The sequence of 3,221 nucleotides immediately adjacent to rpsA gene encoding 30S ribosomal protein S1 of Brevibacterium ammoniagenes was determined. A putative open reading frame (ORF) of 2,670 nucleotides for a polypeptide of 889 amino acid residues and a TAG stop codon was found, which is located at a distance of 723 nucleotides upstream from rpsA gene with same translational direction. The deduced amino acid sequence of the ORF was found to be highly homologous to the DNA polymerase I of Streptomyces griseus (75.48%), Rhodococcus sp. ATCC 15963 (56.69%), Mycobacterium tuberculosis (55.46%) and Mycobacterium leprae (53.99%). It was suggested that the predicted product of the ORF is a DNA polymerase I with three functional domains. Two domains of 5 → 3 exonuclease and DNA polymerase are highly conserved with other DNA polymerase I, but 3 → 5 exonuclease domain is less conserved.
The gene encoding Aquifex pyrophilus (Apy) DNA polymerase was cloned and sequenced. The Apy DNA polymerase gene consists of 1,725 bp coding for a protein with 574 amino acid residues. The deduced amino acid sequence of Apy DNA. polymerase showed a high sequence homology to Escherichia coli DNA polymerase I-like DNA polymerases. It was deduced by amino acid sequence alignment that Apy DNA polymerase, like the Klenow fragment, has only the two domains, the $3'{\rightarrow}5'$ exonuclease domain and the $5'{\rightarrow}3'$ polymerase domain, containing the characteristic motifs. The Apy DNA polymerase gene was expressed under the control of T7lac promoter on the expression vector pET-22b(+) in E. coli. The expressed enzyme was purified by heat treatment, and Cibacron blue 3GA and $UNO^{TM}$ Q column chromatographies. The optimum pH of the purified enzyme was 7.5, and the optimal concentrations of KCl and $Mg^{2+}$ were 20 mM and 3 mM, respectively. Apy DNA polymerase contained a double strand-dependent $3'{\rightarrow}5'$ proofreading exonuclease activity, but lacked any detectable $5'{\rightarrow}3'$ exonuclease activity, which is consistent with its amino acid sequence. The somewhat lower thermostability of Apy DNA polymerase than the growth temperature of A. pyrophilus was analyzed by the comparison of amino acid composition and pressure effect.
Among dozens of DNA polymerases cloned from thermophilic bacteria, Taq DNA polymerase from Thermus aquaticus has been most frequently used in polymerase chain reaction (PCR) that is being applied to gene cloning, DNA sequencing, gene expression analysis, and detection of infectious and genetic diseases. Since native Taq DNA polymerase is expressed at low level in T. aquaticus, recombinant Escherichia coli system was used to produce Taq DNA polymerase in a large amount. Taq DNA polymerase was expressed as a soluble form under the control of tac promoter in E. coli, and purified by heat treatment and ion exchange chromatographies. The purified Taq DNA polymerase was nearly homogeneous and exhibited a similar DNA amplification activity with a commercial Taq DNA polymerase.
The gene encoding Pyrobaculum arsenaticum DNA polymerase (Par DNA polymerase) was cloned and sequenced. The gene consists of 2,361 bp coding for a protein with 786 amino acid residues. The deduced amino acid sequence of Par DNA polymerase showed a high similarity to archaeal family B-type DNA polymerases (Group I), and contained all of the motifs conserved in the family B-type DNA polymerases for $3'{\rightarrow}5'$ exonuclease and polymerase activities. The Par DNA polymerase gene was expressed under the control of the T7lac promoter on the expression vector pET-22b(+) in Escherichia coli BL21-CodonPlus(DE3)-RP. The expressed enzyme was purified by heat treatment, and Cibacron blue 3GA and $Hirap^{TM}$ Heparin HP column chromatographies. The optimum pH of the purified enzyme was 7.5. The enzyme activity was activated by divalent cations, and was inhibited by EDTA and monovalent cations. The half-life of the enzyme at $95^{\circ}C$ was 6 h. Par DNA polymerase possessed associated $3'{\rightarrow}5'$ proofreading exonuclease activity, which is consistent with its deduced amino acid sequence. PCR experiment with Par DNA polymerase showed an amplified product, indicating that this enzyme might be useful in DNA amplification and PCR-based applications.
In order to overexpress bacteriophage PRD1 DNA polymerase in E. coli cells, the 2 kb HaeII fragment was isolated from phage genomic DNA. This fragment was then cloned into pEMBL/sup ex/ 3-expression vector. A specific 57bp deletion was performed by using uracil containing ss DNA and oligonucleotide spanning each region to remove an unwanted non-coding region. After this deletion, the PRD1 DNA polymerase gene is totally under the control of the vector promoter and SD sequence. Upon heat induction, a protein with an apparent size of 68 kdal was overexpressed as an active PRD1 DNA polymerase. The expression of PRD1 DNA polymerase was about 1% of total E. coli protein.
Kim, Eun-Kyoung;Youn, Hye-Sook;Koo, Yong-Bom;Roe, Jung-Hye
Journal of Microbiology
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v.35
no.4
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pp.264-270
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1997
The structure of plasmid mlp1, a linear 10.2kb mitochondrial plasmid of Pleurotus ostreatus NFF A2 was determined by restriction enzyme mapping and partial sequencing. The plasmid encodes at least two proteins; a putative RNA polymerase showing homology to yeast mitochondrial RNA polymerase and to viral-encoded RNA polymerases, and a putative DNA polymerase showing significant homology to the family B thpe DNA polymerases. It also contains terminal inverted repeat sequences at both ends which are longer than 274 bp. A 1.6 kb EcoRI restriction fragment of m1p1 containing the putative RNA polymerase gene did not hybridize to the nuclear or motochondrial genomes from P. ostreatus, suggesting that it may encode plasmidspecific RNA polymerase. The gene fragment also did not hybridize with the RNA polymerase gene (RPO41) from Saccaromyces cerevisiae. The relationship between genes in m1p1 and those in another linear plasmid pC1K1 of Claviceps purpurea was examined by DNA hybridization. The result indicates that the genes for DNA and RNA polymerases are not closely related with those in C. purpurea.
Bacteriophage T7 gene 2.5 protein, a single-stranded DNA binding protein, is required for T7 DNA replication, recombination, and repair. T7 gene 2.5 protein has two distinctive domains, DNA binding and C-terminal domain, directly involved in protein-protein interaction. Gene 2.5 protein participates in the DNA replication of Bacteriophage T7, which makes this protein essential for the T7 growth and DNA replication. What gene 2.5 protein makes important at T7 growth and DNA replication is its binding affinity to single-stranded DNA and the protein-protein important at T7 DNA replication proteins which are essential for the T7 DNA synthesis. We have constructed pGST2.5(WT) encoding the wild-type gene 2.5 protein and pGST2.5$\Delta $21C lacking C-terminal 21 amino acid residues. The purified GST-fusion proteins, GST2.5(WT) and GST2.5(WT)$\Delta$21C, were used for whether the carboxyl-terminal domain participates in the protein-protein interactions or not. GST2.5(WT) and GST2.5$\Delta$21C showed the difference in the protein-protein interaction. GST2.5(WT) interacted with T7 DNA polymerase and gene 4 protein, but GST2.5$\Delta$21C did not interact with either protein. Secondly, GST2.5(WT) interacts with gene 4 proteins (helicase/primase) but not GST2.5$\Delta$21C. these results proved the involvement of the carboxyl-terminal domain of gene 2.5 protein in the protein-protein interaction. We clearly conclude that carboxy-terminal domain of gene 2.5 protein is firmly involved in protein-protein interactions in T7 replication proteins.
DNA 복제시 중추적 단백질은 DNA 합성을 수행하는 DNA polymerase이다. 따라서 DNA polymerase의 구조 및 기능에 대한 연구는 DNA polymerase의 중합반응에 대한 기작을 비롯하여 교정 및 수선기능에 대한 정보를 얻게 함으로써 복잡한 DNA 복제 기적을 이해하는 첩경이 된다. Bacteriophage T7의 Gene 5 단백질은 T7 DNA polymerase로 Richardson group에 의해 처음으로 발견되었으며, E. coli의 12 KDa thioredoxin과 tight complex를 형성한다. T7 DNA polymerase의 클로닝은 분자생물학의 새로운 장을 열어준 중요한 의미를 지닌다 . 본 연구에서는 T7 DNA polymerase의 구조적, 기능적 특성을 파악하고 DNA 염기서열 분석에의 응용 및 DNA 염기서열 결정을 위한 새로운 전략 및 최근연구 동향에 대해 기술하였다.
The Bombyx mori parvo-like virus (China isolate) DNA polymerase (BmDNV-3 dnapol) gene has been tentatively identified based on the presence of conserved motifs. In the present study, we perform a transcriptional analysis of the BmDNV-3 dnapol gene using the total RNA isolated from BmDNV-3 infected silkworm at different times. Northern blot analysis with a BmDNV-3 dnapol-specific riboprobe showed a major transcript of 3.3 kb. 5'-RACE revealed that the major transcription start point was located 20 nucleotides downstream of the TATA box. In a temporal expression analysis using differential RT-PCR, BmDNV-3 dnapol transcript was detected at low levels at 6 h.p.i., increased from 6 to 36 h.p.i., and remained fairly constant thereafter. Analysis of the predicted DNA polymerase sequence using neighborjoining and protein parsimony algorithms indicated that the predicted 1115-residue polypeptide contained five motifs associated with DNA polymerases synthetic activities and three additional motifs associated with polymerases possessing 3' to 5' exonuclease activity. The molecular phylogenetic analysis of this gene supported the placement of Bombyx mori parvo-like virus in a separate virus family.
Seo, Min-Ho;Kim, Bu-Kyoung;Kwak, Pyung-Hwa;Kim, Han-Woo;Kim, Yeon-Hee;Nam, Soo-Wan;Jeon, Sung-Jong
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.37
no.1
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pp.17-23
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2009
The gene encoding Thermus thermophilus HJ6 DNA polymerase (Tod) was cloned and sequenced. The open reading frame (ORF) of the Tod gene was composed of 2,505 nucleotides and encoded a protein (843 amino acids) with a predicted molecular weight of 93,795 Da. The deduced amino acid sequence of Tod showed 98% and 86% identities to the Thermus thermophilus HB8 DNA pol and Thermus aquaticus DNA pol, respectively, The Tod gene was expressed under the control of the bacteriophage $\lambda$ promoters PR and PL on the expression vector pJLA503 in Escherichia coli strain BL21 (DE3) codon plus. The expressed enzyme was purified by heat treatment, $HiTrap^{TM}$ Q column, and $HiPrep^{TM}$ Sephacryl S-200 HR 26/60 column chromatographies. The optimal temperature and pH for DNA polymerase activity were found to be $75{\sim}80^{\circ}C$ and 9.0, respectively. The optimal concentrations of $Mg^{2+}$ and $Mn^{2+}$ were 2.5 mM and 1 mM, respectively. The enzyme activity was activated by divalent cations, and was inhibited by monovalent cations. The result of the PCR experiment with Tod DNA polymerase indicates that this enzyme might be useful in DNA amplification and PCR-based applications.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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