A soluble Cr(VI) reductase was purified from the cytoplasm of Escherichia coli ATCC 33456. The molecular mass was estimated to be 84 and 42 kDa by gel filtration and SDS-polyacrylamide gel electrophoresis, respectively, indicating a dimeric structure. The pI was 4.66, and optimal enzyme activity was obtained at pH 6.5 and $37^{\circ}C$. The most stable condition existed at pH 7.0. The purified enzyme used both NADPH and NADH as electron donors for Cr(VI) reduction, while NADPH was the better, conferring 61% higher activity than NADH. The $K_m$ values for NADPH and NADH were determined to be 47.5 and 17.2 umol, and the $V_max$ values 322.2 and 130.7 umol Cr(VI) $min^{-1}mg^{-1}$ protein, respectively. The activity was strongly inhibited by N-ethylmalemide, $Ag^{2+},\;Cd^{2+},\;Hg^{2+}$, and $Zn^{2+}$. The antibody against the enzyme showed no immunological cross reaction with those of other Cr(VI) reducing strains.
Dihydroxy-acid dehydratase (DHAD, 2,3-dihydroxy-acid hydrolyase, EC 4.2.1.9) is one of the key enzymes involved in the biosynthetic pathway of the branched chain amino acid isoleucine and valine. Although the enzyme have been purified and characterized in various mesophiles including bacteria and eukarya, the biochemical properties of DHAD has bee not yet reported from hyperthermophilic archaea. In this study, we cloned, expressed, and purified a DHAD homologue from the thermoacidophilic archaeon Sulfolobus solfataricus P2, which grows optimally at $80\;^{\circ}C$ and pH 3, in E. coli. Characterization of the recombinant S. solfataricus DHAD (rSso_DHAD) revealed that it is the dimeric protein with a subunit molecular weight of 64,000 Da in native structure. rDHAD showed the highest activity toward 2,3-dihydroxyisovaleric acid among 17 aldonic acid substrates Interestingly, this enzyme also displayed 50 % activities toward some pentonic acids and hexonic acids when compared with the activity of this enzyme to the natural substrate. Moreover, rSso_DHAD indicated relatively higher activity toward D-gluconate than any other hexonic acids tested in substrates. $K_m$ and $V_{max}$ values of rSso_DHAD were calculated as $0.54\;{\pm}\;0.04\;mM$ toward 2,3dihydroxyisovalerate and $2.42\;{\pm}\;0.19\;mM$ toward D-gluconate, and as $21.6\;{\pm}\;0.4\;U/mg$ toward 2,3-dihydroxyisovalerate and $13.8\;{\pm}\;0.4\;U/mg$ toward D-gluconate, respectively. In the study for biochemical properties, the enzyme shows maximal activity between $70^{\circ}C$ and $80^{\circ}C$, and the pH range of pH 7.5 to 8.5. The half life time at $80^{\circ}C$ was 30 min. A divalent metal ion, $Mn^{2+}$, was only powerful activators, whereas other metal ions made the enzyme activity reduced. $Hg^{2+}$, organic mercury, and EDTA also strongly inhibited enzyme activities. Particularly, the rSso_DHAD activity was very stable under aerobic condition although the counterparts reported from mesophiles had been deactivated by oxygen.
$(Na^++K^+)-ATPase$은 ${\alpha}$ 와 ${\beta}$의 두 subunits로 구성되어 있으며, 분자량이 약 300,000 daltons 정도되는 것으로 보아 ${\alpha}_2{\beta}_2$의 형태로 존재할 것으로 알려져 왔다 한편, 사람 적혈구막에 있는 $Na^+,\;K^+\;Pump$는 glycolytic enzymes과 complex를 이루고 있으리라는 보고도 있다. 우리는 이 실험에서 in situ상태의 사람 적혈구막$(Na^++K^+)-ATPase$의 분자량을 측정하기 위하여, 소위 말하는 ‘Target theory’를 radiation에 의한 ouabain sensitive한 $\Na^+$이동과, intact한 cells과 ghosts에서의 ATP가수분해능력의 inactivation data에 적용하였다. Intact한 cells은 cryoprotective agent의 존재하에서, ghosts는 직접적으로 액화질소의 용기속에 담고 온도를 $-45^{\circ}C$에서 $-50^{\circ}C$로 유지시키면서 1.5 MeV의 electron beam으로 조사한 후에 Pump의 기능내지 효소의 활성도를 측정하여 radiation에 따르는 inactivation의 정도를 측정하였다. 이득 활성도는 radiation의 양에 따라 simple exponential function으로 inactivation되었으며, 이로부터 radiation sensitive volume(target size)를 계산하였다. Target size는 intact한 cells을 사용하였을 경 우$(Na^++K^+)-ATPase$나 $Na^+,\;K^+\;Pump$ 모두 600,000 daltons으로 계산되었으며, 이 값은 만약 cells을 strophanthidin으로 먼저 처치하고 측정하면 약 325,000 daltons으로 감소하였다. Ghosts를 사용했을 경우에도$(Na^++K^+)-ATPase$의 target size는 역시 약 325,000 daltons이었다. 이상의 결과로 미루어 보아 intact한 cells에서는 $(Na^++K^+)-ATPase/Na^+,\;K^+\;Pump$가 $(\alpha\beta)_2$의 dimer 상태로 존재하거나 혹은 $(\alpha\beta)_2$의 monomer에 glycolytic enzymes과 같은 다른 enzymes이 붙어 functional한 구조를 이루고 있는 것이 아닌가 사료된다. 또한 실헐성적은 이러한 dimeric association 혹은 heterocomplex association은 ghost를 만드는 과정에서나 strophanthidin의 처치로 부서질 수 있음을 암시하고 있다.
A soluble Cr(VI) reductase was purified from the Cr(VI) reducing strain Escherichia coli ATCC33456 by ammonium sulfate fractionation, and chromatographies on Q-Sepharose FF, Cibacron blue 3GA dye affinity, Mono-Q 5/5, and Superdex 200 HR 10/30 columns. The estimated molecular mass of the purified enzyme was 27 kDa on SDS-polyacrylamide gel electrophoresis and 54 kDa on gel filtration, thus indicating a dimeric structure. The isoelectric point of the enzyme was pH 4.85. The optimum reaction pH and storage pH were both 7.0, the optimum reaction temperature was $37^{\circ}C$, and the storage temperature was $4^{\circ}C$. NADH and NADPH both served as electron donors for the reductase, with $V_{max}$ of 68.3 ${\mu}M$ Cr(VI)/min/mg protein and Km of 7.6 $\mu$M using HADH, and Vmax of 42.3 ${\mu}M$ Cr(VI)/min/mg protein and Km of 14.6 $\muM$ using NADPH. When 1 mM EDTA was added, the Cr(VI) reducing activity increased 4-fold.
Twenty eight compounds were isolated from the whole plant of Euphorbia jolkinii and evaluated for inhibitory effect on $5{\alpha}-reductase$ activity. Among the tested compounds, 1-desgalloyl eugeniin, hippomanin A, euphorbin D, exocoecarianin, rugosin E, and pentagalloyl glucose showed potent inhibitory effect on the enzyme activity. The inhibitory potency of rugosin E and euphorbin D, which are dimeric ellagitannins on $5{\alpha}-reductase$ activity, was 7-to 8-fold stronger than that of ${\gamma}-linolenic$ acid.
Mutated forms of the ras oncogenes are associated with about 30% of human tumors. The ras genes encode 21KDa proteins, called p21 or Ras, that are associated with the plasma membrane. FPTase is a dimeric enzyme that catalyses the transfer of the farnesyl group from farnesyl pyrophosphate onto cysteine 186 at the C-terminus of the Ras protein. This is mandatory process for triggering ras oncogene toward tumor formation. Therefore, selective inhibitors of FPTase have the potential to be used as antitumorgenic agents.
Citrate synthase 1 (mitochondrial) and citrate synthase 2 (nonmitochondrial) were purified from Saccharomyces cerevisiae. The physical and enzymatic characteristics of citrate synthase 2 were ananlyzed in comparison with citrate synthase 1. Both isoenzymes were shown to be dimeric proteins of identical subunits, and the molecular weights of the subunits were estimated to be 48.3kDa for citrate synthase 1 and 47.0kDa for citrate synthase 2, respectively. The optimal pH value for enzyme activity was pH 7.5 for both isoenzymes. However, the optimal temperature for the activity was strikingly different; while the activity of citrate synthase 1 reached its peak at 65.deg.C, that of citrate synthase 2 was maximal at 40.deg.C. Citrate synthase 2 showed much lower thermal and pH stability than citrate synthase 1. In addition, citrate synthase 2 was affected much more by the metal ions such as $Zn^{2+}$ , $Mn^{2+ , and $Co^{2+} than citrate synthase 1. Among the several possible regulatory metabolites tested, ATP showed the strongest inhibitory effect on both enzymes. ADP and NADH were found to have greater effect on citrate synthase 2 than on citrate synthase 1. Kinetic analysis revealed that citrate synthase 2 has approximately 7- and 3.5-fold lower affinity to acetyl CoA and to oxaloacetate, respectively, than citrate synthase 1.
항체의 특이적 결합을 분석하는 효소면역분석법은 항원의 탐지를 위해 주로 horseradish peroxidase (HRP) 또는 alkaline phosphatase (AP) 등의 효소를 사용한다. 이때 효소를 주로 화학적으로 항체에 결합시켜 사용하게 되는데 이 과정이 복잡하며 불규칙하게 일어나서 항체 및 효소의 기능을 감소시키게 된다. 또한 대부분의 효소면역분석법에서는 주로 일차 항체의 항원결합을 탐지하기위해 이차 항체를 사용하는데, 즉 이차 항체에 결합한 효소의 기질발색에 의해 일차 항체의 항원결합을 탐지하므로 이차 항체가 요구 되어질 뿐만 아니라 이차 항체의 일차 항체에 대한 반응을 위한 부가적인 배양시간이 필요하다. 더욱 더 중요한 것은 이차 항체만의 비특이적 항원 결합 역시 제거되어져야 한다. 본 연구에서는 대장균의 genomic DNA로부터 PCR을 통해 alkaline phosphatase 유전자(Sadeghi et al., 2008)를 증폭 분리한 다음 이를 TRAIL (tumor necrosis factor ${\alpha}$ related apoptosis induced ligand) receptor인 death receptor 4 (DR4)에 특이적으로 결합하는 hAY4 single-chain Fv (ScFv)에 융합시킨 재조합 ScFv-AP 형태로 대장균에서 발현시켜 정제하였다. 정제된 hAY4 ScFv-AP는 SDS-PAGE에서 단량체(monomer) 분자량인 73.8 kDa을 나타내었다. 그러나 size-exclusion chromatography(SEC)에서는 147.6 kDa을 나타내는 결과를 통해 hAY4 ScFv-AP는 AP의 자연적인 비공유결합에 의해 이량체(dimeric form)형성이 유도되어짐을 확인하였다. 또한 ELISA, Western blot 그리고 immunocytochemistry에서 이차 항체 없이 일차 항체 hAY4 ScFv에 직접 융합된 AP의 기질발색에 의해 ScFv 일차 항체의 특이적 항원결합을 나타내었다. 요약하면 hAY4 ScFv와 대장균의 alkaline phosphatase 유전자를 융합시켜 대장균에서 수용성 형태로 성공적으로 정제하였으며 정제된 ScFv-AP 융합단백질은 ELISA, Western blot 및 immunocytochemistry에서 항원결합력을 나타냈으며 또한 구매에 따른 고비용, 부가적인 배양시간 및 비특이적 결합에 의한 오류 등의 문제점을 갖는 이차 항체를 사용하지 않고 직접적인 항원결합력을 나타내었다.
한국식물학회 1987년도 식물생명공학 심포지움 논문집 Proceedings of Symposia on Plant Biotechnology
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pp.149-155
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1987
Growth and development of a higher plant, or any living organism for that matter, could be defined as an orderly expression of the genome in time and space in close interaction with the environment. During differentiation and development of a tissue or organ a group of genes must be selectively turned on or turned off mainly by trans-acting regulators. In this general concept of regulation of regulation of gene expression, a DNA molecule is recognized at a specific nucleotide sequence by DNA-binding factors. Molecular biology of the regulatory factors such as hormones, and their receptors, target DNA sequences and DNA-binding proteins are well advanced. What is not clearly understood is the molecular basis of the interactions between DNA and binding factors, expecially of the usages of the dyad symmetry of the target DNA sequences and the dimeric nature of the DNA-binding proteins. A unique 3-dimensional structure of DNA has been proposed that may play an important role in the orderly expression of the gene. A foldback intercoil (FBI) DNA configuration which was originally found by electron microscopy among mtDNA molecules from pearl millet has some unique features. The FBI configuration of DNA is believed to be formed when a flexible double helix folds back and interwines in the widened major grooves resulting in a four stranded, intercoil DNA whose thickness is the same as that of double stranded DNA. More recently, the FBI structure of DNA has been also induced in vitro by a novel enzyme which was purified from pearl millet mitochondria. It has been proposed that the FBI DNA could be utillized in intramolecular recombination which leads to inversion or deletion, and in intermolecular recombination which can lead to either site-specific recombination, genetic recombination via single strand invasion, or cross strand recombination. The structure and function of DNA in 3-dimensional aspect is emphasized for better understanding orderly expression of genes during growth and development.
A putative cyclomaltodextrinase (BHCD) gene was found from the genome of Bacillus halodurans C-125, which encodes 578 amino acids with a predicted molecular mass of 67,279 Da. It shares 42-59% of amino acid sequence identity with common cyclomaltodextrinase (CDase)-family enzymes. The corresponding gene was cloned by polymerase chain reaction (PCR) and the dimeric enzyme with C-terminal 6-histidines was successfully overproduced and purified from recombinant Escherichia coli. BHCD showed the highest activity against ${\beta}-CD$ at pH 7.0 and $50^{\circ}C$. Due to its versatile hydrolysis and transglycosylation activities, BHCD has been confirmed as a member of CDases. However, BHCD can be distinguished from other typical CDases on the basis of its novel multisubstrate specificity. While typical CDases have over 10 times higher activity on ${\beta}-CD$ than starch or pullulan, the CD-hydrolyzing activity of BHCD is only 2.3 times higher than pullulan. In particular, it showed significantly higher activity ratio of maltotriose to acarbose than other common CDase-family enzymes.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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