상 및 방법: 세포 외 $K^{+}$ 농도를 증가시키거나, 혈관 내피세포의 제거, nitric oxide 생성 억제제인 L-NAME (N-nitro-L-arginine methyl ester)의 투여, $Na^{+}$- $K^{+}$ pump 억제제인 Ouabain, $Na^{+}$-C $a^{2+}$ exchanger 억제제인 N $i^{2+}$의 투여 등 조건을 달리하며, 막전압고정법을 이용, $Ca^{2+}$ 변화와 여러 이온 전류 변화를 측정해 혈관의 수축성을 알아보았다. 결과: 세포외 $K^{+}$ 농도를 6에서 12 mM 증가시켜도 norepinephrine에 의한 혈관의 수축성에는 변화가 없었고, 12 mM 상으로 증가시키면 평활근이 수축하기 시작하였다. Acetylcholine (ACh)에 의해 유발된 내피세포 의존성 이완은 세포 외 $K^{+}$ 농도를 6에서 12 mM로 증가시키면 억제되었으며, 혈관내피세포를 제거하거나 L-NAME을 투여하는 경우에 ACh에 의한 이완은 일어나지 않았다. 배양한 쥐 대동맥 내피세포에서는 ATP혹은 ACh에 의해 세포 내 $Ca^{2+}$이 증가하였으며, 세포 내 $Ca^{2+}$ 증가가 정점에 이른 후 세포 외 $K^{+}$을 6에서 12 mM로 증가시키면 세포 내 $Ca^{2+}$이 농도 의존적으로 감소하였으나 다시 6 mM로 감소시키면 세포 내 $Ca^{2+}$이 증가하였다. 또한 세포 외 $K^{+}$ 증가에 의한 내피세포 의존성 이완효과는 Ouabain과 N $i^{2+}$에 의하여 억제되었다. 걸론 세포 외 $K^{+}$의 증가는 저항혈관 평활근은 이완시키며, 혈관내피세포 $Ca^{2+}$을 감소시켜 내피세포 의존성 이완을 억제하는데 이는 $Na^{+}$- $K^{+}$ pump와 $Na^{+}$-C $a^{2+}$exchanger를 활성화시켜 일어나는 것으로 생각된다.
Taurine is the most abundant free amino acid in the retina and transported into retina via taurine transporter (TauT) at the inner blood-retinal barrier (iBRB). In the present study, we investigated whether the taurine transport at the iBRB is regulated by oxidative stress or disease-like state in a conditionally immortalized rat retinal capillary endothelial cell line (TR-iBRB) used as an in vitro model of iBRB. First, [$^3H$]taurine uptake and efflux by TR-iBRB were regulated in the presence of extracellular $Ca^{2+}$. [$^3H$]Taurine uptake was inhibited and efflux was enhanced under $Ca^{2+}$ free condition in the cells. In addition, oxidative stress inducing agents such as tumor necrosis factor-$\alpha$ (TNF-$\alpha$), lipopolysaccharide (LPS), diethyl maleate (DEM) and glutamate increased [$^3H$]taurine uptake and decreased [$^3H$]taurine efflux in TR-iBRB cells. Whereas, 3-morpholinosydnonimine (SIN-1), which is known to NO donor decreased [$^3H$]taurine uptake. Lastly, TR-iBRB cells exposed to high glucose (25 mM) medium and the [$^3H$]taurine uptake was reduced about 20% at the condition. Also, [$^3H$]taurine uptake was decreased by cytochalasin B, which is known to glucose transport inhibitor. In conclusion, taurine transport in TR-iBRB cells is regulated diversely at extracellular $Ca^{2+}$, oxidative stress and hyperglycemic condition. It suggested that taurine would play a role as a retinal protector in diverse disease states.
The present study were designed to characterize the action mechanisms of acetylcholine (ACh)-induced endothelium-dependent relaxation in arteries precontracted with high $K^+$(70 mM). For this, we simultaneously measured both muscle tension and cytosolic free $Ca^{2+}$ concentration $([Ca^{2+}]_i)$, using fura-2, in endothelium-intact, rabbit carotid arterial strips. In the artery with endothelium, high $K^+$ increased both $[Ca^{2+}]_i$ and muscle tension whereas ACh $(10{\mu}M)$ significantly relaxed the muscle and increased $[Ca^{2+}]_i$. In the presence of $N^G$-nitro-L-arginine (L-NAME, 0.1 mM), ACh increased $[Ca^{2+}]_i$ without relaxing the muscle. In the artery without endothelium, high $K^+$ increased both $[Ca^{2+}]_i$ and muscle tension although ACh was ineffective. 4-DAMP (10 nM) or atropine $(0.1{\mu}M)$ abolished ACh-induced increase in $[Ca^{2+}]_i$ and relaxation. The increase of $[Ca^{2+}]_i$ and vasorelaxation by ACh was siginificantly reduced by either $3{\mu}M$ gadolinium, $10{\mu}M$ lanthanum, or by $10{\mu}M$ SKF 96365. These results suggest that in rabbit carotid artery, ACh-evoked relaxation of 70 mM $K^+$-induced contractions appears to be mediated by the release of NO. ACh-evoked vasorelaxation is mediated via the $M_3$ subtype, and activation of the $M_3$ subtype is suggested to stimulate nonselective cation channels, leading to increase of $[Ca^{2+}]_i$ in endothelial cells.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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