Hog cholera virus(HCV) was purified from virus infected Bovine kidney cells. From this virus, total protein was analyzed by SDS-PAGE gel electrophoresis and about 55 kDa band of E2 envelope protein was detected. The viral RNA was purified and E2 cDNA was amplified by RT-PCR. E2 cDNA fragment was cloned to PCRII-TOPO cloning vector and named pE2. The analysis of nucleotide sequence showed that this E2 cDNA fragment inserted into pE2 was 1191 nucleotides long and coded 397 amino acids.
Proteomics is a formalized approach for obtaining a rapid snap-shot of the protein complement of a tissue, cell or cell component. Such an approach is powerful in that it allows a parallel assessment of temporal protein fluxes. This is an important concept in view of the dynamic nature of protein expression. Undoubtedly, changes in protein expression are essential in any study aimed at investigating cellular networks. In this study, we analyzed and compared the proteomes of recombinant E. coli strain before and after induction. Proteome expression patterns of recombinant E. coli were resolved on 2D-gels, and the variations in the relative expression level of particular proteins were examined using software-aided protein quantification tool. We observed above 800 spots on a 2D-gel using Melanie II software. Many proteins which involved in chaperones were significantly up-regulated in recombinant E. coli. Therefore, it could be concluded that the expression of recombinant protein in E. coli acted as a stress to the cells, which change cells ability to synthesize proteins and induced the expression of various protective proteins.
An immunosensor based on surface plasmon resonance (SPR) with a self-assembled protein G layer was developed for the detection of Escherichia coli O157:H7. A self-assembled protein C layer on a gold (Au) surface was fabricated by adsorbing the mixture of 11-mercaptoundecanoic acid (MUA) and hexanethiol at various molar ratios and by activating chemical binding between free amine (-$NH_2$) of protein G and 11-(MUA) using 1-ethyl-3-(3-dimethylaminopropyl) carbodiimide hydrochloride (EDAC) in series. The formation of a self-assembled protein G layer on an Au substrate and the binding of the antibody and antigen in series were confirmed by SPR spectroscopy. The surface morphology analyses of the self-assembled protein G layer on the Au substrate, monoclonal antibody (Mab) against E. coli O157:H7 which was immobilized on protein G, and bound E. coli O157:H7 extracts on Immobilized Mab against E. coii O157:H7 were performed by atomic force microscopy (AFM). The detection limit of the SPR-based immunosensor for E. coli O157:H7 was found to be about $10^4$ cells/ml.
Aim: Connexin 43 (Cx43) and E-cadherin are important biomarkers related with cancer. Their expression at protein and mRNA levels was here investigated in 50 primary lung carcinoma tissues and 20 samples of adjacent normal tissue of Chinese patients with non-small cell lung cancer (NSCLC). Methods: Protein and mRNA expression were evaluated by ABC immunohistochemistry and RT-PCR. Results: (1) The positive expression rates of Cx43 and E-cadherin protein were higher in the adjacent normal tissues than those in the primary lung carcinoma tissues; (2) the positive expression rates of Cx43 and E-cadherin protein decreased with NSCLC progression; (3) the expression of E-cadherin protein was not related with the pathological type of NSCLC; and (4) the relative quantity of the Cx43 or E-cadherin mRNA expression was correlated with the the histological type, clinical stage, cancer cell differentiation and the lymph node metastasis. Conclusion: The data suggested that the Cx43 and E-cadherin are reduced with NSCLC progression, and might be important biomarkers for judging the metastasis and prognosis.
Nitric oxide (NO) produced from endothelial cells plays a critical role in vascular physiology. The regulation of endothelial NO synthase (eNOS) involves various mechanisms including multiple Ser/Thr phosphorylations. Recently, eNOS-Ser617 was newly recognized to be phosphorylated in response to humoral factors including vascular endothelial growth factor. However, it remains unknown whether and how eNOS-Ser617 phosphorylation is stimulated by shear stress, the primary stimulus of endothelial NO production. This issue was explored in the present study using cultured bovine aortic endothelial cells (BAECs). Over-expression of a constitutively active protein kinase B(Akt) mutant in BAECs increased Ser617 phosphorylation while constitutively active protein kinase A mutant had no effect. When BAECs were subjected to an arterial level of laminar shear stress, eNOS-Ser617 phosphorylation was clearly increased in a time-dependent manner. Shear stress also stimulated Akt phosphorylation at Thr308, one of the key regulatory sites. The time courses of eNOS-Ser617 and Akt-Thr308 phosphorylations appeared to be very similar. These results suggested that eNOS-Ser617 phosphorylation, mediated by Akt, is a physiological response to the mechanical shear stress, involved in the regulation of NO production in endothelial cells.
Background: Hepatitis C virus(HCV), a family of Flaviviridae, has a host cell-derived envelope containing a positive-stranded RNA genome, and has been known as the maj or etiological agent for chronic hepatitis, hepatic cirrhosis, and hepatocellular carcinoma. There remains a need to dissect a molecular mechanism of pathogenesis for the development of therapeutic and effective preventive measure for HCV. Identification of cellular receptor is of central importance not only to understand the viral pathogenesis, but also to exploit strategies for prevention of HCV. This study was aimed at identifying peptide mimotopes inhibiting the binding of E2 protein of HCV to MOLT-4 cell. Methods: In this study, phage peptide library displaying a random peptides consisting of 7 or 12 random peptides was employed in order to pan against E2 protein. Free HCV particles were separated from the immune complex forms by immunoprecipitation using anti-human IgG antibody, and used for HCV-capture ELISA. To identify the peptides inhibiting E2-binding to MOLT-4 cells, E2 protein was subj ect to bind to MOLT-4 cells under the competition with phage peptides. Results: Several phage peptides were selected for their specific binding to E2 protein, which showed the conserved sequence of SHFWRAP from 3 different peptide sequences. They were also able to recognize the HCV particles in the sera of HCV patients captured by monoclonal antibody against E2 protein. Two of them, showing peptide sequence of HLGPWMSHWFQR and WAPPLERSSLFY respectively, were revealed to inhibit the binding of E2 protein to MOLT-4 cell efficiently in dose dependent mode. However, few membrane-associated receptor candidates were seen using Fasta3 programe for homology search with these peptides. Conclusion: Phage peptides containing HLGPWMSHWFQR and WAPPLERSSLFY respectively, showed the inhibition of E2-binding to MOLT-4 cells. However, they did not reveal any homologues to cellular receptors from GenBank database. In further study, cellular receptor could be identified through the screening of cDNA library from MOLT-4 or hepatocytes using antibodies against these peptide mimotopes.
Kim, Joo-Ho;Cho, Il-Hoon;Seo, Sung-Min;Kim, Ji-Sook;Oh, Kyu-Ha;Kang, Heun-Soo;Kim, In-Gyu;Paek, Se-Hwan
Bulletin of the Korean Chemical Society
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제30권12호
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pp.2999-3005
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2009
Among the more than 120 different types of human papillomavirus (HPV), types 16 and 18 have been known to be high risk agents that cause cervical cancer. We examined, in an immuno-chromatographic analysis, the potential of using the early gene product, E7 protein, as a diagnostic marker of cervical cancer caused by HPV. We developed monoclonal antibodies specific to HPV-16 and 18 E7 proteins that were produced from bacterial cells using gene recombinant technology. For each E7 protein, the optimal antibody pair was selected using the immuno-chromatographic sandwichtype binding system based on the lateral flow through membrane pores. Under these conditions, this rapid testing assay had a detection capability as low as 2 ng/mL of E7 protein. Furthermore, since viral analysis required the host cell to be lysed using chemicals such as detergents, it was possible that the E7 protein was structurally damaged during this process, which would result in a decrease in detection sensitivity. Therefore, we examined the detrimental effects caused by different detergents on the E7 protein using HeLa cells as the host. In these experiments, we found that the damage caused by the detergent, nonylphenylpolyethylene glycol (NP-40), was minimal relative to Triton X-100 commonly used for the cell lysis. Temperature also affected the stability of the E7 protein, and we found that the E7 protein was stabilized at 4$^{\circ}C$ for about 2 h, which was 4 times longer than at room temperature. Finally, a HPV-infected cervical cancer cell line, which was used as a real sample model, was treated using the optimized conditions and the presence of E7 proteins were analyzed by immuno-chromatography. The results of this experiment demonstrated that this rapid test could specifically detect HPV-infected samples.
The pyruvate dehydrogenase complex (PDC), a member of $\alpha$-keto acid dehydrogenase complex, catalyzes the oxidative decarboxylation of pyruvate with the formation of $CO_2$, acetyl-CoA, NADH, and $H^+$. This complex contains multiple copies of three catalytic components including pyruvate dehydrogenase (E1), dihydrolipoamide acetyltransferase (E2), and dihydrolipoamide dehydrogenase (E3). Two regulatory components (E1-kinase and phospho-E1 phosphatase) and functionally less-understood protein (protein X, E3BP) are also involved in the formation of the complex. In this study, we have partially cloned the gene for E3BP in human. Nine putative clones were isolated by human genomic library screening with 1.35 kb fragment of E3BP cDNA as a probe. For investigation of cloned genes, Southern blot analysis and the construction of the restriction map were performed. One of the isolated clones, E3BP741, has a 3 kb-SacI fragment, which contains 200 bp region matched with E3BP cDNA sequences. The matched DNA sequence encodes the carboxyl-terminal portion of lipoyl-bearing domain and hinge region of human E3BP. Differences between yeast E3BP and mammalian E3BP coupled with the remarkable similarity between mammalian E2 and mammalian E3BP were confirmed from the comparison of the nucleotide sequence and the deduced amino acid sequence in the cloned E3BP. Cloning of human E3BP gene and analysis of the gene structure will facilitate the understanding of the role(s) of E3BP in mammalian PDC.
The optimization of the production of a fusion protein containing the antigenic domain 1 (AD-1) is of a great importance, considering its use in diagnostic tests. The fusion protein is produced by the fermentation of a recombinant strain of Escherichia coli containing the plasmid Mbg58, which expresses the AD-1 (aa 484-650) of human cytomegalovirus glycoprotein B as a fusion protein together with aa 1-375 of ${\beta}-galactosidase$. An important characteristic of promoters (lac and derivatives) used in recombinant protein production in E. coli is their inducibility. Induction by IPTG is widely used for basic research; however, its use in large-scale production is undesirable because of its high cost and toxicity. In this work, studies using different inducers and carbon sources for the production of a fusion protein containing the AD-l were performed. The results showed that lactose could be used as an inducer in the fermentation process for the production of this protein, and that expression levels could exceed those achieved with IPTG. The use of lactose for protein expression in E. coli should be extremely useful for the inexpensive, large-scale production of heterologous proteins in E. coli. Addition of sucrose to the fermentation medium improved the yield of recombinant protein, whereas addition of fructose or trehalose decreased the yield.
In vitro analyses of type I signal peptidase activities require protein precursors as substrates. Usually, these pre-proteins are expressed in vitro and cleavage of the signal sequence is followed by SDS polyacrylamide gel electrophoresis coupled with autoradiography. Radioactive amino acids have to be incorporated in the expressed protein, since the amount of the in vitro expressed protein is usually very low and processing of the signal peptide cannot be followed by SDS polyacrylamide gel electrophoresis alone. Here we describe a rapid and simple method to express large amounts of a protein precursor in E. coli. We have analyzed the effect of ionophors as well as of azide on the accumulation of expressed protein precursors. Azide blocks the function of SecA and the ionophors dissipate the electrochemical gradient across the cytoplasmic membrane of E. coli. Addition of azide ions resulted in the formation of inclusion bodies, highly enriched with pre-apo-plastocyanine. Plastocyanine is a soluble copper protein, which can be found in the periplasmic space of cyanobacteria as well as in the thylakoid lumen of cyanobacteria and chloroplasts, and the pre-protein contains a cleavable signal sequence at its N-terminus. After purification of cyanobacterial pre-apo-plastocyanine, its signal sequence can be cleaved off by the E. coli signal peptidase, and protein processing was followed on Coomassie stained SDS polyacrylamide gels. We are optimistic that the presented method can be further developed and applied.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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