• 제목/요약/키워드: E. coli BL21 (DE3)

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Cloning and developing mutants of E.coli BL21(DE)/CrdS-F and E.coli BL21(DE)/CrdS-C for producing soluble glucan

  • Yin, Chun-Ji;Min, Kyoung-Du;Lee, Jung-Heon
    • 한국생물공학회:학술대회논문집
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    • 한국생물공학회 2005년도 생물공학의 동향(XVII)
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    • pp.663-667
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    • 2005
  • Water-soluble glucan was produced by mutants of E. coli BL21(DE)/CrdS-F and E. coli BL21(DE)/CrdS-C in a fermentor. Mutants of E. coli BL21(DE)/CrdS-F which has putative ${\beta}-1,3-glucan$ synthase catalytic subunit (gi:40556679) gene and E. coli BL21(DE)/CrdS-C which contains the active catalytic domain of partial curdlan synthase gene. The molecular weight of water-soluble glucan was analysed with HPLC.

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Physiological Response of Escherichia coli W3110 and BL21 to the Aerobic Expression of Vitreoscilla Hemoglobin

  • Lara, Alvaro R.;Galindo, Janet;Jaen, Karim E.;Juarez, Mariana;Sigala, Juan-Carlos
    • Journal of Microbiology and Biotechnology
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    • 제30권10호
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    • pp.1592-1596
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    • 2020
  • The aerobic growth and metabolic performance of Escherichia coli strains BL21 and W3110 were studied when the Vitreoscilla hemoglobin (VHb) was constitutively expressed in the chromosome. When VHb was expressed, acetate production decreased in both strains and was nearly eliminated in BL21. Transcriptional levels of the glyoxylate shunt genes decreased in both strains when VHb was expressed. However, higher transcription of the α-ketoglutarate dehydrogenase genes were observed for W3110, while for BL21 transcription levels decreased. VHb expression reduced the transcription of the cytochrome bo3 genes only in BL21. These results are useful for better selecting a production host.

대장균에서 Bacillus subtilis의 Mannanase 유전자 과잉발현 (High-Level Expression of A Bacillus subtilis Mannanase Gene in Escherichia coli.)

  • 권민아;손지영;윤기홍
    • 한국미생물·생명공학회지
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    • 제32권3호
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    • pp.212-217
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    • 2004
  • Glycosyl hydrolase family 26에 속하는 Bacillus subtilis WL-7 mannanase를 코드하는 유전자를 대장균에서 과잉 발현하였다. 아미노 말단의 signal peptide를 포함하거나 포함하지 않은 mannanase 유전자를 각각 pET24a(+)에 도입하여 재조합 플라스미드 pETMAN과 pENS7를 제조하였다. 이들 플라스미드를 함유하는 Escherichia coli BL21(DE3)에서 mannanase를 발현시킨 결과 signal peptide가 제거된 mannanase유전자의 발현량이 매우 높았다. 그러나 배양온도 $37^{\circ}C$에서 pENS7를 함유한 재조합 대장균에서 과잉 발현된 mannanase는 대부분이 불활성 형태로 존재하였으며, 배양온도를 $31^{\circ}C$이하로 하였을 때 수용화 형태의 효소량이 증가하면서 효소활성이 높아졌다. IPTG에 의해 발현된 재조합 대장균의 균체파쇄 상등액 중에 존재하는 mannanase 활성은 배양온도 $25^{\circ}C$~28$^{\circ}C$에서 가장 높았으며, 전체 단백질량을 기준으로 볼 때는 배양온도 $31^{\circ}C$에서 비활성이 가장 높은 것으로 확인되었다.

재조합 대장균으로부터 항고혈압 Angiotensin I-Converting Enzyme 저해제의 특성연구 (Characterization of Antihypertensive Angiotensin I-Converting Enzyme Inhibitor from Recombinant E. coli)

  • 김재호;정승찬;이대형;이종수
    • 자연과학논문집
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    • 제16권1호
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    • pp.1-13
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    • 2005
  • 안지오텐신(ACE) 저해제는 항고혈 효과를 갖고 있으므로 오랫동안 고혈압의 예방이나 치료에 이용되어 왔다. 본 연구는 재조합 대장균으로부터 새로운 ACE 저해제를 생산하고 정제하며 나아가 이들이 구조-기능 관P를 규명하기 위해 수행되었다. Saccharomyces cerevisiae의 ACE 저해 펩타이드 유전자를 함유하고 있는 재조합 pGEX-4T-3을 대장균 BL21(DE3)로 형질전환 시켰다. 재조합 pGEX-4T-3을 갖고 있는 대장균 BL21(DE3)로부터 생산된 Glutathione-s 전이효소(GST) 융합 단백질을 얻어서 그중 ACE저해 펩타이드를 Sephadex G-25 컬럼 크로마토그래피로 정제하였다. 정제된 ACE 저해 펩타이드는 타이로신-아스파틱엑시드-그리신-글리신-발린-페닐알라린-아르기닌-발린-타이로신-트레오닌의 서열을 가진 새로운 decapeptide이었고 ACE에 대하여 경쟁적으로 저해하였다.

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Penicillin G Amidase생산을 위한 재조합 대장균의 유가배양에 관한 연구 (Fed-batch Culture of Recombinant E.coli for the Production of Penicillin G Amidase)

  • 이상만
    • 한국미생물·생명공학회지
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    • 제36권4호
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    • pp.314-319
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    • 2008
  • Penicillin G amidase(PGA, benzylpenicillinamidohydrolase, EC 3.5.1.11)는 penicillin G를 phenylacetic acid(PAA)와 6-aminopenicillanic acid(6-APA)로 분해하는 효소이다. Escherichia coli(E. coli) ATCC 11105의 PGA는 24 kDa의 small subunit과 65 kDa의 large subunit으로 구성되어 있고, precursor polypeptide에서 signal peptide와 spacer peptide가 절단되어 활성을 가진 heterodimer가 형성된다. 본 연구에서는 E. coli ATCC 11105에서 PCR(polymerase chain reaction)을 통해 증폭한 pga gene을 expression vector에 넣어 pET-pga plasmid를 제작하였고, 이것을 E. coli BL21 (DE3) 균주에 형질 전환하여 PGA를 발현하고 그 활성을 분석하였다. E. coli BL21(DE3)/pET-pga 균주의 고밀도 배양액을 SDS-PAGE로 분석 했을 때, PGA의 precursor, large subunit, 그리고 small subunit으로 보이는 protein band가 나타났으며, PGA가 soluble form의 precursor로 발현되어 processing을 거쳐서 large subunit과 small subunit으로 절단되기도 하고, 일부는 insoluble form의 precursor로 발현되기도 하는 것으로 생각된다. 유가배양시 온도변화 전략을 사용하여 고농도 배양에서 발현을 유도하였다. 온도변화 전략은 $37^{\circ}C$에서 $28^{\circ}C$를 거쳐 $22^{\circ}C$로 3단계로 변화시켰다. 이러한 전략으로 PGA활성은 19.6 U/mL이며 균체량은 600 nm에서 흡광도가 62까지 도달하였다.

Bacillus cereus ASK-202에서 cloning 된 agarase의 물리 ${\cdot}$ 화학적 특성

  • 황선희;하순득;김봉조;공재열
    • 한국생물공학회:학술대회논문집
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    • 한국생물공학회 2002년도 생물공학의 동향 (X)
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    • pp.534-537
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    • 2002
  • 본 연구에서는 기능성 식품 첨가물 소재 또는 의약품으로 사용 가능한 한천올리고당의 대량생산을 위하여 agarase 생산균주인 Bacillus cereus ASK202에 대해 유전자 cloning 방법을 이용하여 한천분해효소 고생산성 균주로의 개발을 시도하였다. 원균주의 chromosomal DNA를 무작위적으로 절단하여 agarase를 생산하는 gene 부위를 선별한 결과, 83,300 Da의 agarase(Eba1)를 생산하는 재조합 균주 E. coli BL21(DE3)/pEBA1를 얻을 수 있었다. E. coli BL21(DE3)/pEBAl에서 유도물질로 IPTG를 첨가한 후 induction 5시간 후에 agarase가 원균주에 비해 8배 증가한 양이 고발현되었다. 발현된 agarase는 Asx(Aspartic acid, Asparagine), Glycine와 같은 산성 아미노산의 함량과 Alanine과 같은 중성 아미노산의 함량이 높았으며, pH 5.6, $40^{\circ}C$에서 최적의 활성을 나타내었다. 최적 기질 agar에 대한 $K_m$$V_{max}$값은 0.068 mg/$m{\ell}$과 0.094mg/$m{\ell}{\cdot}min$으로 한천의 ${\beta}$-결합을 자르는 ${\beta}$-agarase로 판명되었다.

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Fermentation and Proteomic analysis of E. coli mutant FC which produced soluble glucan

  • Kim, Ji-Yong;Jin, Li-Hua;Kim, Jung-Kyu;Lee, Jung-Heon
    • 한국생물공학회:학술대회논문집
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    • 한국생물공학회 2005년도 생물공학의 동향(XVII)
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    • pp.668-671
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    • 2005
  • In this study, the full gene of the putative ${\beta}-1,3-glucan$ synthase catalytic subunit(gi:40556679) in Agrobacteriujm sp. ATCC31750 was cloned into E. coli BL21(DE). We found that putative ${\beta}-1,3-glucan$ synthase catalytic subunit full gene mutant(E. coli mutant FC) produced soluble glucan.instead of curdlan(insoluble glucan).

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Isolation of Cysteine Protease Actinidin Gene from Chinese Wild Kiwifruit and its Expression in Escherichia coli

  • Lee, Nam-Keun;Hahm, Young-Tae
    • Food Science and Biotechnology
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    • 제16권2호
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    • pp.294-298
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    • 2007
  • The actinidin (EC 3.4.22. 14) found in kiwifruit is a cysteine protease. In order to obtain the actinidin gene from the Chinese wild kiwifruit, primers were designed on the basis of the actinidin gene of Actinidia deliciosa, the New Zealand kiwifruit. The 1.2 kb DNA fragment was acquired from the total RNAs of Chinese wild kiwifruit via reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR), and its DNA sequence was analyzed. Its sequence was determined to share 98.4% homology with the actinidin gene of A. deliciosa. In order to verity the actinidin gene isolated from the Chinese wild kiwifruit in Escherichia coli, the mature gene was amplified via PCR and expressed in E. coli under the control of the T7lac promoter. The actinidin was expressed in E. coli as inclusion bodies, which were solubilized with urea and refolded. The protease activity of the refolded protein was approximately twice as high as that of E. coli BL2l (DE3).

대장균에서의 Candida antarctica lipase B 최적 발현 (Functional expression of CalB in E.coli)

  • 김현숙;김용환
    • KSBB Journal
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    • 제23권5호
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    • pp.445-448
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    • 2008
  • 생명공학분야에서 매우 중요한 효소 중에 하나인 lipase는 여러 산업에 유용하게 사용되고 있다. lipase를 선별하기 위해서는 최적화된 발현 시스템이 필요하다. 많은 발현 시스템중에 E.coli 발현 시스템은 바람직한 특성을 갖는 효소를 스크리닝하거나, 선별된 변이체들의 특성을 확인하는 데에 소요되는 시간과 비용을 단축시켜 줄 것이다. 본 연구에서는 그 중에 BL21와 OrigamiB에서 CalB를 발현하였다. 그 결과 BL21 균주에서 발현된 CalB는 대부분이 불용성의 inclusion body를 형성하고, 전혀 활성을 나타내지 않았다. 이전의 타 연구와 더불어 이 결과에서 E.coli 균주에서 CalB의 기능적 발현이 상당히 어렵다는 것을 알 수 있다. 특히 불용성의 inclusion body형성과 lipase의 세포에 대한 유독성이 원인이 될 수 있다. 그러나 BL21와 비교해보면, OrigamiB에서 발현된 CalB 또한 많은 양의 inclusion body를 형성하지만, lipase의 주요 특성중의 하나인 가수분해 활성이 상당하게 나타나는 것을 알 수 있다. lipase의 구조 형성을 도와주는 변형된 OrigamiB와 저온유도시스템인 pCold 플라스미드를 사용했기 때문이다. 이처럼 균주나 플라스미드의 선택, 유도조건의 변경 등의 여러 연구를 통하여 유용한 효소를 선별할 수 있다.

Isolation, Cloning and Co-Expression of Lipase and Foldase Genes of Burkholderia territorii GP3 from Mount Papandayan Soil

  • Putra, Ludwinardo;Natadiputri, Griselda Herman;Meryandini, Anja;Suwanto, Antonius
    • Journal of Microbiology and Biotechnology
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    • 제29권6호
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    • pp.944-951
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    • 2019
  • Lipases are industrial enzymes that catalyze both triglyceride hydrolysis and ester synthesis. The overexpression of lipase genes is considered one of the best approaches to increase the enzymatic production for industrial applications. Subfamily I.2. lipases require a chaperone or foldase in order to become a fully-activated enzyme. The goal of this research was to isolate, clone, and co-express genes that encode lipase and foldase from Burkholderia territorii GP3, a lipolytic bacterial isolate obtained from Mount Papandayan soil via growth on Soil Extract Rhodamine Agar. Genes that encode for lipase (lipBT) and foldase (lifBT) were successfully cloned from this isolate and co-expressed in the E. coli BL21 background. The highest expression was shown in E. coli BL21 (DE3) pLysS, using pET15b expression vector. LipBT was particulary unique as it showed highest activity with optimum temperature of $80^{\circ}C$ at pH 11.0. The optimum substrate for enzyme activity was $C_{10}$, which is highly stable in methanol solvent. The enzyme was strongly activated by $Ca^{2+}$, $Mg^{2+}$, and strongly inhibited by $Fe^{2+}$ and $Zn^{2+}$. In addition, the enzyme was stable and compatible in non-ionic surfactant, and was strongly incompatible in ionic surfactant.