The replication protein A (RPA) plays a crucial role in DNA replication, recombination, and repair. RPA consists of 70, 32 and 14 kDa subunits and has high single-stranded DNA (ssDNA) binding affinity. The largest subunit, RPA70, mainly contributes to bind to ssDNA as well as interact with many cellular and viral proteins. In this study, we performed nuclear magnetic resonance experiments on the complex of the DNA binding domain A of human RPA70 (RPA70A) with ssDNA, d(CCCCC), at various pH, to understand the effect of pH on the ssDNA binding of RPA70A. The chemical shift perturbations of binding residues were most significant at pH 6.5 and they reduced with pH increment. This study provides valuable insights into the molecular mechanism of the ssDNA binding of human RPA.
Plastids, which are organelles unique to plant cells, bear their own genome that is organized into DNA-protein complexes (nucleoids). Regulation of gene expression in the plastid has been extensively investigated because this organelle plays an important role in photosynthesis. Few attempts, however, have been made to characterize the regulation of plastid gene expression at the chromosomal structure, using plastid nucleoids. In this report, we summarize the recent progress in the characterization of DNA-binding proteins in plastids, with special emphasis on CND41, a DNA binding protein, which we recently identified in the choloroplast nucleoids from photomixotrophically cultured tobacco cells. CND41 is a protein of 502 amino acids which consisted of a transit peptide of 120 amino acids and a mature protein of 382 amino acids. The N-terminal of the 'mature' protein has lysine-rich region which is essential for DNA-binding. CNA41 also showed significant identities to some aspartyl proteases. Protease activity of purified CND41 has been recently confirmed and characterized. On the other hand, characterization of accumulation of CND41 both in wild type and transgenic tobacco with reduced amount of CND41 suggests that CND41 is a negative regulator in chloroplast gene expression. Further investigation indicated that gene expression of CND41 is cell-specifically and developmentally regulated as well as sugar-induced expression. The reduction of CND41 expression in transgenic tobacco also brought the stunted plant growth due to the reduced cell length in stem. GA3 treatment on apical meristem reversed the dwarf phenotype in the transformants. Effects of CND41 expression on GA biosynthesis will be discussed
Joung, In-Sil;Angeletti, Peter C.;Engler, Jeffrey A.
Journal of Microbiology
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제41권4호
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pp.295-299
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2003
Adenovirus (Ad) precursor to the terminal protein (pTP) plays an essential roles in the viral DNA replication. Ad pTP serves as a primer for the synthesis of a new DNA strand during the initiation step of replication. In addition, Ad pTP forms organized spherical replication foci on the nuclear matrix (NM) and anchors the viral genome to the NM. Here we identified the interferon inducible gene product 1-8D (Inid) as a pTP binding protein by using a two-hybrid screen of a HeLa cDNA library. Of the clones obtained in this assay, nine were identical to the Inid, a 13-kDa polypeptide that shares homology with genes 1-8U and Leu-13/9-27, most of which have little known functions. The entire open reading frame (ORF) of Inid was cloned into the tetracycline inducible expression vector in order to determine the biological functions related with adenoviral infection. When Inid was introduced to the cells along with adenoviruses, fifty to sixty percent of Ad-infected cells expressing Inid had rounded morphology, which was suggestive of apoptosis. Results from the terminal deoxynucleotidyl transferase (TdT) and DNA fragmentation assays confirmed that Inid induces apoptosis in Ad-infected or in uninfected cells. The Inid binding to pTP may target the cell for apoptotic destruction as a host defense mechanism against the viral infection.
Kim, Chung-Hui;Cuong, Dang-Van;Kim, Jong-Su;Kim, Na-Ri;Kim, Eui-Yong;Han, Jin
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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제7권1호
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pp.9-14
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2003
Recent studies indicated that cancer cells become resistant to ionizing radiation (IR) and chemotherapy drugs by enhanced DNA repair of the lesions. Therefore, it is expected to increase the killing of cancer cells and reduce drug resistance by inhibiting DNA repair pathways that tumor cells rely on to escape chemotherapy. There are a number of key human DNA repair pathways which depend on multimeric polypeptide activities. For example, Ku heterodimer regulatory DNA binding subunits (Ku70/Ku80) on binding to double strand DNA breaks (DSBs) are able to interact with 470-kDa DNA-dependent protein kinase catalytic subunit (DNA-PKcs), and are essential for DNA-dependent protein kinase (DNA-PK) activity. It has been known that DNA-PK is an important factor for DNA repair and also is a sensor-transmitting damage signal to downstream targets, leading to cell cycles arrest. Our ultimate goal is to develop a treatment of breast tumors by targeting proteins involved in damage-signaling pathway and/or DNA repair. This would greatly facilitate tumor cell cytotoxic activity and programmed cell death through DNA damaging drug treatment. Therefore, we designed a domain of Ku80 mutants that binds to Ku70 but not DNA end binding activity and used the peptide in co-therapy strategy to see whether the targeted inhibition of DNA-PK activity sensitized breast cancer cells to irradiation or chemotherapy drug. We observed that the synthesized peptide (HNI-38) prevented DNA-PKcs from binding to Ku70/Ku80, thus resulting in inactivation of DNA-PK activity. Consequently, the peptide treated cells exhibited poor to no DNA repair, and became highly sensitive to IR or chemotherapy drugs, and the growth of breast cancer cells was inhibited. Additionally, the results obtained in the present study also support the physiological role of resistance of cancer cells to IR or chemotherapy.
Phage P22 tailspike is a thermostable homotrimeric protein, and temperature-sensitive folding (tsf) and global suppressor mutations affect its folding yields at elevated temperatures. We earlier suggested that the folding of the tailspike protein in Escherichia coli requires an unidentified molecular chaperone. Accordingly, in the present study, the interactions of purified DnaK, DnaJ, and GrpE heat-shock proteins with the tailspike protein were investigated during the translation and folding of the protein. The cotranslational addition of DnaJ to the tailspike protein resulted in the arrest of folding, when Dnak and GrpE were missing. However, the presence of DnaK, DnaJ, and GrpE had no effect on the folding yield of the tails pike protein, thus, providing evidence for the binding of the nascent tailspike protein with DnaJ protein, a member of DnaK chaperoning cycle.
Replication Protein A (RPA) is the eukaryotic single-stranded DNA binding protein. It involves in DNA replication, repair, and damage response. Among three subunits, RPA70 has a protein-protein binding domain (RPA70N) at the N-terminal. It has known that the domain recruits several damage response proteins to the damaged site. Also, it is suggested that there are more candidates that interact with RPA70N. Even though several studies performed on the structural aspects of RPA70N and its ligand binding, the backbone assignments of RPA70N is not available in public. In this study, we present the backbone assignments of RPA70N.
The signal pathways involved in the regulation of AP-1 DNA binding activity in long-term nicotine stimulated bovine adrenal medullary chromaffin (BAMC) cells have not been well characterized. To understand the involvement of second messengers in the regulation of AP-1 DNA binding activity, the present study was designed to define the time-course for inhibition of nicotine-induced responses by cholinergic antagonists, $Ca^{2+}$ and calmodulin (CaM) antagonists, and calcium/calmodulin-dependent protein kinase (CaMK) II inhibitor using electrophoretic mobility shift assay. Nicotine $(10{\mu}M)$ stimulation increased AP-1 DNA binding activity at 24 hr after treatment. Posttreatment with hexamethonium (1 mM) plus atropine $(1{\mu}M)$ (HA), nimodipine $(1{\mu}M),$ or calmidazolium $(1{\mu}M)$ at 0.5, 3, and 6 hr after the nicotine treatment significantly inhibited the AP-1 DNA binding activity increased by long-term nicotine stimulation. However, posttreatment with HA, nimodipine, or calmidazolium at 9 or 12 hr after the nicotine treatment did not affect the nicotine-induced increase of AP-1 DNA binding activity. The pretreatment of BAMC cells with various concentrations of KN-62 inhibited the increase of AP-1 DNA binding activity induced by nicotine in a concentration-dependent manner. KN-62 $(10{\mu}M)$ posttreatment beginning at 0.5, 3, or 6 hr after the nicotine treatment significantly inhibited the increase of AP-1 DNA binding activity. However, KN-62 posttreatment beginning at 9 or 12 hr after the nicotine treatment did not affect the increase of AP-1 DNA binding activity. This study suggested that stimulation (for at least 6 hr) of nicotinic receptors on BAMC cells was necessary for increase of AP-1 DNA binding activity, and activation of $Ca^{2+},$ CaM, and CaMK II up to 6 hr at least seemed to be required for the increase of nicotine-induced AP-1 DNA binding activity.
Topoisomearse II is an essential enzyme in all organisms with several independent roles in DNA metabolism. Recently, it has been demonstrated that the C-terminal region of topoisomerases II is associated with hetero-logous protein-protein interactions in human and yeast. In this study, we identified that RTP1, a rat homologue of EIA binding protein BS69, is another topoisomerae II interacting protein by yeast two-hybrid screening. RTP1 has an E1A-binding domain and a MYND motif, which are known to be required for transcriptional regulation by binding to other proteins and interaction with the leucine zipper motif of topoisomerase II. The physical interaction between RTP1 and topoisomerase ll$\alpha$ was examined by GST pull-down assay in vitro. The expression level of RTP1 peaks in S phase as that of topoisomerase ll$\alpha$. These results suggest that the interaction between topoisomerase ll$\alpha$ and RTP1 might play an important role in regulating the transcription of genes involved in DNA metabolism in higher eukaryotes.
Heterogeneous nuclear ribonucleoprotein E1(hnRNP E1) is one of the primary pre-mRNA binding proteins in human cells. It consists of 356 amino acid residues and harbors three hnRNP K homology(KH) domains that mediate RNA-binding. The hnRNP E1 protein was shown to play important roles in mRNA stabilization and translational control. In order to enhance our understanding of the cellular functions of hnRNP E1, we searched for interacting proteins through a yeast two-hybrid screening while using HeLa cDNA library as target. One of the cDNA clones was found to be human ribosomal protein L18a cDNA(GenBank accession number BC071920). We demonstrated in this study that human ribosomal protein L18a, a constituent of ribosomal protein large subunit, interacts specifically with hnRNP E1 in the yeast two-hybrid system. Such an interaction was observed for the first time in this study, and was also verified by biochemical assay.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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