The objective of this study was to identify the fermentation characteristics of Bacillus thuringiensis and emetic, non-emetic Bacillus cereus using analytical profile index (API) test. Ten strains of B. thuringiensis and 10 strains of B. cereus including 3 strains of emetic type were used at the same concentrations. The differences of fermentation characteristics between the B. thuringiensis and B. cereus was not obvious, but the differences between the non-emetic and emetic B. cereus were distinctive. Seven among 50 substrates were negative for all non-emetic B. cereus strains and positive for all emetic strains, and three substrates among additional 12 substrates had the same tendency. From these differences, 3 emetic B. cereus strains were not indicated as B. cereus by API test. These results indicate that API test is not a suitable method to identify some strains of emetic B. cereus, and the distinctive differences in substrate utilization can be used to improve selective media.
The objective of this study was to develop a differential medium with improved selectivity for the isolation of Bacillus cereus. Mannitol egg yolk polymyxin medium supplemented with D-galactose allowed the differentiation of diarrheal- and emetic-type B. cereus through pH monitoring. The pH of the medium decreased significantly when incubating the emetic-type B. cereus, whereas the pH change was not significant when incubating the diarrheal-type. The addition of pH indicators, such as methyl red and phenol red, to the medium allowed visual differentiation between diarrheal- and emetic-type B. cereus. A solid agar medium was also developed by optimizing the concentrations of medium components such as monosaccharides, agar, egg yolk enrichment, pH indicators, and antibiotics. This study indicates the possibility of applying selective media for the differentiation of diarrheal- and emetic-type B. cereus.
쌀밥의 미생물 안전성을 평가하기 위하여 쌀을 취반한 후 세균을 분석하였다. 전국에서 생산되는 생쌀 30개를 수집하여 취반 후에 중온성 호기성균과 MYP선택배지에서 Bacillus cereus group를 분리 동정하여 그의 분포도와 독소유전자를 분석하였다. 취반 직후의 쌀밥 27%에서 1-3 log CFU/g정도의 총 중온성 호기균과 거의 같은 정도로의 Bacillus spp.가 존재하는 것으로 나타났다. 그러나 균이 검출되지 않은 시료들도 증균한 후에는 B. cereus group균들이 검출되어 사실상 대부분의 시료에서 Bacillus spp.가 분포하고 있는 것을 알 수 있었다. 이들 시료로부터 37개의 분리하여 동정한 균주는 B. thuringiensis, B. cereus, B. valismortis, B. pumilus, B. coagulans, B. licheniformis, Geobacillus stearo-thermophilus, Brevibacillus laterosporus 등으로 나타났다. 분리 균주중 20개(54%)의 분리주가 B. thuringiensis로 나타났고 그 다음으로 9개(27%)의 B. cereus이였다. 그리고 3개(8%)의 B. valismortis와 각각 1개(3%)의 B. pumilus, B. coagulans, B. licheniformis, Geobacillus stearothermophilus, Brevibacillus laterosporus이였다. B. thuringiensis는 모두에서 non-hemolytic toxin gene(nhe)을 가지고 있었고 9개의 B. cereus중 7균주가 emetic toxin 유전자를 함유하고 있었다. 따라서 쌀밥에는 B. thuringiensis가 B. cereus보다 더 높은 빈도로 분포되어 있고 B. cereus는 설사형 독소유전자 보다는 구토형 독소를 더 많이 가지고 있었다. 취반 후 쌀밥을 상온에서 보관하여 발생되는 B. cereus 식중독은 설사형보다 구토형일 가능성이 더 많을 것으로 보인다.
Bacillus cereus causes two different types of food poisoning syndromes: diarrhea and emesis. The diarrheal syndrome is attributed to various enterotoxins, including nonhemolytic enterotoxin, hemolytic enterotoxin, and enterotoxin-T, whereas the emetic syndrome is caused by the dodecadepsipeptide toxin cereulide. A multiplex polymerase chain reaction (PCR) assay was developed to rapidly detect and identify B. cereus strains. Three primer pairs specific to regions within genes encoding nonhemolytic enterotoxin (nheA), molecular chaperonin (groEL), and cereulide synthetase (ces) were used to identify and differentiate between the enterotoxin-producing and emetic toxin-producing B. cereus strains. The cereulide-producing emetic B. cereus showed 3 PCR products of 325, 405, and 685 bp for the groEL, ces, and nheA genes, respectively, whereas the enterotoxin-producing B. cereus showed 2 PCR products without a ces gene specific DNA fragment. Specific amplifications and differentiations by multiplex PCR assay were obtained using 62 B. cereus strains and 13 strains' of other bacterial species. The detection limit of this assay for enterotoxin-producing strain and emetic toxin-producing strain from pure cultures were $2.4{\times}10^1$ and $6.0{\times}10^2\;CFU/tube$, respectively. These results suggest that our multiplex PCR method may be useful for the rapid detection and differentiation of B. cereus strains in foods.
Seventy-one Bacillus cereus strains (12 references and 59 food isolates) were analyzed for the occurrence of five different enterotoxin genes (nheABC, hblCDA, entFM, cytK, and bceT) and one emetic toxin cereulide synthetase gene (ces) by PCR (polymerase chain reaction). PCR analysis revealed eight toxigenic patterns in all B. cereus strains tested; they all carried both entFM and nheABC. The presence of hblCDA, cytK, and bceT varied according to the enterotoxin-producing strains, among which hblCDA was the least frequently detected in the food-isolated strains. Only five B. cereus strains harbored ces, associated with the emetic type of food poisoning; however, these strains were devoid of hblCDA, cytK, and bceT.
B. cereus-produced cereulide as an emetic toxin is commonly isolated in starch-based cooked foods. This study examined the prevalence of B. cereus from ready-to-eat foods in markets by polymerase chain reaction analysis and determined the relationship between the level of B. cereus and the quantity of cereulide in the sample after different storage times and temperatures. The prevalence of general B. cereus in 43 starch foods was 32.6%, and the level of B. cereus ranged from 0.5 to 1.95 log cfu/g, meeting the Korea Food Code Specifications of 3 log CFU/g of B. cereus. No samples revealed emetic B. cereus. Fried rice samples were inoculated with a cereulide-producing reference strain, B. cereus NCCP 14796, to determine the level of B. cereus and the quantity of cereulide in the samples after storage for 0, 4, 6, 8, 20, 24, 30, 48, 72, and 96 h at 7, 25, 35, and 57℃. The average levels of B. cereus at 7, 25, 35, and 57℃ were 4.38, 7.31, 7.88, and 3.82 log cfu/g, and the levels of cereulide were 150.41, 1680.70, 2652.65, and 77.83 ㎍/mL, respectively, showing a significant difference according to the incubation time (P<0.05) and temperature (P<0.001).
Because conventional methods for detecting emetic-toxin-producing B. cereus are laborious and costly, various PCR assays, which are easy and cheap, have recently been reported. Therefore, this study estimated and compared the ability of various PCR assays to detect emetic-toxin-producing B. cereus strains isolated in Korea. The PCR assays were performed on 160 B. cereus strains, including 40 emetic-toxin-producing strains. Although the species-specific PCR assays were all shown to be highly specific, the sensitivities varied greatly. The accuracies of the primers were 97.5% (CER), 95.6% (EM1), 96.3% (RE234), 89.4% (CES), and 83.1% (Ces3R/CESR2). Moreover, the CER primer had a higher sensitivity (100%) than all the other primers tested, and a specificity of 96.7%. Thus, the CER primer was shown to be the most effective for screening the emetic-toxin-producing B. cereus strains tested in this study. However, the ability of these PCR assays to identify emetic-toxin-producing B. cereus should also be confirmed using other methods.
A temperate phage was isolated from emetic Bacillus cereus NCTC 11143 by mitomycin C and characterized by transmission electron microscopy and DNA and protein analyses. Whole genome sequencing of Bacillus phage 11143 was performed by GS-FLX. The phage has a dsDNA genome of 39,077 bp and a 35% G+C content. Bioinformatic analysis of the phage genome revealed 49 putative ORFs involved in replication, morphogenesis, DNA packaging, lysogeny, and host lysis. Bacillus phage 11143 could be classified as a member of the Siphoviridae family by morphology and genome structure. Genomic comparisons at the DNA and protein levels revealed homologous genetic modules with patterns and morphogenesis proteins similar to those of other Bacillus phages. Thus, Bacillus phages might have a mosaic genetic relationship.
The genus Bacillus includes a variety of diverse bacterial species, which are widespread throughout the environment due to their ubiquitous nature. A well-known member of the genus, Bacillus cereus, is a food poisoning bacterium causing both emetic and diarrhoeal disease. Other Bacillus species, particularly B. subtilis, B. licheniformis, B. pumilus, and B. thuringiensis, have also recently been recognized as causative agents of food poisoning. However, reviews and research pertaining to bacilli have focused on B. cereus. Here, we review the literature regarding the potentially toxigenic Bacillus species and the toxins produced that are associated with food poisoning.
법미생물 검사실에서는 식품의 미생물 분석이 요구되는 경우들이 있다. 국립과학수사연구원에 식품 미생물분석이 의뢰된 샘플들 중에서 Bacillus cereus 균이 분리되었던 일부 증례가 있었다. B. cereus는 식중독을 일으킬 수 있는 중요한 병원성 세균이다. 따라서 우리는 최근 미생물 검사를 위해 의뢰된 멸치액젓에서 B. cereus를 분리한 후, 16S rDNA 서열을 기반으로 하는 MSId 방법 및 real-time PCR 법에 따라 균을 동정 하였다. 또한 설사 독소 유전자 및 구토 독소 유전자 검출을 위한 PCR을 실시하고 B. cereus 분리 균주에서 nheABC, bceT 및 entFM 설사 독소 유전자의 존재를 확인하였다. 임상적으로 중요한 몇 가지 식중독 세균들은 식품 미생물 검사 시 주목해야 할 필요가 있다. 특히, 이러한 식중독 세균들 중에서 B. cereus는 환경저항성 및 내열성이 강한 내생포자를 형성하고, 내열성 독소를 형성할 수도 있기 때문에 조리된 음식을 섭취해도 식중독을 일으킬 수 있다. 본 연구를 통해서 B. cereus등의 임상적으로 중요한 세균을 구별하는 것이 식품미생물 검사 시 중요함을 강조하고, 또한 법미생물 검사실에 앞으로 의뢰될 식품미생물 분석 사례들을 위해 B. cereus의 식별 및 세균의 독소 유전자 검출을 위한 지침을 제공 하고자 한다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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