Castro, Fernanda Cavallari de;Cruz, Maria Helena Coelho;Leal, Claudia Lima Verde
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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제29권8호
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pp.1065-1074
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2016
Growth factors play an important role during early ovarian development and folliculogenesis, since they regulate the migration of germ cells to the gonadal ridge. They also act on follicle recruitment, proliferation/atresia of granulosa cells and theca, steroidogenesis, oocyte maturation, ovulation and luteinization. Among the growth factors, the growth differentiation factor 9 (GDF9) and the bone morphogenetic protein 15 (BMP15), belong to the transforming growth factor beta (TGF-${\beta}$) superfamily, have been implicated as essential for follicular development. The GDF9 and BMP15 participate in the evolution of the primordial follicle to primary follicle and play an important role in the later stages of follicular development and maturation, increasing the steroidogenic acute regulatory protein expression, plasminogen activator and luteinizing hormone receptor (LHR). These factors are also involved in the interconnections between the oocyte and surrounding cumulus cells, where they regulate absorption of amino acids, glycolysis and biosynthesis of cholesterol cumulus cells. Even though the mode of action has not been fully established, in vitro observations indicate that the factors GDF9 and BMP15 stimulate the growth of ovarian follicles and proliferation of cumulus cells through the induction of mitosis in cells and granulosa and theca expression of genes linked to follicular maturation. Thus, seeking greater understanding of the action of these growth factors on the development of oocytes, the role of GDF9 and BMP15 in ovarian function is summarized in this brief review.
Lipopolysaccharide (LPS), an endotoxin, elicits strong immune responses in mammals. Several lines of evidence demonstrate that LPS challenge profoundly affects female reproductive function. For example, LPS exposure affects steroidogenesis and folliculogenesis, resulting in delayed puberty onset. The present study was conducted to clarify the mechanism underlying the adverse effect of LPS on the delayed puberty in female rats. LPS was daily injected for 5 days ($50{\mu}g/kg$, PND 25-29) to treated animals and the date at VO was evaluated through daily visual examination. At PND 39, animals were sacrificed, and the tissues were immediately removed and weighed. Among the reproductive organs, the weights of the ovaries and oviduct from LPS-treated animals were significantly lower than those of control animals. There were no changes in the weights of uterus and vagina between the LPS-treated and their control animals. immunological challenge by LPS delayed VO. Multiple corpora lutea were found in the control ovaries, indicating ovulations were occurred. However, none of corpus luteum was present in the LPS-treated ovary. The transcription level of steroidogenic acute regulatory protein (StAR), CYP11A1, CYP17A1 and CYP19 were significantly increased by LPS treatment. On the other hand, the levels of $3{\beta}$-HSD, $17{\beta}$-HSD and LH receptor were not changed by LPS challenge. In conclusion, the present study demonstrated that the repeated LPS exposure during the prepubertal period could induce multiple alterations in the steroidogenic machinery in ovary, and in turn, delayed puberty onset. The prepubertal LPS challenge model used in our study is useful to understand the reciprocal regulation of immune (stress) - reproductive function in early life.
Park, Chang-Eun;Kim, Young-Hoon;Jeon, Eun-Hyun;Lee, Suman;Lee, Sook-Hwan;Lee, Kyung-Ah
한국발생생물학회:학술대회논문집
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한국발생생물학회 2003년도 전기 한국발생생물학회 제16차 학술대회논문집
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pp.21-23
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2003
Mechanisms regulate the arrest and growth of the resting primordial follicles are very poorly understood. To elucidate genes involved in the early folliculogenesis, we conducted suppression subtractive hybridization using mRNA from day1 and day5 ovaries and selected weel for further analysis, since it was most frequent gene in the day1-subtracted cDNA library (1). Expression of weel and correlated components of the cell cycle machinery, such as cdc2, cyclin B1, cdc25C, and phosphorylated cdc2 was evaluated by immunohistochemistry. In primordial follicles, expression of weel, cdcw, and cyclin B1 was cytoplasmic in oocytes, but phosphorylated cdc2 was weakly expressed in oocytes. While cdc25C expression was in ovarian somatic and in some theca cells. None of components was expressed in the pre-granulosa cells of the primordial follicles, while weel weakly, and cdc2 and cyclin B1 was strongly expressed in the granulosa cells of the growing follicles. Results from the present study suggest that 1) the mejotic arrest of the oocytes may not due to of cell cycle machinery, and 2) the weel may arrest meiosis by sequestering cdc2 and cyclin B1 in the cytoplasm by protein-protein interactions and/or by inhibitory phosphorylation.
Wee1 is a kinase regulator of the M-phase promoting factor (MPF; a complex of cdc2 and cyclin B1). The present study was undertaken to determine the role(s) of wee1 in the early stages of mouse ovarian follicles. The expression of wee1 and the correlated cell-cycle components, namely cdc2, cyclin B1, and cdc25C, were evaluated by immunohistochemistry. In addition, the expression of Tyr15-phosphorylated cdc2 (cdc2-p) was also examined to determine whether wee1 kinase phosphorylates cdc2 existed. Each component except cdc25C was found cytoplasmic in the oocytes at all stages of follicles, while cdc25C was not detected in primordial follicles. It was found primarily in ovarian somatic cells and to a small extent in granulosa cells of the growing follicles. To further confirm the expression of cell-cycle components in the primordial follicular oocytes, day1 ovaries were enzymatically and mechanically dissociated, then oocytes were isolated from somatic including pre-granulosa cells, and we confirmed that cdc2-p was expressed in oocytes of primordial follicles. From the results of the present study, we concluded wee1, without the counteracting cdc25C, would cause meiotic arrest of oocytes by the inhibitory phosphorylation of cdc2. The expression of all these proteins in the granulosa cells of growing follicles may regulate their mitosis concurrently with the growth of oocytes and follicles.
The early studies demonstrated that the relative amount of FSH was important for stimulating normal ovarian activity and demonstrated the existence of a threshold level for FSH, above which follicular growth was activated. It was found that only a modest increase in circulating FSH level above the threshold (between 10 and 30%) was required to stimulate folliculogenesis. In addition, FSH is primary responsible for initiating estradiol production through the activation of the aromatase enzyme system in granulosa cells, follicular secretion and growth. LH on the other hand, plays a supportive role in ovarian steroidogenesis, stimulating the ovarian thecal cells to produce androgen, the precursor for estradiol synthesis. But there is now an increasing number of reports in the literature demonstrating an adverse effect of LH on fertility and miscarriage in infertile and fertile women. So HP-FSH is the drug of a highly purified FSH preparation which has a higher specific activity and far fewer impurities than FSH. This study was performed to evaluate the efficacy and safety of HP-FSH administered (SC; subcutaneous) versus FSH(IM; intramuscular) for ovulation induction. 20 candidates patients for ovulation induction were participated. All patients underwent pituitary desensitizing with a long gonadotropin-releasing hormone (GnRH) agonist protocol and ovulation induction was started with HP-FSH SC (10 patients; group I) or FSH IM (10 patients; group II). After ovulation, outcome of ovulation induction and local reaction of injection site were compared. There were no difference of outcome of ovulation in two groups except pregnancy rate/embryo transfer. Group I had a higher pregnancy rate/ embryo transfer than Group II (44.4% Vs 28.6%). Pain, redness, tenderness, bruising and itching when the injection received on the first 5 days of treated (50 SC and 50 IM injections) were assessed. There were no significant difference (P>0.05) in the incidence of tenderness, bruising and itching between the IM and SC injection. But IM injection (FSH) had a tendency of higher above incidence. The number of reports of pain, redness were significantly increased in IM injection group (P<0.05). These results indicate that SC administration of HP-FSH has been shown to be as effect for superovulation as traditional gonadotropins, with an improved safety profile due to the removal of extaneous proteins.
본 연구에서는 이러한 초기 난포 발달 과정 중 원시난포-1차 난포 변화과정 시기에 발현하는 유전자를 알아보고 자 수행하였다. 원시난포로만 이루어져 있는 생쥐의 생후 1일자 난소와 원시난포 및 1차 난포로만 이루어져 있는 5일자 난소의 RNA와 총 80개의 annealing control primer(ACP) primer를 사용하여 PCR을 수행하여 서로 다르게 발현하는 유전자 (differentially expressed genes; DEG) 41개를 찾아내었다. 이들 중 33개는 BLAST에 등록되어 있는 유전자와 일치하였고 4개는 novel sequence였으며 나머지 4개의 유전자는 EST이었다. 실험결과, 1일자 난소에서 더 많이 발현되는 유전자를 9개, 5일자 난소에서 더 많이 발현되는 유전자 31개, 5일자 난소에서만 특이적으로 발현하는 유전자를 1개를 얻었다. 1일자 난소에서 높게 발현하는 Anx11과 Pepp2-pending, 반면에 5일자 난소는 Apg3/Autlp-like, BPOZ, Ches1, Kcmf1, NHE3, Nid2, Ninj1, SENP3, Suil-rsl, TIAP/m-survivin등의 유전자를 선택하여 semi-quantitative RT-PCR을 수행하여 이들 중에는 false positive 없음을 확인하였다. In situ hybridization을 수행하여 대부분의 유전자가 원시난포의 난자에서 발현하다가 1차 난포 이상의 발달단계에서는 난자 내 발현이 사라지면서 오히려 과립세포에서 높게 발현됨을 확인하였다. 또한 laser capture microdissection을 이용하여 원시난포와 1차 난포를 각각 오려내고, real-time PCR을 이용하여 실제로 BPOZ와 TIAP/m-survivin의 발현이 1차 난포에서 각각4.5배, 3.4배 높은 것을 다시 확인하였다. 본 연구결과로 얻어진 유전자 목록은 앞으로 초기 난포발달, 특히 원시난포-1차 난포 변화과정에 관여하고 있는 분자생물학적 기전을 연구하는데 기여하게 될 것이다
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[게시일 2004년 10월 1일]
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