Exonic copy number variation (CNV), involving deletions and duplications at the gene's exon level, presents challenges in detection due to their variable impact on gene function. The study delves into the complexities of identifying large CNVs and investigates less familiar but recurrent exonic CNVs, notably enriched in East Asian populations. Examining specific cases like DRC1, STX16, LAMA2, and CFTR highlights the clinical implications and prevalence of exonic CNVs in diverse populations. The review addresses diagnostic challenges, particularly for single exon alterations, advocating for a strategic, multi-method approach. Diagnostic methods, including multiplex ligation-dependent probe amplification, droplet digital PCR, and CNV screening using next-generation sequencing data, are discussed, with whole genome sequencing emerging as a powerful tool. The study underscores the crucial role of ethnic considerations in understanding specific CNV prevalence and ongoing efforts to unravel subtle variations. The ultimate goal is to advance rare disease diagnosis and treatment through ethnically-specific therapeutic interventions.
The aim of this work was the validation of a rapid real-time PCR assay based on TaqMan technology for the unequivocal identification of infectious canine hepatitis (ICH) virus, to be used directly on DNA purified from blood specimens. A real-time PCR system targeting at the E3 ORFA gene sequence of canine adenovirus type 1 was optimized and validated through comparative analysis of samples using conventional PCR system. The real-time PCR assay based on TaqMan technology could disclose 23 (37.7%) out of 61 samples as PCR positive. In contrast, 18 (29.5%) samples were found PCR positive when conventional PCR was applied on these samples. The use of the ABI Prism 7700 sequence detection system allowed the efficient determination of the amplified product accumulation through a fluorogenic probe. The entire real-time TaqMan PCR assay, including DNA extraction, amplification, and detection could be completed within 3 hours. The detection method of real-time TaqMan PCR assay was 1,000 times more sensitive than conventional PCR. Real-time TaqMan probe and primer set developed and optimized in this study is a sensitive, rapid and accurate method for detection of ICH virus and can be effective screening tool for the detection of ICH in a diagnostic laboratory routines.
For the quantitative analysis of genetically modified (GM) maize in processed foods, primer sets and probes based on the 35S promoter (p35S), nopaline synthase terminator (tNOS), p35S-hsp70 intron, and zSSIIb gene encoding starch synthase II for intrinsic control were designed. Polymerase chain reaction (PCR) products (80~101 bp) were specifically amplified and the primer sets targeting the smaller regions (80 or 81 bp) were more sensitive than those targeting the larger regions (94 or 101 bp). Particularly, the primer set 35F1-R1 for p35S targeting 81 bp of sequence was even more sensitive than that targeting 101 bp of sequence by a 3-log scale. The target DNA fragments were also specifically amplified from all GM labeled food samples except for one item we tested when 35F1-R1 primer set was applied. A reference plasmid pGMmaize (3 kb) including the smaller PCR products for p35S, tNOS, p35S-hsp70 intron, and the zSSIIb gene was constructed for real-time PCR (RT-PCR). The linearity of standard curves was confirmed by using diluents ranging from $2{\times}10^1{\sim}10^5$ copies of pGMmaize and the $R^2$ values ranged from 0.999~1.000. In the RT-PCR, the detection limit using the novel primer/probe sets was 5 pg of genomic DNA from MON810 line indicating that the primer sets targeting the smaller regions (80 or 81 bp) could be used for highly sensitive detection of foreign DNA fragments from GM maize in processed foods.
Genes that are expressed early in specific response to high salinity conditions were isolated from rapeseed plant (Brassica napus L.) using an mRNA differential display method. Five PCR fragments (DD1.5) were isolated that were induced by, but showed different response kinetics to, 200 mM NaCl. Nucleotide sequence analysis and homology search revealed that the deduced amino sequences of three of the five cDNA fragments showed considerable similarity to those of ${\beta}$-mannosidase (DD1), tomato Pti-6 proteins (DD5), and the tobacco harpin-induced protein hin1 (DD4), respectively. In contrast, the remaining clones, DD3 and DD2, did not correspond to any substantial existing annotation. Using the DD3 fragment as a probe, we isolated a full-length cDNA clone from the cDNA library, which we termed BnSWD1 (Brassica napus salt responsive WD40 1). The predicted amino-acid sequence of BnSWD1 contains eight WD40 repeats and is conserved in all eukaryotes. Notably, the BnSWD1 gene is expressed at high levels under salt-stress conditions. Furthermore, we found that BnSWD1 was upregulated after treatment with abscisic acid, salicylic acid, and methyl jasmonate. Our study suggests that BnSWD1, which is a novel WD40 repeat-containing protein, has a function in salt-stress responses in plants, possibly via abscisic acid-dependent and/or -independent signaling pathways.
Lee, Sung Yeon;Jeong, Hae Jin;You, Ji Hyun;Kim, So Jin
ALGAE
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제33권1호
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pp.21-35
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2018
The phototrophic dinoflagellate genus Scrippsiella is known to have a worldwide distribution. Here, we report for the first time, the occurrence of Scrippsiella lachrymosa in Korean waters. Unlike the other stains of S. lachrymosa whose cultures had been established from cysts in the sediments, the clonal culture of the Korean strain of S. lachrymosa was established from motile cells. When the sulcal plates of S. lachrymosa, which have not been fully described to date, were carefully examined using scanning electron microscopy, the Korean strain of S. lachrymosa clearly exhibited the anterior sulcal plate (s.a.), right sulcal plate (s.d.), left sulcal plate (s.s.), median sulcal plate (s.m.), and posterior sulcal plate (s.p.). When properly aligned, the large subunit (LSU) rDNA sequence of the Korean strain of S. lachrymosa was ca. 1% different from those of two Norwegian strains of S. lachrymosa, the only strains for which LSU sequences have been reported. The internal transcribed spacer (ITS) rDNA sequence of the Korean strain of S. lachrymosa was also ca. 1% different from those of the Scottish and Chinese strains and 3% different from those of the Canadian, German, Greek, and Portuguese strains. Thus, the Korean S. lachrymosa strain has unique LSU and ITS sequences. The abundances of S. lachrymosa in the waters of 28 stations, located in the East, West, and South Sea of Korea, were quantified in four seasons from January 2016 to October 2017, using quantitative real-time polymerase chain reaction method and newly designed specific primer-probe sets. Its abundances were >$0.1cells\;mL^{-1}$ at eight stations in January and March 2016 and March 2017, and its highest abundance in Korean waters was $26cells\;mL^{-1}$. Thus, S. lachrymosa has a nationwide distribution in Korean waters as motile cells.
High-risk human papillomavirus (HPV) genotypes are the major cause of cervical cancer. Hence, HPV genotype detection is a helpful preventive measure to combat cervical cancer. Recently, several HPV detection methods have been developed, each with different sensitivities and specificities. The objective of this study was to compare HPV high risk genotype detection by an electrochemical DNA chip system, a line probe assay (INNO-LiPA) and sequencing of the L1, E1 regions. A total of 361 cervical smears with different cytological findings were subjected to polymerase chain reaction-sequencing and electrochemical DNA chip assessment. Multiple infections were found in 21.9% (79/361) of the specimens, most prevalently in 20-29-year olds while the highest prevalence of HPV infection was found in the 30-39-year age group. The most prevalent genotype was HPV 16 at 28.2% (138/489) followed by HPV 52 at 9.6% (47/489), with the other types occurring at less than 9.0%. The electrochemical DNA chip results were compared with INNO-LiPA and sequencing (E1 and L1 regions) based on random selection of 273 specimens. The results obtained by the three methods were in agreement except for three cases. Direct sequencing detected only one predominant genotype including low risk HPV genotypes. INNO-LiPA identified multiple infections with various specific genotypes including some unclassified-risk genotypes. The electrochemical DNA chip was highly accurate, suitable for detection of single and multiple infections, allowed rapid detection, was less time-consuming and was easier to perform when compared with the other methods. It is concluded that for clinical and epidemiological studies, all genotyping methods are perfectly suitable and provide comparable results.
The Salmonella rfb gene encoding for the biosynthesis of the oligosaccharide-repeating units of the O-antigenic determinants was cloned and sequenced. A set of nucleotide primers(a forward and reverse) was selected to target a defined region of the guanosine diphospho-mannose(GDP-Man) pyrophosphorylase synthase gene : rfbM of Salmonella C serogroup. The primer set was used to develop a PCR-based rapid and specific detection system for Salmonella C1 serogroup. Amplification bands of predicted size(1,422bp) were generated from 11 different Salmonella C1 isolates. The bands were verified to be specific for the C1 serogroup by Southern blot analysis using reference homologous DNA specificity was further confirmed by the lack of reactivity with heterologous DNA derived from non-salmonella members of the family enterobacteriaeceae. A specificity of 100% was deduced along with a very high sensitivity shown by a detection limit of 1fg of a purified DNA template. The isolated DNA sequence was found to be 99.8% homologous to S montevideo but the related primers amplified with the predicted band sizes with all the Salmonella C1 serogroups tested. It is concluded that the PCR protocol based on the rfbM gene from S cholerasuis is optimal fast and specific for the detection of Salmonella C1 serogroup and also the corresponding probe is suitable for rapid detection of all Salmonella C1 serogroup DNA tested. This technology should facilitate the identification of contaminated pig products and for any other products contaminated with the Salmonalla C1 serogroup. The immediate impact of this developed method will be in the area of food safety of pig products with the potential prospect for adaptation to other food inspection technologies.
In this presented study, we established a method for diagnosis of porcine epidemic diarrhea(PED) by in situ hybridization(ISH), which made distinct progress in diagnostic pathology. We also carried out the retrospective diagnosis through ISH to assume the exact time of the first outbreak and incidence of PED in Korea. The outbreak of PED in Korea reported in 1992. However, since the end of 1980's, some researches of pig-industry have already suspected the outbreak of PED, not transmissible gastroenteritis(TGE). In this experiment, we performed the ISH using 80 formalin-fixed and paraffin-embedded tissues of porcine intestine which were requests for pathological diagnosis from 63 farms whose primary sign was diarrhea from 1984 to 1991. We prepared biotinylated cDNA probe(492base pairs) for ISH by nick translation method and carried out the ISH, using $Microprobe^{TM}$ capillary action system(Fisher $Biotech^R$). We detected PED virus in intestinal mucosa of 2 cases in 1992, 1 case in 1988, and 1 case in 1987. As a result, we assume that the outbreak of PED in Korea have already started since 1987.
A PCR method has been developed for the pathovar-specific detection of Pseudomonas syringae pv. tagetis, which is the causal agent of bacterial leaf spots and apical chlorosis of several species within the Compositae family. One primer set, PSTF and PSTR, was designed using a genomic locus derived from an amplified fragment length polymorphism (AFLP) fragment produced a 554-bp amplicon from 4 isolates of P. syringae pv. tagetis. In DNA dot-blot analysis with the PCR product as probe, a positive signal was identified in only 4 isolates of P. syringae pv. tagetis. These results suggest that this PCR-based assay will be a useful method for the detection and identification of P. syringae pv. tagetis.
Kim, Jae-Hwan;Song, Hee-Sung;Kim, Dong-Hern;Kim, Hae-Yeong
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제16권11호
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pp.1778-1783
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2006
Event-specific PCR detection methods are the primary trend in genetically modified (GM) plant detection owing to their high specificity based on the flanking sequence of the exogenous integrant. Therefore, this study describes a real-time PCR system for event-specific GM canola GT73, consisting of a set of primers, TaqMan probe, and single target standard plasmid. For the specific detection of GT73 canola, the 3'-integration junction sequence between the host plant DNA and the integrated specific border was targeted. To validate the proposed method, test samples of 0, 1, 3, 5, and 10% GT73 canola were quantified. The method was also assayed with 15 different plants, and no amplification signal was observed in a real-time PCR assay with any of the species tested, other than GT73 canola.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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