OCT4, also known as POU5F1 (POU domain class 5 transcription factor 1), is a transcription factor that acts as a master regulator of pluripotency in embryonic stem cells and is one of the reprogramming factors required for generating induced pluripotent stem cells. The human OCT4 encodes three isoforms, OCT4A, OCT4B, and OCT4B1, which are generated by alternative splicing. Currently, the functions and expression patterns of OCT4B remain largely unknown in malignancies, especially in human glioblastomas. Here, we demonstrated the function of OCT4B in human glioblastomas. Among the isoform of OCT4B, OCT4B-190 ($OCT4B^{19kDa}$) was highly expressed in human glioblastoma stem cells and glioblastoma cells and was mainly detected in the cytoplasm rather than the nucleus. Overexpression of $OCT4B^{19kDa}$ promoted colony formation of glioblastoma cells when grown in soft agar culture conditions. Clinical data analysis revealed that patients with gliomas that expressed OCT4B at high levels had a poorer prognosis than patients with gliomas that expressed OCT4B at low levels. Thus, $OCT4B^{19kDa}$ may play a crucial role in regulating cancer cell survival and adaption in a rigid environment.
Although the efforts to establish fish embryonic stem cells (ESCs) have been made for a long time, derivation of authentic ESCs that possess pluripotency is still difficult suggesting a need for the stepwise optimization of the methods to establish fish ESCs. Primary culture of the blastomeres from the embryos at blastula stage is a critical step for establishing continuous ESC lines. Here, we evaluated the effects of temperatures and basal media on primary culture of blastula embryo-derived blastomeres in marine medaka (Oryzias dancena). The blastomeres were isolated from the blastula embryos and cultured in various conditions designed by the combination of 4 temperatures including $28^{\circ}C$, $31^{\circ}C$, $34^{\circ}C$, and $37^{\circ}C$ and 2 basal media including Dulbecco's modified eagle's medium (DMEM) and Leibovitz's L-15 medium (L15). With the exception of a case cultured in L15 at $31^{\circ}C$, the rate of primary cell adherence reached 100% when the blastomeres were cultured over $31^{\circ}C$. The period for primary adherence was significantly shorter in the groups cultured in $34^{\circ}C$ and $37^{\circ}C$ than in the ones in $28^{\circ}C$ and $31^{\circ}C$. The proportion of subculture was significantly high in the group cultured in DMEM at $31^{\circ}C$ compared to the other groups. Collectively, we demonstrated that the culture in DMEM at $31^{\circ}C$ was effective to primary culture of the blastomeres derived from blastula embryos.
Jeong, SeungJoo;Ko, Juyeon;Kim, Minji;Park, Ki Chul;Park, Eunice Yon June;Kim, Jinsung;Baik, Youngjoo;Wie, Jinhong;Cho, Art E.;Jeon, Ju-hong;So, Insuk
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.23
no.3
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pp.191-201
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2019
The transient receptor potential canonical (TRPC) 5 channel, known as a nonselective cation channel, has a crucial role in calcium influx. TRPC5 has been reported to be activated by muscarinic receptor activation and extracellular pH change and inhibited by the protein kinase C pathway. Recent studies have also suggested that TRPC5 is extracellularly activated by englerin A (EA), but the mechanism remains unclear. The purpose of this study is to identify the EA-interaction sites in TRPC5 and thereby clarify the mechanism of TRPC5 activation. TRPC5 channels are over-expressed in human embryonic kidney (HEK293) cells. TRPC5 mutants were generated by site-directed mutagenesis. The whole-cell patch-clamp configuration was used to record TRPC5 currents. Western analysis was also performed to observe the expression of TRPC5 mutants. To identify the EA-interaction site in TRPC5, we first generated pore mutants. When screening the mutants with EA, we observed the EA-induced current increases of TRPC5 abolished in K554N, H594N, and E598Q mutants. The current increases of other mutants were reduced in different levels. We also examined the functional intactness of the mutants that had no effect by EA with TRPC5 agonists, such as carbachol or $GTP{\gamma}S$. Our results suggest that the three residues, Lys-554, His-594, and Glu-598, in TRPC5 might be responsible for direct interaction with EA, inducing the channel activation. We also suggest that although other pore residues are not critical, they could partly contribute to the EA-induced channel activation.
Placenta specific 8 (PLAC8, also known as ONZIN) is a multi-functional protein that is highly expressed in the intestine, lung, spleen, and innate immune cells, and is involved in various diseases, including cancers, obesity, and innate immune deficiency. Here, we generated a Plac8 knockout mouse using the CRISPR/Cas9 system. The Cas9 mRNA and two single guide RNAs targeting a region near the translation start codon at Plac8 exon 2 were microinjected into mouse zygotes. This successfully eliminated the conventional translation start site, as confirmed by Sanger sequencing and PCR genotyping analysis. Unlike the previous Plac8 deficient models displaying increased adipose tissue and body weights, our male Plac8 knockout mice showed rather lower body weight than sex-matched littermate controls, though the only difference between these two mouse models is genetic context. Differently from the previously constructed embryonic stem cell-derived Plac8 knockout mouse that contains a neomycin resistance cassette, this knockout mouse model is free from a negative selection marker or other external insertions, which will be useful in future studies aimed at elucidating the multi-functional and physiological roles of PLAC8 in various diseases, without interference from exogenous foreign DNA.
Kim, Hyejeong;Jeong, Haengdueng;Cho, Yejin;Lee, Jaehoon;Nam, Ki Taek;Lee, Han-Woong
Laboraroty Animal Research
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v.34
no.4
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pp.257-263
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2018
Trefoil factor 1 (TFF1, also known as pS2) is strongly expressed in the gastrointestinal mucosa and plays a critical role in the differentiation of gastric glands. Since approximately 50% of all human gastric cancers are associated with decreased TFF1 expression, it is considered a tumor suppressor gene. Tff1 deficiency in mice results in histological changes in the antral and pyloric gastric mucosa, with severe hyperplasia and dysplasia of epithelial cells, resulting in the development of antropyloric adenoma. Here, we generated Tff1-knockout (KO) mice, without a neomycin resistant ($Neo^R$) cassette, using the clustered regularly interspaced short palindromic repeats/CRISPR-associated nuclease 9 (CRSIPR/Cas9) system. Though our Tff1-KO mice showed phenotypes very similar to the previous embryonic stem (ES)-cell-based KO mice, they differed from the previous reports in that a reduction in body weight was observed in males. These results demonstrate that these newly established Tff1-KO mice are useful tools for investigating genetic and environmental factors influencing gastric cancer, without the effects of artificial gene insertion. Furthermore, these findings suggest a novel hypothesis that Tff1 expression influences gender differences.
Global warming and scorching summer seasons affect the growth ability of broilers and animal welfare. In modern broilers, vital organs, such as the heart and lungs, grow disproportionally under intensive selection, making it difficult to adapt to warmer climates. Changes in environmental temperature can affect muscle formation during embryonic development and the early posthatching period. Satellite cells are highly sensitive to heat stress. Heat stress affects the proliferation and differentiation activity of satellite cells and muscle growth and structure. Therefore, thermal manipulation during broiler chick embryogenesis and environmental temperature management at the beginning of hatching are critical for the development and growth of broiler muscles. This review focuses on the thermoregulation mechanism of birds, the muscle development process of broilers, and the function of satellite cells, the relationship between heat stress and muscle development of chicks shortly after hatching, and studies on heat resistance and muscle growth of broilers.
Tissue-resident macrophages play an important role in maintaining tissue homeostasis and innate immune defense against invading microbial pathogens. Brain-resident macrophages can be classified into microglia in the brain parenchyma and non-parenchymal brain macrophages, also known as central nervous system-associated or border-associated macrophages, in the brain-circulation interface. Microglia and non-parenchymal brain macrophages, including meningeal, perivascular, and choroid plexus macrophages, are mostly produced during embryonic development, and maintained their population by self-renewal. Microglia have gained much attention for their dual roles in the maintenance of brain homeostasis and the induction of neuroinflammation. In particular, diverse phenotypes of microglia have been increasingly identified under pathological conditions. Single-cell phenotypic analysis revealed that microglia are highly heterogenous and plastic, thus it is difficult to define the status of microglia as M1/M2 or resting/activated state due to complex nature of microglia. Meanwhile, physiological function of non-parenchymal brain macrophages remain to be fully demonstrated. In this review, we have summarized the origin and signatures of brain-resident macrophages and discussed the unique features of microglia, particularly, their phenotypic polarization, diversity of subtypes, and inflammasome responses related to neurodegenerative diseases.
Heterogeneous nuclear ribonucleoprotein A2/B1 (hnRNPA2/B1) is an N6-methyladenosine (m6A) RNA modification regulator and a key determinant of prem-RNA processing, mRNA metabolism and transportation in cells. Currently, m6A reader proteins such as hnRNPA2/B1 and YTHDF2 has functional roles in mice embryo. However, the role of hnRNPA2/B1 in porcine embryogenic development are unclear. Here, we investigated the developmental competence and mRNA expression levels in porcine parthenogenetic embryos after hnRNPA2/B1 knock-down. HhnRNPA2/B1 was localized in the nucleus during subsequent embryonic development since zygote stage. After hnRNPA2/B1 knock-down using double stranded RNA injection, blastocyst formation rate decreased than that in the control group. Moreover, hnRNPA2/B1 knock-down embryos show developmental delay after compaction. In blastocyste stage, total cell number was decreased. Interestingly, gene expression patterns revealed that transcription of Pou5f1, Sox2, TRFP2C, Cdx2 and PARD6B decreased without changing the junction protein, ZO1, OCLN, and CDH1. Thus, hnRNPA2/B1 is necessary for porcine early embryo development by regulating gene expression through epigenetic RNA modification.
Various RNA-binding proteins (RBPs) are key components in RNA metabolism and contribute to several neurodevelopmental disorders. To date, only a few of such RBPs have been characterized for their roles in neocortex development. Here, we show that the RBP, Rbms1, is required for radial migration, polarization and differentiation of neuronal progenitors to neurons in the neocortex development. Rbms1 expression is highest in the early development in the developing cortex, with its expression gradually diminishing from embryonic day 13.5 (E13.5) to postnatal day 0 (P0). From in utero electroporation (IUE) experiments when Rbms1 levels are knocked down in neuronal progenitors, their transition from multipolar to bipolar state is delayed and this is accompanied by a delay in radial migration of these cells. Reduced Rbms1 levels in vivo also reduces differentiation as evidenced by a decrease in levels of several differentiation markers, meanwhile having no significant effects on proliferation and cell cycle rates of these cells. As an RNA binding protein, we profiled the RNA binders of Rbms1 by a cross-linked-RIP sequencing assay, followed by quantitative real-time polymerase chain reaction verification and showed that Rbms1 binds and stabilizes the mRNA for Efr3a, a signaling adapter protein. We also demonstrate that ectopic Efr3a can recover the cells from the migration defects due to loss of Rbms1, both in vivo and in vitro migration assays with cultured cells. These imply that one of the functions of Rbms1 involves the stabilization of Efr3a RNA message, required for migration and maturation of neuronal progenitors in radial migration in the developing neocortex.
Cho, Sung Woo;Kim, Hyoung Kyu;Sung, Ji Hee;Kim, Yeseul;Kim, Jae Ho;Han, Jin
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.26
no.5
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pp.357-365
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2022
Simultaneous myofibril and mitochondrial development is crucial for the cardiac differentiation of pluripotent stem cells (PSCs). Specifically, mitochondrial energy metabolism (MEM) development in cardiomyocytes is essential for the beating function. Although previous studies have reported that MEM is correlated with cardiac differentiation, the process and timing of MEM regulation for cardiac differentiation remain poorly understood. Here, we performed transcriptome analysis of cells at specific stages of cardiac differentiation from mouse embryonic stem cells (mESCs) and human induced PSCs (hiPSCs). We selected MEM genes strongly upregulated at cardiac lineage commitment and in a time-dependent manner during cardiac maturation and identified the protein-protein interaction networks. Notably, MEM proteins were found to interact closely with cardiac maturation-related proteins rather than with cardiac lineage commitment-related proteins. Furthermore, MEM proteins were found to primarily interact with cardiac muscle contractile proteins rather than with cardiac transcription factors. We identified several candidate MEM regulatory genes involved in cardiac lineage commitment (Cck, Bdnf, Fabp4, Cebpα, and Cdkn2a in mESC-derived cells, and CCK and NOS3 in hiPSC-derived cells) and cardiac maturation (Ppargc1α, Pgam2, Cox6a2, and Fabp3 in mESC-derived cells, and PGAM2 and SLC25A4 in hiPSC-derived cells). Therefore, our findings show the importance of MEM in cardiac maturation.
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