Three 28 day-old $Duroc{\times}Large$$White{\times}Landrace$ litter mate gilts weighing an average of 6.5 kg were used to study the intestinal absorption of amino acids when provided in dipeptide form or in the form of a free amino acid mixture. The pigs were given one of three treatments. The control involved a duodenal infusion containing no amino-acids (phosphate buffer plus 5% sorbitol) while the remaining two treatments involved either a duodenal infusion containing a glycine-lysine dipeptide (1 g) or a mixture of the free amino acids glycine and lysine at the same concentration as in the dipeptide. Blood was drawn from a cannula inserted in the portal vein, at 5 to 20 minute intervals, for two hours following infusion. The concentration of intact dipeptide as well as free glycine and lysine in the portal blood was determined by high performance liquid chromatography. The intact dipeptide was never detected in the portal blood at any time after infusion. Lysine appeared in the portal blood more rapidly after infusion of dipeptide than after infusion of free lysine and the concentration of lysine in portal blood was higher in the pig infused with the dipeptide than after infusion of free lysine at almost all time points measured. The cumulative absorption of lysine and glycine from the intestine during the two hour period after infusion was greater in the pig infused with dipeptide than in the pig infused with free amino acids. The results suggest that although intact dipeptide did not reach he portal circulation, a special transport mechanism for absorption of dipeptide by intestinal cells appears to be present in pigs similar to that observed in other species.
Cloning the gene encoding a dipeptide transporter is necessary for understanding the absorption mechanism of peptides and peptide-like drugs in the gastrointestinal tract. Functional expression of a dipeptide transporter after microinjection into Xenopus laevis oocytes was performed using the mRNA purified from human intestinal HT-29 cells. Fifty nanoliters of purified mRNA (1 mg/mL) were microinjected into healthy oocytes followed by incubation for 4 days in order to express a dipeptide transporter. Functional expression was determined by a uptake assay using 10 Ci/mL $[^3H]-glycylsarcosine$, a dipeptide substate of the transporter. Seasonal variability and batch-to-batch variability were greater in summer. The usage of beveled micropipettes improves viability of oocytes at 4 days after microinjection. Expression of a dipeptide transporter in oocytes after microinjection of mRNA obtained from HT-29 cells was significantly larger than those after microinjection of water or mRNA obtained from the rabbit intestine.
Hyun Myung-Ho;Ryoo Jae-Jeong;Min Chung-Sik;William H. Pirkle
Bulletin of the Korean Chemical Society
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제13권4호
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pp.407-413
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1992
The chromatographic separation of the stereoisomers of the N-(3,5-dinitrobenzoyl) derivatives of fifteen dipeptide methyl esters and nine dipeptide alkyl esters was investigated on three different chiral stationary phases derived from N-acylated ${\alpha}-arylalkylamines$. Two of these CSPs contain second stereogenic centers. These secondary stereogenic centers of CSPs were proposed to provide secondary effects in terms of chiral recognition. From the elution orders of the four dipeptide stereoisomers and the separation factors of the enantiomeric pairs of the N-(3,5-dinitrobenzoyl) derivatives of the dipeptide alkyl esters having different alkoxy substituents, it was proposed that the intercalation of the alkoxy substituents of dipeptide derivatives between the connecting arm of CSPs may control the magnitude of chiral separations of dipeptide derivatives.
The peptide transporter can be utilized for improving the bioavailability of compounds that are poorly absorbed. Characterization of the dipeptide uptake into the human intestinal epithelial cells, HT-29 was investigated. The uptake of tritiated glycylsarcosine $([^3H]-Gly-Sar,\;0.1\;{\mu}Ci/ml)$ was measured in confluent or subconfluent HT-29, Caco-2, and Cos-7 cells. Uptake medium was the Dulbecco's Modified Eagle's Media (DMEM) adjusted to pH 6.0. Both HT-29 and Caco-2 cells expressed the dipeptide transporter significantly (p<0.005) but Cos-7 did not. Certain portions of passive uptake were observed in all three cell lines. Uptake of Gly-Sar was largest at 7 days after plating HT-29 cells with significant inhibition with 25 mM cold Gly-Sar (p<0.05). but expression ratio of the dipeptide transporter was 0.7, suggesting lower expression. The effect of pH on Gly-Sar uptake was not significant in the range of pH 6 to 8. Gly-Sar uptake was also inhibited with 50 mM carnosine, 25 mM Gly-Sar, and 35 mM cephalexin significantly (p<0.05). From above results the dipeptide transporter was expressed well in HT-29 cells and was similar to that in the small intestine, suggesting that large amounts of mRNA of the transporter from the cells can be obtained.
Sulfanilic acid (4-aminobenzenesulfonic acid) alone is normally not permeant in bacteria but can be readily delivered via the microbial dipeptide transport system. A dipeptidyl derivative of this compound, L-phenylalanyl-L-2-sulfanilylglycine (PSG), prepared by attachment of its primary amino group to the phenylalanyl $\alpha$-glycine moiety, appeared to have a Km of 0.125 mM and a Vmax of 1.9 nmoles/ml/min ($A_{660}$, 1.0) in Escherichia coli. From competitive spectrophotometric analysis, it was found that the type of amino acids in both of the N- and C-terminals affected the kinetic power of dipeptides. The growth inhibitory effect of PSG was over 7 times more potent than that of the sulfanilic acid against E. coli, suggesting that this potential inhibition was presumably due to the increased hydrophobic nature of the sulfanilyl dipeptide.
The aspartame, $\alpha$-L-aspartyl-L-phenylalanine methylester, is an artificial sweetener. Taking advantage of the fact that the aspartame is a derivative of dipeptide, synthesis of aspartame from the artificial polypeptide made by an artificial gene has been attempted. The artificial polypeptide (LAP32), a polymer of tripeptide (aspartyl-phenylalanyl-lysine), was purified from the E. coli cells harboring a recombinant plasmid containing the artificial gene. This polypeptide was then digested with trypsin and carboxypeptidase B to produce dipeptide (Asp-Phe). Using the esterase activity of $\alpha$-chymotrypsin, the dipeptide was directly converted into Asp-Phe methylester in a water-methanol system. When the methanol concentration in reaction mixture was 25%, 50% of dipeptide was converted to the dipeptide methylester without producing any by-products.
Kim, Sung-Sam;Rahimnejad, Samad;Song, Jin-Woo;Lee, Kyeong-Jun
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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제25권8호
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pp.1138-1144
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2012
This study was conducted to evaluate the efficacy of the dipeptide form of phenylalanine as a new source of amino acid in terms of growth performance and whole-body amino acid composition in comparison to the free form for red seabream (Pagrus major). Fish ($1.46{\pm}0.001g$) were fed four isonitrogenous and isocaloric experimental diets containing 0.7 or 1.4% phenylalanine either in free or dipeptide form. A feeding trial was carried out in three replicates and the fish were fed to apparent satiation for six weeks. At the end of the feeding trial, feed intake of fish was influenced by both phenylalanine form and level and significantly higher values were obtained at an inclusion level of 0.7% and by the use of dipeptide form. However, the other growth parameters did not significantly differ among treatments. Whole-body amino acid compositions revealed no significant changes in concentrations of both essential and non-essential amino acids regardless of the increase in phenylalanine levels or the use of its different forms. The finding in this study indicates that juvenile red seabream can utilize dipeptide phenylalanine as efficiently as free form without any undesirable effects on growth performance or whole-body amino acid composition.
Kim, Do-Hyung;Park, Kwan-Yong;Chung, Yong-Jun;Kim, Byeang-Hyean
Biomolecules & Therapeutics
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제2권2호
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pp.155-160
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1994
Human immunodeficiency virus type 1 (HIV-1) protease is essential for the replication of the virus and it is therefore an attractive target for antiviral drugs of HIV-1. Several dipeptide isosteres containing 2-isoxazoline or $\alpha$-hydroxy ketomethylene have been synthesized and their inhibitory effects on the HIV-1 protease examined. The enzymatically active HIV-1 protease was purified to homogeniety from E. coli transformed with a recombinant plasmid (pMAL-pro) containing the entire gene encoding the protease. The purified protease had the substrate specificity with Km value of 9.8$\mu$M when an undecapeptide His-Lys-Ala-Arg-Val-Leu-(p-nitro)Phe-Glu-Ala-Nle-Ser-amide was used as a substrate, and the products from the substrate after specific cleavage by HIV-1 protease were analyzed by HPLC. The synthetic compounds containing dipeptide isosteres showed specific inhibitory effects while a dipeptide isostere containing an isoxazoline ring inhibited the HIV-1 protease competitively with Ki value of 500 $\mu$M. Even if the inhibition effects of HIV-1 protease were not very high, these novel dipeptide isosteres can be used as key structural moieties for developing specific inhibitors of HIV-1 protease.
A solid-phase synthetic approach is reported for the synthesis of an ascorbic acid (ASA)-dipeptide conjugate that exhibited enhanced antioxidant activity. The N-terminal amino group of dipeptide (Ala-Ala) on a resin support was first activated by 1,1'-carbonyldiimidazole (CDI), and then reacted with an ASA derivative. The addition of a base, triethylamine (TEA), promoted nucleophilic acylation of ASA derivative and yielded a desired product (ASA-Ala-Ala) with enhanced purity, when cleaved from the resin. Compared to the approach where a C3 hydroxyl group of ASA was first activated with CDI and then reacted with the amino group of dipeptide on the resin, this new approach allowed a significant reduction of a total reaction time from 120 h to 8 h at $25^{\circ}C$. As-prepared ASA-dipeptide conjugate (ASA-Ala-Ala) showed improved antioxidant activity compared to ASA.
Portage kinetic constants of peptide transport can be measured by competitive spectrophotometry. The kinetic constants of L-Glu-L-Glu transport in Escherichia coli were ascertained using L-Phe-L-3-thia-Phe (PSP) as a detector. Since the production of thiophenol upon intracellular hydrolysis of PSP was competitively inhibited by L-Glu-L-Glu, it was able to compute the kinetic constants of L-Glu-L-Glu using this method. The resulted data were in agreement with the values obtained by the method of Michaelis-Menten kinetics. The potential of this method was examined against dipeptide transport systems in various microorganisms. These results strongly suggest that the overall properties of individual systems for dipeptide transports can be easily characterized by competitive spectrophotometry.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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