An HPLC/Esl/MS method has been developed to identify and quantify the spirostanol glycosides in the rhizomes of five Polygonatum species. The relative distribution of two steroidal saponins in each extract was established using the selective ion monitoring (SIM) mode via an electrospray ionization (ESI) source. It was found that there were significant differences in the amount of spirostanol glycosides among the Polygonatum Species. The results showed that this method could be used to identify the steroidal saponins in the extracts and differentiate Polygonatum species with high sensitivity and reproducibility in a short time. Fragmentation patterns of the two reference compounds were also discussed with the electrospray ionization multi-stage tandem mass spectroscopy (ESI-MS$^n$).
By LC/MS/MS, the analytical method of sildenafil and its analogues (homosildenafil, vardenafil and tadalafil) used as used medical treatment of impotence was established. electrosprary ionization (ESI) and atmospheric pressure chemical ionization (APCI) as a ionization method were applied. Several parameter were varied and the sensitivity and reproducibility were compared. In LC/ESI-MS method, capillary voltage, cone voltage, extractor, entrance and RF lens to create appropriate productr ions for multiple reaction monitoring (MRM) were variable parameter, but the formation of the other product ions except the precursor ion could not detect. And the value of entrance, collision energy, exit, corona voltage, cone voltage, extractor, RF lens, cone gas, and desolvation gas in APCI mode were varied, only the creation pattern of fragment ions by the change of RF lens value were detected, and the limit of detection was decreased due to the increase of S/N. Ten millimole ammonium formate (pH 4.8):acetonitrile=70:30 by isocratic elution in HPLC system was shown the maximum sensitivity in MS, the detection limit of sildenafil, homosildenafil, vardenafil and tadalafil obtained by ESI-MRM were 0.10, 0.025, 0.025, and $0.25{\mu}g/mL$ at S/N>5, respectively.
The effects of column length and particle size on the efficiency of separation and characterization of phospholipids (PLs) are investigated using nanoflow liquid chromatography-electrospray ionization-tandem mass spectrometry (nLC-ESI-MS-MS). Since PLs are associated with cell proliferation, apoptosis, and signal transduction, it is of increasing interests in lipidomics to establish reliable analytical methods for the qualitative and quantitative profiling of PLs related to biomarker development in adult diseases. Due to the complexity of PLs, the preliminary separation of PLs is necessary prior to MS analysis. In this study, length of capillary column and the particle size of reversed phase ($C_{18}$) packing materials are varied to find a reliable condition for the high speed and high resolution separation using 8 PL standard mixtures. From experiments, it was found that a capillary column of nLC-ESI-MS-MS analysis for PL mixtures can be minimized to a 5 cm long pulled tip column packed with 3 ${\mu}m$$C_{18}$ particles without losing resolution.
In this study, the analytical method for 27 residual pharmaceuticals in raw water was developed. Online sample preconcentration/extraction and analysis with high resolution Orbitrap mass spectrometry (LC-ESI/Orbitrap MS) were performed. The calibration curves showed good linearities (above $r^2$ = 0.998) in the range of 5 ~ 1,000 ng/L. The method detection limit and the limit of quantification were 1.1 ~ 10.0 ng/L and 3.4 ~ 31.7 ng/L, respectively. Recoveries of the target compounds were between 70.1% and 115.8% (except cefadroxil, cefradine, vancomycin, and iopromide (50.2 ~ 67.0%)). The optimized analytical method can be useful to determine the residual pharmaceuticals in raw water.
Lipids play important roles in biological systems; they store energy, play a structural role in the cell membrane, and are involved in cell growth, signal transduction, and apoptosis. Phospholipids (PLs) in particular have received attention in the medical and lipidomics research fields because of their involvement in human diseases such as diabetes, obesity, atherosclerosis, and many cancers associated with lipid metabolic disorders. Here I review experimental strategies for PL analysis based on nanoflow liquid chromatography-electrospray ionization-tandem mass spectrometry (nLC-ESI-MSn). In particular, discussed are lipid extraction methods, nanoflow LC separation of PLs, effect of ionization modifiers on the ESI of PLs, influence of chain lengths and unsaturation degree of acyl chains of PLs on MS intensity, structural determination of the molecular structure of PLs and their oxidized products, and quantitative profiling of PLs from biological samples such as tissue, urine, and plasma in relation to cancer and coronary artery disease.
In this study, a new quantitative analytical method has been developed for the rapid determination of acylcarnitines and amino acids in human blood using electrospray ionization / tandem mass spectrometry (ESI-MS/MS). Acylarmitines and amino acids were analyzed by tandem mass spectrometry after conversion to their butylesters through treatment with 3N butanolic hydrogen chloride. Acylcrnitines were analyzed using precursor 85 ion scan and alanine, valine, leucine/isoleucine, methionine, phenylalanine, tyrosine, aspartic acid and glutamic acid were analyzed using neutral loss 102 scan, ornitine and citrulline were analyzed neutral loss 119 scan, glycine was analyzed using neutral loss 56 scan, arginine was analyzed using neutral loss 161 scan and argininosuccinic acid was analyzed product ion 459 scan. This method reduced sample preparation time compared to that with conventional amino acid analyzer and liquid chromatography, with high sensitivity and good reproducibility.
Globotriaosylsphingosine (lyso Gb3) is considered as one of the biomarkers for Fabry disease. A rapid and simple UPLC-MS/MS method was developed for the determination of reliable biomarker, lyso Gb3. Total analytical procedure takes only 15 min including sample preparation and MS/MS analysis. Limit of detection was 0.85 ng/ml (S/N=3). The calibration curve was linear over the range of 2.0~400.0 ng/ml ($R^2=0.9999$). Inter-day and intra-day assay accuracy were 93.4~100.6% (RSD, 0.6~6.0%) and 97.5~100.7% (RSD, 3.6~5.2%). Absolute recoveries of 97.6~98.6 showed excellence of a new analytical method. The method was applied to human and mice urines, proved the suitability for the quantification of lyso-Gb3 for screening, diagnosis and therapeutic monitoring of Fabry disease patients.
Androgenic anabolic steroids (AASs) are synthetic derivatives of testosterone with a common structure containing cyclopentanoperhydrophenanthrene nucleus. Their use enhances the muscle building capacity and is beneficial during performance. The AASs are one of the most abused group of substances in horse doping. Liquid chromatography tandem mass spectrometry ($LC/MS^n$) has been successfully applied to the detection of anabolic steroids in biological samples. However, the saturated hydroxysteroids viz: nandrolone, $5{\alpha}-estrane-3{\beta}$, $17{\alpha}-diol$ exhibit lower detection responses in electrospray ionisation (ESI) because of their poor ionisation efficiency. To overcome this limitation pre-column chemical derivatization has been introduced to enhance their detection responses in $LC-ESI-MS^n$ analysis. The aim of present study was to develop a sensitive method for identification and confirmation of nandrolone and its metabolite in horse urine incorporating pre-column derivatization using picolinic acid. The method consists of extraction of targeted steroid conjugates by solid phase extraction (SPE). The eluted steroid conjugates were hydrolysed by methanolysis and free steroids were recovered with liquid-liquid extraction. The resulting steroids were derivatized to form picolinoyl esters and identification was done using LC-ESI-MS/MS in positive ionization mode. The picolinated steroid adduct enhanced the detection levels in comparison to underivatized steroids.
High-performance liquid chromatographic method with diode-array detector and electrospray ionization with multi-stage tandem mass spectroscopy (HPLC/DAD/ESI-$MS^n$) was used to identify the major constituents in a methanolic extract of Eclipta prostrata. The chromatographic separation was performed on a C18 column. Acetonitrile-water was used as a mobile phase. HPLC/DAD/ESI-$MS^n$ allowed the characterization of constituents of E. prostrata, mainly triterpenoids (eclalbasaponin I, II, III, IV, VI), flavonoids (luteolin 7-O-glucoside, demethylwedelolactone, wedelolactone, luteolin, demetylwedelolactone sulfate, luteolin sulfate, apigenin sulfate) and phenolic acids (5-O-caffeoylquinic acid, 3, 4-O-dicaffeoylquinic acid, 3, 5-O-dicaffeoylquinic acid, 4, 5-Odicaffeoylquinic acid).
Pharmaceuticals and personal care products (PPCPs) are emerging contaminants in aquatic environmental samples. Therefore, it required rapidly and certainly analytical method for pharmaceuticals which are existed in environment. In this study, Liquid chromatography/tandem mass spectrometry (LC-MS/MS) with electrospray ionization (ESI) was used to measure the concentrations of 7 pharmaceuticals (quinoxaline-2-carboxylic acid, acetylsalicylic acid, diclofenac-Na, naproxen, ibuprofen, mefenamic acid, talniflumate) from environmental water or aquatic samples simultaneously. Effective sample clean-up by solid-phase extraction (SPE) prior to LC-MS/MS analysis is necessary. For further purification, Mixed Cation eXchange (MCX) and Hydrophilic-Lipophilic Balance (HLB) solid-phase extraction (SPE) cartridges were used to eliminate the remaining interferences. LODs (Limits of Detection) and MDLs (Method Detection Limits) for the spiked sample in fresh water were in the range of 0.05~1.50 pg/mL and 0.17~4.90 pg/mL, respectively. The absolute recovery in the concentration of 1.0 ng/mL were between 81.9 and 116.3%. The acidic pharmaceuticals were detected in concentrations of 0.018~16.925 ng/mL in aquatic environmental samples.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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