A marine aerobic Gram-negative bacterium, Pseudoalteromonas carrageenovora, has been blown to hydrolyze carrageenans, the sulfated galactans of red algae, and to desulfate oligo kappa-carrageenans. Recently, the gene encoding arylsulfatase (aryl-sulfate sulfohydrolase, E.C.3.1.6.1) of A. carrageenovora was cloned and the nucleotide sequence was reported. Enzymatic hydrolysis of sulfate groups in agaropectin simplifies the process of agarose preparation. In order to overproduce the enzyme, the arylsulfatase gene (astA, 984 bp ORF) from P. carrageenovora genome was amplified by PCR and subcloned into the pET21a vector. When the constructed plasmid pAST-A1 was introduced into E, coli BL21(DE3), the transformant on LB plate containing IPTG showed the hydrolyzing activity for p-nitrophenyl sulfate. Most of arylsulfatase activity was found in the cell lysate, but at $50\;{\sim}\;5000\;{\mu}M$ IPTG concentration the activity was found both in the culture supernatant and the cell lysate. The molecular weight of the recombinant enzyme was estimated to be 34 kDa by SDS-PAGE.
B. pseudomycoides로 부터 alanine racemase로 추정되는 유전자를 분리한 다음 6xHistidine 이 결합된 pET-21 운반체를 이용하여 E. coli BL21(DE3)에서 발현시키고 생화학 특성을 조사하였다. 재조합된 alanine racemase는 affinity chromatography를 이용하여 분리하였으며 SDS-PAGE 분석에서 약 46 kDa의 단일밴드를 나타내었다. 분리된 효소는 여러 아미노산 중에서 L-alanine에 대하여 가장 높은 활성도를 보이고 D-alanine에 대하여 두번째로 높은 활성도를 보였다. 따라서 분리된 효소는 alanine racemase로 판단되었다. 분리된 효소는 D-cysteine에 하여 상당히 저해가 되었다. 효소의 최적 활성도는 pH 9.0 근처에서 관찰되었고 산성의 조건보다는 알칼리의 조건에서 보다 안정하였다. 보효소인 PLP 0.3mM의 첨가에 의해 효소의 활성도는 약 70% 가량 증대되었다.
pNAN15b와 E. coli BL21(${\lambda}DE3$)를 써서 클로닝한 E. coli 유래의 NALase는 높은 수준으로 발현이 되었다. Escherichia coli, Haemophilus influenzae, Clostridium perfringens 세 가지 균주 유래의 NALase를 비교해본 결과 E. coli 유래의 NALase가 발현이 잘되어 전체 활성도는 높았지만 활성저해를 받는 경향이나 pH 11에서의 안정성을 보면 H. influenzae 유래의 NALase가 Neu5Ac 합성에 더 유리한 특성을 갖고 있어서 H. influenzae 유래의 NALase를 E. coli에서 충분히 발현할 수 있다면 H. influenzae 유래의 NALase가 더 효과적이라고 할 수 있다.
Viruses belonging to the Hantavirus genus cause two acute severe illness in humans, i.e., Haemorrhagic Fever with Renal Syndrome (HFRS) and Hantavirus Pulmonary Syndrome(HPS). Among them, Hantaan virus is one of the most important viruses causing HFRS. Recombinant expression vectors, pKK-NP and pET-NP, with Hantaan viral nucleocapsid gene were constructed, and used to transform Eschericia coli BL21(DE3). Stability of the vectors in the host strain, and effects of some environmental conditions on the expression of nucleocapsid gene were studied. Expression vector, pKK-NP, was very unstable, and the expression level of nucleocapsid gene was very low compared to that of pET-NP. BL21(pET-NP) produced about 100 mg of N protein per liter of culture broth. Induction time did not show any significant difference on the expression level of nucleocapsid gen and cell growth. BL21(pET-NP) culture at 35$^{\circ}C$ showed a little higher expression level than at 30$^{\circ}C$ during growth phase, but reached to the same level at stationary phase. Total expression level was proportional to supplemented glucose concentration of media up to 0.5% along with cell growth, but expression level per unit cell mass was inversely proportional to glucose concentration and maximal when glucose was not supplemented at all.
Hantaan virus belonging to the genus Hantavirus and family Bunyaviridae causes an acute severe illness of human, Haemorrhagic Fever with Renal Syndrome (HFRS). It is a rodent host-borne pathogen and distributed in Asia and Eastern Europe. Hantaviruses have three major antigens, i.e., G1, G2 glycoproteins and nucleocapsid protein (N). Among them, nucleocapsid protein was reported to be the most invaluable antigen as for diagnosis. We have cloned and expressed Hantaan viral nucleocapsid gene in E. coli BL21(DE3). In this study, we have tried to purify the nucleocapsid protein produced by recombinant E. coli, and could attained a purity of >90% by anti-N monoclonal antibody-coupled immunoaffinity chromatography or phenyl sepharose hydrophobic interaction chromatography.
담즙산 분해효소(Bile salt hydrolase, EC 3.5.1.24) 활성은 담즙산의 카르복실기와 결합되어 있는 아미노기(glycine or taurine)와의 amide 결합을 끊는 작용을 하며, 이 효소 활성은 사람이나 동물의 장내 미생물들에서 널리 분포하고 있다. 노인 분변으로부터 분리한 여러 균주의 Enterococcus faecalis중에서 BSH activity가 가장 높은 CU30-2를 선발하였다. BSH 유전자를 pET22b expression vector에 클로닝하여 Escherichia coli BL21(DE3) Gold를 이용하여 단백질을 발현하였다. 6x His-tag이 있는 BSH 효소를 $Ni^+$-NTA agarose column을 이용하여 분리 정제하였고, 6가지의 다른 담즙산염을 이용하여 기질 특이성을 비교하였다. E. faecalis CU30-2의 BSH 효소는 glycine이 결합된 담즙산염에 대한 효소활성이 taurine이 결합된 것에 대한 활성보다 약 50배 정도 높게 나타났다. 이 효소의 최적 pH와 온도는 각각 7.0과 40$^{\circ}C$로 확인되었다.
Although many pharmaceutically useful proteins are produced in E. coli expression system, it is very are rare for the system to be used in the production of diagnostic antigen due to a major problem, i.e., false-positive reaction of e. coli host-derived proteins contaminating purified diagnostic antigen with human sera. The N (nucleocapsid) protein of Seoul virus causing haemorrhagic fever with renal syndrome (HFRS) was produced in E. coli BL21 (DE3), and used for the detection of N protein-specific antibodies in human sera. Using the N protein as a diagnostic antigen of HFRS, the false-positive reaction was cleared by merely mixing the test sera with the extract of E. coli host strain not harboring expression plasmid.
Xoo로 부터 aspartate aminotransferase로 추정되는 유전자를 분리한 다음 발현시켜 생화학 특성을 조사하였다. 분리된 유전자는 His6 pET-21(a) 운반체에 삽입시켰으며 E. coli BL21(DE3)에서 발현시켰다. 재조합된 Asp-AT는 affinity chromatography를 이용하여 분리하였으며 SDS-PAGE분석에서 43kDa의 단일 밴드를 나타내었다. 분리된 효소는 amino donor 로서 L-aspartate에 대하여 효소활성도가 가장 높았고, L-leucine 및 L-cysteine에 대하여서도 상당한 활성도를 나타내었다. 효소의 최적 pH는 약 7.5 근처에서 나타났고 효소의 안정성은 산성조건 보다는 알칼리 조건에서 훨씬 높았다. 최적 온도는 약 $35-40^{\circ}C$로 나타났고 $55^{\circ}C$에서 20분간 열처리한 이후의 잔여 활성도는 약 78%로 나타났다. 여러 중금속 중에서 망간 이온에 의해 효소활성이 촉진되었다.
Park, Myoung-Jin;Yon, Jei-Oh;Lim, Si-Kyu;Ryu, Dewey D.-Y.;Nam, Doo-Hyun
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제14권3호
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pp.635-638
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2004
An ATP-binding-cassette (ABC) transporter gene in the cephabacin biosynthetic gene cluster of Lysobacter lactamgenus was characterized. The amplified orf10 (cpbJ) gene was subcloned into pET-28a(+) vector and expressed in E. coli BL21(DE3) strain by 0.5 mM IPTG at $30^{\circ}C$. The membrane fraction of recombinant E. coli cells was separated by ultracentrifugation, and solubilized using 2.5% octyl-$\beta$-D-glucoside. Using the solubilized membrane fraction, the artificial proteoliposomes were reconstituted and analyzed for the biological activity of CpbJ protein. Upon measuring ATPase activity, the proteoliposome made from recombinant E. coli membrane proteins showed slightly higher activity than that from host E. coli membrane proteins. In the measurement of membrane transport activity, the reconstituted proteoliposome of recombinant E. coli membrane proteins exhibited higher activity when both substrates of cephalosporin C and L-Ala-L-Ser were applied, compared to the case of cephalosporin C or L-Ala-L-Ser only. It implies that the CpbJ protein is an ABC transporter secreting cephabacin antibiotics synthesized in cytoplasm.
The arylsulfatase gene (astA, 984 bp ORF) from the P. carrageenovora genome was amplified by PCR and subcloned into the pET21a vector. When the constructed plasmid pAST-A1 (6.4 kb) was introduced into E. coli BL21(DE3), the transformant on the LB plate containing IPTG showed a hydrolyzing activity for 4-methylumbelliferyl sulfate and p-nitrophenyl sulfate. The highest arylsulfatase activity (2.1 unit/ml) was obtained at 10 mM IPTG. Most arylsulfatase activity was found in the cell lysate, whereas no significant activity was detected in the culture supernatant. The molecular weight of the recombinant enzyme was estimated to be 33.1 kDa by SDS-PAGE. After the reaction of agar with arylsulfatase for 12 h at $40^{\circ}C$, the gel strength of the agar increased by 2-fold, and 73% of the sulfate in the agar had been removed. This result suggests that arylsulfatase expressed in E. coli could be useful in the production of electrophoretic grade agarose.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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