To make the genomic DNA probe of Theileria sergenti, the merozoites were purified from bovine erythrocytes. The infected erythrocytes were lysed by Aeromonas hydrophila(Ah-1) hemolysin, and the parasites were isolated by ultracentrifugation on a Percoll discontinuous density gradient. For construction of a T sergenti genomic DNA library, T sergenti DNA was digested with Pstl and the fragments were ligated into the PstI site of pUC19 before transformation of Escherichia coli JM83. Out of thousands of transformants obtained by transformation of E coli JM83 with the genomic library, three plasmids were chosen. The sizes of the inserted DNAs were 2.9kb(2.4kb and 0.5kb) in pKTS1, 4.3kb in pKTS2 and 1.5kb in pKTS3, respectively. The DNA fragments used as probe KTS1(2.4kb), KTS2(4.3kb) and KTS3(1.5kb) were labeled digoxigenin-11-dUTP for the Southern hybridization. In Southern hybridization, all of the probes(KTS1, KTS2 and KTS3) reacted specifically to T sergenti DNA, but not to bovine leucocyte DNA. In order to find out the sensitivities of the digoxigenin-11-dUTP-labeled KTS1 and KTS3 as the probes, purified merozoite DNA and bovine DNA (control) were checked by dot blot hybridization with the probes. Both of the probes, KTS1 and KTS3, detected as minimum amount of 975pg of the T sergenti DNA, but not bovine DNA even to 500ng.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.34
no.6
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pp.759-764
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2005
The radical scavenging activity of ethanol, acetone and distilled water extracts of broccoli including leaf, flower, flower plus stem, stem, peel and positive control vitamin C, respectively, were investigated. Each sample under assay condition exhibited free radical scavenging activity (FRSA) toward DPPH radical. Among five samples, S (stem) extracts, F (flower) extracts and L (leaf) extracts of broccoli showed the FRSA in the dot-blot assay. Strong FRSA potential of the ethanol extracts of broccoli revealed at pH $2\~6$ of acid regions and at $60\~80^{\circ}C$. The extracts of green tea and Artermisia were found to have effect against Staphylococcus aureus. Whereas, only the aqueous extracts of broccoli F and FS (flower-stem) of the five extracts marked strong antibacterial activity against Bacillus amyloliquefaciens in high temperature.
Different types of transcripts encoding growth hormone (GH) were identified from cDNA libraries constructed with pituitaries of a marine fish species, greenling (Hexagrammos otakii). GH-homologous cDNA clones were isolated using the high-density filter hybridization and the expressed sequence tag techniques. Of 39 full-length positive cDNA clones, 31 clones ($79\%$) displayed an identical sequence, however, remaining 8 clones exhibited several polymorphisms in their sequences including (1) the length and sequence variability in the 5' upstream region, (2) insertional sequences in open reading frame, and (3) deletion and/or single nucleotide polymorphism in the untranslated 3' region. Based on RT-PCT and RNA dot blot analyses, these transcripts were proven to be expressed in a pituitary-specific manner.
We tested gentamicin - resistant bacteria isolated from hospital sewage to confirm the presence of aac(3)II encoding aminoglycoside- (3)-N- acetyltransferase by dot-blot hybridization. A probe from the internal fragment of aac(3)II was hybridized to DNA from 41 % (39/95) of gentamicin resistant isolates. PCR was performed with primers from aac(3)II and Tn3. Of 39 strains, 13 strains had Tn3-aac(3)II structure. Minimal inhibitory concentration (MIC) test demonstrated that 18 strains containing Tn3-aac(3)II showed higher resistance to gentamicin than those of other strains. Thirteen strains were identified as 5 Escherichia coli, 3 Acinetobacter johnsonii, 2 Enterobacter agglomerans, 2 Micrococcus luteus, and 1 Pseudomonas facilis. These results suggest that gentamicin-resistant determinant of Tn3-aac(3)II structure was widely distributed in the gentamicin-resistant bacteria.
Hepatitis B treatments using immune therapy are gaining interest because of the improvements in dendritic cell performance for antigen presentation, which induces an appropriate immune response and raises patient survival rates. This research aims to produce a significant amount of the HBcAg antigen, which can induce an immune response and have a curative effect on HBV infection. In this study, the HBV subgenotype B3 of the HBcAg gene was used, which is dominant in Indonesia. Further, Lactococcus lactis bacteria was used as the host because of its safety and tightly regulated protein expression. The codon usage for the HBcAg gene was optimized to improve protein expression in L. lactis, which is important because a codon is not random between species. The HBcAg gene is attached to a pNZ8148 plasmid and transformed into the L. lactis NZ3900 expression host. The results confirm that a positive protein band (21 kDa) in two fractions of purified HBcAg was recognized by both western blotting and dot blot hybridization, even if the HBcAg optimized codon has higher GC contents than that suggested for L. lactis expression. Overall, this research strengthens the broad use of L. lactis bacteria for any protein expression, including higher protein expression of codon optimized HBcAg gene compared to non-optimized genes. Furthermore, the improvement in the codon optimization of the HBcAg gene significantly increases the total protein expression by 10-20%, and the expression level of the codon optimized HBcAg increases 1.5 to 3.2-times that of the native HBcAg.
Purpose: An underlying factor for the failure of several clinical trials of anti-epidermal growth factor receptor (EGFR) therapies is the lack of an effective method to identify patients who overexpress EGFR protein. The quantitative dot blot method (QDB) was used to measure EGFR protein levels objectively, absolutely, and quantitatively. Its feasibility was evaluated for the prognosis of overall survival (OS) of patients with gastric cancer. Materials and Methods: Slices of 2×5 ㎛ from formalin-fixed paraffin-embedded gastric cancer specimens were used to extract total tissue lysates for QDB measurement. Absolutely quantitated EGFR protein levels were used for the Kaplan-Meier OS analysis. Results: EGFR protein levels ranged from 0 to 772.6 pmol/g (n=246) for all gastric cancer patients. A poor correlation was observed between quantitated EGFR levels and immunohistochemistry scores with ρ=0.024 and P=0.717 in Spearman's correlation analysis. EGFR was identified as an independent negative prognostic biomarker for gastric cancer patients only through absolute quantitation, with a hazard ratio of 1.92 (95% confidence interval, 1.05-3.53; P=0.034) in multivariate Cox regression OS analysis. A cutoff of 208 pmol/g was proposed to stratify patients with a 3-year survival probability of 44% for patients with EGFR levels above the cutoff versus 68% for those below the cutoff based on Kaplan-Meier OS analysis (log rank test, P=0.002). Conclusions: A QDB-based assay was developed for gastric cancer specimens to measure EGFR protein levels absolutely, quantitatively, and objectively. This assay should facilitate clinical trials aimed at evaluation of anti-EGFR therapies retrospectively and prospectively for gastric cancer.
Papaya ringspot virus (PRSV) causes the most widespread and devastating disease in papaya. Isolates of PRSV originating from different geographical regions in south India were collected and maintained on natural host papaya. The entire coat protein (CP) gene of Papaya ringspot virus-P biotype (PRSV-P) was amplified by RTPCR. The amplicon was inserted into pGEM-T vector, sequenced and sub cloned into a bacterial expression vector pRSET-A using a directional cloning strategy. The PRSV coat protein was over-expressed as a fusion protein in Escherichia coli. SDS-PAGE gel revealed that CP expressed as a ~40 kDa protein. The recombinant coat protein (rCP) fused with 6x His-tag was purified from E.coli using Ni-NTA resin. The antigenicity of the fusion protein was determined by western blot analysis using antibodies raised against purified PRSV. The purified rCP was used as an antigen to produce high titer PRSV specific polyclonal antiserum. The resulting antiserum was used to develop an immunocapture reverse transcription-polymerase chain reaction (IC-RT-PCR) assay and compared its sensitivity levels with ELISA based assays for detection of PRSV isolates. IC-RT-PCR was shown to be the most sensitive test followed by dot-blot immunobinding assay (DBIA) and plate trapped ELISA.
Sulforhodamine B (SRB) and 3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyl tetrazolium bromide (MTT) assay, RNA dot blot and Northern hybridization analysis were performed to screen microorganisms for the production of anticancer agent. Among microorganisms tested, strain YP-1 was selected for its cytotoxicity and ability to reduce the level of c-myc RNA. Strain YP-1 was identified as Streptomyces endus. The anticancer material produced by Streptomyces endus YP-1 was sequentially purified by solvent extraction, silica gel column chromatograpby, preparative TLC and preparative HPLC. The cancer material identified as azalomycin B by the instrumental analyses such as $^{1}$H-NMR, $^{13}$C-NMR, Mass, IR and UV absorption. It was colorless amorphous powder and its molecular weight was 1025.278. Azalomycin B, produced by Streptomyces endus YP-1, showed anticancer activity against several human cancer cell lines and reduction of c-Myc protein level in Colo320 DM cells which was determined by Western blot analysis.
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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v.17
no.2
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pp.223-228
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2008
A novel beetle antimicrobial protein from stimulated Copris tripartitus and the corresponding gene were isolated in parallel through differential display-PCR and expression in Escherichia coli. To find cDNA clones responsible for bacteria resistance, the suppression subtractive hybridization and GeneFishing differentially expressed genes system were employed in the dung beetle, Copris tripartitus immunized with lipopolysaccaride. One cDNA clone from eight subtracted clones was selected through dot blot analysis and confirmed by northern blot analysis. The 516-bp, selected cDNA clone was determined by 5' and 3' rapid amplication of cDNA ends and cloned into the GST fusion expression vector pGEX-4T-1 for expression of the protein. The expressed protein was predicted 14.7 kDa and inhibited the growth of gram-negative bacteria such as Escherichia coli and Pseudomonas aeruginosa. These results implied that the expressed protein is related to immune defense mechanism against microorganism.
Proceedings of the Korean Society of Applied Pharmacology
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1995.04a
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pp.128-128
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1995
To investigate the mechanism of the regulation of cytochrome P450IA1 gene expression, ethoxyresorufin deethylase(EROD) and benzo(a)pyrene hydroxylase in B6 mouse liver, in isolated perfused rat liver system. and in B6 mouse hepatocyte Hepa-I cells were examined. In C57BL/6N mouse, 3-methylcholan- throne( 3MC ) treatment have resulted in the stimulation of EROD activity based on fluorometry by 2.79 fold comparirng with that of control. Measurement of mRNA of cytochrome P450 was carried out by either nothern blot or dot blot analysis. Findings are similar to that of studies with enzymes. Furhtermore, when RTPCR method was applied to detect mRNA in Hepa I cell and liver tissues the results were more clear. Cytochrome P450IA1 upstream DNA containing CAT construct was transfected into Hepa-1 cells. After transfection of CAT construct, 3MC and flavonoids, such as, chrysin, hesperetin, kaempferol, morin, myricetin and aminoyrine were treated. 48 Hours after treatments, cells were harvested and assayed for CAT mRNA by RTPCR. 3MC treatment to hepa I cells transfected with trout P450IA1-CAT construct increased CAT mRNA by 2.81 fold when it was compared with that of control. This increase CAT mRNA was decreased by concomitantly treated flavonoids and aminopyrine. The level of CAT protein was 29.2-58.0% of 3MC stimulated CAT protein. Results of this study suggested that RTPCR seems to be a very good method to study regulation of gene expression in liver tissue or Hepa cells.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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