DMSO는 배양포유류세포 동결보존의 동결보호제로써 일반적으로 사용 되어져 왔지만, DNA 메틸화 및 히스톤의 수식에 의해 일부 세포에서는 분화를 일으키는 것으로도 알려져 있다. 동결보존시의 배양세포의 안정된 분화형질유지에는 메틸화를 일으키는 DMSO 이외의 동결보호제의 사용이 필요하다. 세포독성이 낮고, 동물정자동결보존에 효과적인 것으로 알려진 아미도 화합물이 동일하게 포유류의 배양세포의 동결보존에서 동결보호작용이 있는지를(8종류의 아미드 화합물) 배양 마우스 혈관내피세포를 이용해 조사했다. 조사한 아미드 화합물 중에 아세트아미드와 락트아미드의 2종류가 배양세포에 대해서 동결보호작용이 있고, 가장 효과적인 것은 농도가 1.5 M의 락트아미드이다. 배양세포의 동결보존에 관해서는 삼투압 스트레스를 받지 않을 필요가 있기 때문에, 1.5 M 락트아미드 용액을 제작 시, 용매를 각 희석율의 PBS로 하고, 삼투압을 바꾼 동결 보존액에 동결세포의 생존율을 조사했다. 그 결과, 0.4배 농도의 PBS가 삼투압 스트레스를 가장 낮고 생존율이 가장 높음을 확인했다. 동결보존배지에 고 분자량재료를 첨가하면 세포생존율이 개선되는 것이 알려져 있기 때문에 BSA, HES, 데키스트란의 효과를 조사했다. 그 결과, 락트아미드를 이용한 동결보존배지는 $0.4{\times}PBS$를 이용한 1.5 M 락트아미드용액에 1%의 BSA를 첨가한 경우, DMSO의 동결보호작용에 필적하는 동결보호작용을 나타내는 것을 확인했다.
The purpose of this study was to determine the effects of Taxol pre-treatment to in vitro matured bovine oocytes, and sucrose and trehalose added to vitrification solution on spindle morphology and embryonic development following cryopreservation. Bovine oocytes were collected from ovaries and matured in tissue culture medium 199 (TCM 199) supplemented with 10% Fetal Bovine Serum (FBS), 0.05ng/ml epidermal growth factor, 0.01 IU/ml luteinizing hormone and $1{\mu}g/ml$ estradiol for 22h in $39^{\circ}C$, 5% $CO_2$, TCM 199-HEPES containing 20% FBS was used as basic medium (BM) to prepare vitrification solution. Oocytes were pre-treated with $1\;{\mu}M$ Taxol in maturation medium for 15 min prior to vitrification. Oocytes were exposed to 1.6 M ethylene glycol (EG) and 1.3M dimethyl sulfoxide (DMSO) in BM and then were exposed to 3.2 M EG, 2.6 M DMSO and 0.5 M sucrose in BM or 3.2 M EG, 2.6 M DMSO and 0.5 M trehalose in BM. Oocytes with cumulus cells and oocytes without cumulus cells were considered as control 1 and control 2, respectively and held in TCM 199-HEPES at $39^{\circ}C$. Oocytes were frozen using modified solid surface vitrification and were stored in cryotubes in liquid nitrogen for more than 1 week. Frozen oocytes were thawed in TCM 199-HEPES containing 0.5 M, 0.25 M and 0.1 M sucrose in BM for 2 min, respectively or 0.5 M, 0.25 M and 0.1 M trehalose in BM for 2 min, respectively. Immunoflurorescence staining of oocytes was performed to assess spindle morphology and chromosome configuration of oocytes. The rates of cleavage and blastocyst were examined following in vitro fertilization. Normal spindle morphology rate of oocytes pre-treated with Taxol prior to vitrification was not higher than that of other vitrified groups. Taxol pre-treatment did not increase cleavage and blastocyst formation rates, although control groups showed significantly higher rates (p<0.05). Percentages of normal spindle and embryonic development were not significantly different among vitrified groups regardless of type of sugar. In conclusion, Taxol pre-treatment of oocytes before cryopreservation did not reduce the damage induced by vitrification and subsequently did not improve embryonic development following vitrification. Trehalose may be used as an alternative non-permeating cryoprotectant in vitrification solution.
귀중한 한국재래닭 (오계)의 원시생식세포를 냉동보존하고, 키메라 닭을 통한 재래종의 복원을 도모하는 방법을 실용화하기 위해서, 오계의 원시생식세포에 있어 최적의 동결방법에 대해 검토했다. 원시생식세포의 동결은, 세포를 분리한 후, 동결배지의 기초가 되는 혈청으로서 소 태아혈청 (FBS) 그리고 닭 혈청(CS)를 이용하고, 동결보호제로서는 EG 및 DMSO의 첨가량을 2.5, 5, 10, 15%로 설정하고, 300 ${\mu}L$의 동결배지 용량으로 동결 튜브 안에서 $-70^{\circ}C$로 동결했다. 융해 후에는 오계 PGC의 생존율을 확인 및 검토를 했다. 그 결과, FBS 처리군이 CS 처리군 보다 생존 PGC 회수율이 높은 경향을 나타냈다. 또한 항동해제로서 최적의 조건은 10% EG + FBS의 조합을 기초로 한 동결배지에서 가장 높은 오계원시 생식세포의 생존율을 확인했다. 이러한 결과들로부터 한국재래종(오계)의 원시생식세포의 동결보존의 실용화가 보다 더 향상 될 수 있는 또 하나의 방법이 될 수 있음을 시사한다.
A novel alkaline protease from Streptomyces sp. M30, SapHM, was purified by ammonium sulfate precipitation, hydrophobic interaction chromatography, and DEAE-Sepharose chromatography, with a yield of 15.5% and a specific activity of 29,070 U/mg. Tryptic fragments of the purified SapHM were obtained by electrospray ionization quadrupole time-of-flight mass spectrometry. Nucleotide sequence analysis revealed that the gene sapHM contained 1,179 bp, corresponding to 392 amino acids with conserved Asp156, His187, and Ser339 residues of alkaline protease. The first 24 amino acid residues were predicted to be a signal peptide, and the molecular mass of the mature peptide was 37.1 kDa based on amino acid sequences and mass spectrometry. Pure SapHM was optimally active at 80℃ in 50 mM glycine-NaOH buffer (pH 9.0), and was broadly stable at 0-50℃ and pH 4.0-9.0. The protease relative activity was increased in the presence of Ni2+, Mn2+, and Cu2+ to 112%, 113%, and 147% of control, respectively. Pure SapHM was also activated by dimethylformamide, dimethyl sulfoxide, Tween 80, and urea. The activity of the purified enzyme was completely inhibited by phenylmethylsulfonyl fluoride, indicating that it is a serine-type protease. The Km and Vmax values were estimated to be 35.7 mg/ml, and 5 × 104 U/mg for casein. Substrate specificity analysis showed that SapH was active on casein, bovine serum albumin, and bovine serum fibrin.
This experiment was carried out to investigate the optimal cooling rate and the plunging temperature into liquid nitrogen of the 8-cell hamster embryos. The female hamsters were induced to superovulate by intraperitoneal injection of 30 i.u. PMSG. Embryos were flushed from oviduct and uterine horn. Embryos were frozen and incubated with a modified Dulbecco's phosphate buffered saline, and equilibrated with 1.5M-dimethyl sulfoxide by a 3-step procedure. The cooling rate of samples was 1$^{\circ}C$/min from room temperature to -5$^{\circ}C$ and the samples were seeded at -5$^{\circ}C$. The plunging temperatures into liquid nitrogen were -20, -25, -30, -35, -40, -45, -50 and -55$^{\circ}C$ at 0.3$^{\circ}C$/min, 0.5$^{\circ}C$/min and 1$^{\circ}C$/min cooling rates, respectively. This mean numbers of ovulation points and recovered embryos were 59.4 and 48.4 appearing 81.6% recovery rate. The percentage of 8-cell embryos in recovered embryos was 68.2. The survival rates of embryos plunged at -45$^{\circ}C$ were 73.5% at 0.3$^{\circ}C$/min, 44.8% at 0.5$^{\circ}C$/min and 30.3% at 1$^{\circ}C$/min cooling rates, respectively. This mean numbers of ovulation points and recovered embryos were 59.4 and 48.4 appearing 81.6% recovery rate. The percentage of 8-cell embryos in recovered embryos was 68.2. The survival rates of embryos plunged at -45$^{\circ}C$ were 73.5% at 0.3$^{\circ}C$/min, 44.8% at 0.5$^{\circ}C$/min and 30.3% at 1$^{\circ}C$/min cooling rates, respectively. The survival rates at 0.3$^{\circ}C$/min were significantly high. Under the condition of 0.3$^{\circ}C$/min cooling rate, the survival rates of embryos according to the plunging temperature were 70.0% and 73.5% at -40 and -45$^{\circ}C$, and those were higher than other plunging temperatures. Under the condition of 0.5$^{\circ}C$/min and 1$^{\circ}C$/min cooling rates, the survival rates according to the plunging temperatures were lower than the cooling rate of 0.3$^{\circ}C$/min, showing the similar tendency at all the plunging temperatures. In conclusion, 8-cell hamster embryos showed the best survival rates at 0.3$^{\circ}C$/min cooling rate and -45$^{\circ}C$ plunging temperature.
This study was carried out to determine the effects of cryoprotectants, freezing and thawing rates on the survival of 8-cell mouse embryos. The female ICR mice were induced to superovulated by intraperitoneal injections of 5 i.u. PMSG and 5 i.u. HCG given 48h apart and then were paired with males of the same strain. They were killed and embryos were flushed from the oviducts and uteri on 3 days after injection of HCG. Embryos were flushed with modified Dulbecco's phosphate buffered saline and equilibrated with 1.5M-dimethyl sulfoxide (DMSO) or 1.5M-glycerol by 3-step procedure. The freezing rates of the embryos were 1$^{\circ}C$/min from room temperature to -5$^{\circ}C$ and the embryos were seeded at -5$^{\circ}C$. After being held for 3 min at the seeding temperature, the rates were 0.3$^{\circ}C$/min from -5$^{\circ}C$ to -35$^{\circ}C$. From -35$^{\circ}C$ to -7$0^{\circ}C$, the rates were divided into 0.1$^{\circ}C$/min, 1$^{\circ}C$/min and 1$0^{\circ}C$/min, respectively. After being held for 5 min at -7$0^{\circ}C$, the embryos were plunged directly into liquid nitrogen. The embryos were thawed at 4$^{\circ}C$/min and 12$^{\circ}C$/min from -196$^{\circ}C$ to 37$^{\circ}C$, and for 2 min in 37$^{\circ}C$ water bath, respectively. The average number of ovulation points and embryos recovered were 42.7 and 34 appearing 79.5% recovery rate. Eight cell embryos in the embryos recovered were 26.3. The survival rates of embryos according to the freezing rates in the presence of 1.5M-DMSO were 73.5~80.6% at 0.1$^{\circ}C$/min, 75.0~79.5% at 1$^{\circ}C$/min and 52.8~54.7% at 1$0^{\circ}C$/min, but in the presence of 1.5M-glycerol were 62.9~67.6% at 0.1$^{\circ}C$/min, 61.4~68.3% at 1$^{\circ}C$/min and 25.5~30.2% at 1$0^{\circ}C$/min. The survival rates of embryos were not affected by the thawing rates.
This study was undertaken to investigate the influence of exposure and removal of four different cryoprotectants (CPAs) on the ATP content of cumulus cell-enclosed (COs) and cumulus cell-denuded (DOs) immature porcine oocytes. The in vitro nuclear maturation of the COs, exposed to and removed from the CPAs was also assessed. Both COs and DOs were exposed to 1.5 M concentrations of each CPA (ethylene glycol (EG); propylene glycol (PG); dimethyl-sulfoxide (DMSO); and glycerol (G)) for durations of 5, 15, and 30 minutes at room temperature ($23.5{\pm}1.5^{\circ}C$), and immersed in physiological saline supplemented with 20% (v/v) fetal bovine serum for 5 minutes ($39^{\circ}C$) to remove each CPA. Before, during and after exposure to each CPA, the ATP content of both the COs and the DOs was measured. After removal from each CPA an aliquot of the COs was matured for 44${\pm}$2 h, and their nuclear maturation rates were measured up to the metaphase stage of the second meiotic division (the M-II stage). The maturation rates up to the M-II stage were not significantly different between all the groups that were exposed to each CPA for 5 minutes. For 15 and 30 minute exposures, the maturation rates of the COs exposed to PG, DMSO and EG were almost the same as those of the control groups; however, the rates of G group exposed for 15 and 30 minutes were significantly lower (p<0.05) than the control group. These groups were also found to have a decrease in the ATP content of COs and DOs during and after exposure for the same periods (p<0.05). In addition, although the ATP contents of the COs after exposure to EG for any period were the same as the controls, the ATP content of the DOs exposed to EG for any period were significantly lower (p<0.05) than those of the controls. When the ATP content of the COs and DOs of each CPA were compared, the DOs exposed to PG were found to have a significantly greater level (p<0.05) than DOs exposed to G for any duration. In addition, the ATP content of DOs exposed to PG for 30 min and removal was also higher (p<0.05) than when exposed to DMSO for the same period. These findings indicate that PG may be a useful CPA for the cryopreservation of immature porcine oocytes.
Suryawanshi, Mahesh P.;Kim, Seonghyeop;Ghorpade, Uma V.;Suryawanshi, Umesh P.;Jang, Jun Sung;Gang, Myeng Gil;Kim, Jin Hyeok;Moon, Jong Ha
한국재료학회지
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제27권11호
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pp.631-635
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2017
We report facile solution processing of mesoporous hematite (${\alpha}-Fe_2O_3$) thin films for high efficiency solar-driven water splitting. $Fe_2O_3$ thin films were prepared on fluorine doped tin oxide(FTO) conducting substrates by spin coating of a precursor solution followed by annealing at $550^{\circ}C$ for 30 min. in air ambient. Specifically, the precursor solution was prepared by dissolving non-toxic $FeCl_3$ as an Fe source in highly versatile dimethyl sulfoxide(DMSO) as a solvent. The as-deposited and annealed thin films were characterized for their morphological, structural and optical properties using field-emission scanning electron microscopy(FE-SEM), X-ray diffraction(XRD), X-ray photoelectron spectroscopy(XPS) and UV-Vis absorption spectroscopy. The photoelectrochemical performance of the precursor (${\alpha}-FeOOH$) and annealed (${\alpha}-Fe_2O_3$) films were characterized and it was found that the ${\alpha}-Fe_2O_3$ film exhibited an increased photocurrent density of ${\sim}0.78mA/cm^2$ at 1.23 V vs. RHE, which is about 3.4 times higher than that of the ${\alpha}-FeOOH$ films ($0.23mA/cm^2$ at 1.23 V vs. RHE). The improved performance can be attributed to the improved crystallinity and porosity of ${\alpha}-Fe_2O_3$ thin films after annealing treatment at higher temperatures. Detailed electrical characterization was further carried out to elucidate the enhanced PEC performance of ${\alpha}-Fe_2O_3$ thin films.
산화적인 스트레스(Oxidative stress)는 신경염증의 발병요인 중의 하나로 알려져 있다. 이에 본 연구는 약용곤충추출물을 이용하여 항산화 물질을 찾고자 초고속 적용가능한 스크리닝 방법을 적용하였다. 우선, 분자염증은 활성산소 관련의 물질과 밀접한 관련이 있으므로 이들의 억제를 동반하는 추출물을 먼저 선별하였다. 항산화 실험과 관련하여 DPPH (1,1-Diphenyl-2-picrylhydrazyl), FRAP(Ferric ion reducing antioxidant power), HO (Hydroxyl radical) 소거, linoleic acid에 대한 항산화 활성 등을 assay하였고 hydrogen peroxide(H2O2)에 의한 세포사멸 억제 활성을 보기 위해 MTT assay를 실시하였다. 실험 결과, 사마귀, 늦반딧불이, 무당벌레에서 다른 library에 비교하여 항산화 활성이 높게 나타났다.
In this system, rice cells were genetically modified to express human cytotoxic T-lymphocyte antigen 4-immunoglobulin (hCTLA4Ig) using RAmy3D promoter induced by sugar depletion. Even though the target protein fused with signal sequence peptide, plant cell wall can be a barrier against secretion of recombinant proteins. Therefore, hCTLA4Ig can be trapped inside cell wall or remained in intracellular space. In this study, to enhance the secretion of hCTLA4Ig from cytoplasm and cell walls into the medium, permeabilizing agents, such as dimethyl sulfoxide (DMSO), Triton X-100 and Tween 20, were applied in transgenic rice cell cultures. When 0.5% (v/v) of DMSO was added in sugar-free medium, intracellullar hCTLA4Ig was increased, on the other hand, the secreted extracellular hCTLA4Ig was lower than that of control. DMSO did not give permeable effects on transgenic rice cell cultures. And Triton X-100 was toxic to rice cells and also did not give enhancing permeability of cells. When 0.05% (v/v) Tween 20 was added in rice cell cultures, however, intracellular hCTLA4Ig was lower than that of control cultures. And the maximum 44.76 mg/L hCTLA4Ig was produced for 10 days after induction, which was 1.4-fold increase compared to that of control cultures. Especially, Tween 20 at 0.05% (v/v) showed the positive effect on the secretion of hCTLA4Ig though the decrease of intracellular hCTLA4Ig. Also, Tween 20 as a non-toxic surfactant did not affect the cell growth, cell viability and protease activity. In conclusion, secretion of hCTLA4Ig could be increased by enhancing permeability of cells regardless of the cell growth, cell viability and protease activity.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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