The sequence of 3,221 nucleotides immediately adjacent to rpsA gene encoding 30S ribosomal protein S1 of Brevibacterium ammoniagenes was determined. A putative open reading frame (ORF) of 2,670 nucleotides for a polypeptide of 889 amino acid residues and a TAG stop codon was found, which is located at a distance of 723 nucleotides upstream from rpsA gene with same translational direction. The deduced amino acid sequence of the ORF was found to be highly homologous to the DNA polymerase I of Streptomyces griseus (75.48%), Rhodococcus sp. ATCC 15963 (56.69%), Mycobacterium tuberculosis (55.46%) and Mycobacterium leprae (53.99%). It was suggested that the predicted product of the ORF is a DNA polymerase I with three functional domains. Two domains of 5 → 3 exonuclease and DNA polymerase are highly conserved with other DNA polymerase I, but 3 → 5 exonuclease domain is less conserved.
The gene encoding Aquifex pyrophilus (Apy) DNA polymerase was cloned and sequenced. The Apy DNA polymerase gene consists of 1,725 bp coding for a protein with 574 amino acid residues. The deduced amino acid sequence of Apy DNA. polymerase showed a high sequence homology to Escherichia coli DNA polymerase I-like DNA polymerases. It was deduced by amino acid sequence alignment that Apy DNA polymerase, like the Klenow fragment, has only the two domains, the $3'{\rightarrow}5'$ exonuclease domain and the $5'{\rightarrow}3'$ polymerase domain, containing the characteristic motifs. The Apy DNA polymerase gene was expressed under the control of T7lac promoter on the expression vector pET-22b(+) in E. coli. The expressed enzyme was purified by heat treatment, and Cibacron blue 3GA and $UNO^{TM}$ Q column chromatographies. The optimum pH of the purified enzyme was 7.5, and the optimal concentrations of KCl and $Mg^{2+}$ were 20 mM and 3 mM, respectively. Apy DNA polymerase contained a double strand-dependent $3'{\rightarrow}5'$ proofreading exonuclease activity, but lacked any detectable $5'{\rightarrow}3'$ exonuclease activity, which is consistent with its amino acid sequence. The somewhat lower thermostability of Apy DNA polymerase than the growth temperature of A. pyrophilus was analyzed by the comparison of amino acid composition and pressure effect.
Among dozens of DNA polymerases cloned from thermophilic bacteria, Taq DNA polymerase from Thermus aquaticus has been most frequently used in polymerase chain reaction (PCR) that is being applied to gene cloning, DNA sequencing, gene expression analysis, and detection of infectious and genetic diseases. Since native Taq DNA polymerase is expressed at low level in T. aquaticus, recombinant Escherichia coli system was used to produce Taq DNA polymerase in a large amount. Taq DNA polymerase was expressed as a soluble form under the control of tac promoter in E. coli, and purified by heat treatment and ion exchange chromatographies. The purified Taq DNA polymerase was nearly homogeneous and exhibited a similar DNA amplification activity with a commercial Taq DNA polymerase.
The gene encoding Pyrobaculum arsenaticum DNA polymerase (Par DNA polymerase) was cloned and sequenced. The gene consists of 2,361 bp coding for a protein with 786 amino acid residues. The deduced amino acid sequence of Par DNA polymerase showed a high similarity to archaeal family B-type DNA polymerases (Group I), and contained all of the motifs conserved in the family B-type DNA polymerases for $3'{\rightarrow}5'$ exonuclease and polymerase activities. The Par DNA polymerase gene was expressed under the control of the T7lac promoter on the expression vector pET-22b(+) in Escherichia coli BL21-CodonPlus(DE3)-RP. The expressed enzyme was purified by heat treatment, and Cibacron blue 3GA and $Hirap^{TM}$ Heparin HP column chromatographies. The optimum pH of the purified enzyme was 7.5. The enzyme activity was activated by divalent cations, and was inhibited by EDTA and monovalent cations. The half-life of the enzyme at $95^{\circ}C$ was 6 h. Par DNA polymerase possessed associated $3'{\rightarrow}5'$ proofreading exonuclease activity, which is consistent with its deduced amino acid sequence. PCR experiment with Par DNA polymerase showed an amplified product, indicating that this enzyme might be useful in DNA amplification and PCR-based applications.
In order to overexpress bacteriophage PRD1 DNA polymerase in E. coli cells, the 2 kb HaeII fragment was isolated from phage genomic DNA. This fragment was then cloned into pEMBL/sup ex/ 3-expression vector. A specific 57bp deletion was performed by using uracil containing ss DNA and oligonucleotide spanning each region to remove an unwanted non-coding region. After this deletion, the PRD1 DNA polymerase gene is totally under the control of the vector promoter and SD sequence. Upon heat induction, a protein with an apparent size of 68 kdal was overexpressed as an active PRD1 DNA polymerase. The expression of PRD1 DNA polymerase was about 1% of total E. coli protein.
Kim, Eun-Kyoung;Youn, Hye-Sook;Koo, Yong-Bom;Roe, Jung-Hye
Journal of Microbiology
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제35권4호
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pp.264-270
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1997
The structure of plasmid mlp1, a linear 10.2kb mitochondrial plasmid of Pleurotus ostreatus NFF A2 was determined by restriction enzyme mapping and partial sequencing. The plasmid encodes at least two proteins; a putative RNA polymerase showing homology to yeast mitochondrial RNA polymerase and to viral-encoded RNA polymerases, and a putative DNA polymerase showing significant homology to the family B thpe DNA polymerases. It also contains terminal inverted repeat sequences at both ends which are longer than 274 bp. A 1.6 kb EcoRI restriction fragment of m1p1 containing the putative RNA polymerase gene did not hybridize to the nuclear or motochondrial genomes from P. ostreatus, suggesting that it may encode plasmidspecific RNA polymerase. The gene fragment also did not hybridize with the RNA polymerase gene (RPO41) from Saccaromyces cerevisiae. The relationship between genes in m1p1 and those in another linear plasmid pC1K1 of Claviceps purpurea was examined by DNA hybridization. The result indicates that the genes for DNA and RNA polymerases are not closely related with those in C. purpurea.
박테리오파지 T7 gene 2.5 단백질은 single-stranded DNA 결합 단백질로 박태리오파지 T7의 DNA복제, 재조합, 및 수선에 필수적으로 요구된다. Gene 2.5 protein은 T7의 DNA 합성과 성장에 필수적인 단백질이다. Gene 2.5 Protein이 중요시 되는 이유는 이 단백질이 T7의 다른 복제 필수단백질인 T7의 다른 복제 필수단백질인 T7 DNA polymerase 와 gene 4 protein(helicase/primase)와 서로 상호작용할 것으로 제안되었기 때문이다. (Kim and Richardson, J. Biol. Chem., 1992;1994). 이 단백질의 단백질 상호작용을 가능하게 하는 domain은 carboxyl-terminal domain일 것으로 여러 실험에서 대두되었기에, 이 domain의 특성을 파악하기 위해 야생형과 변이체 gene 2.5 단백질들을 각각 GST에 융합한후 fusion 단백질을 정제하였다. 정제된 이 융합 단백질들의 carboxyl-terminal domain이 T7 복제 단백질들과 상호작용을 조사하는지를 조사하기 위해 affinity chromatography로 이용하였다. 실험 결과, 아생형 GST-gene 2.5 융합단잭질(GST-2.5 (WT))는 T7 DNA polymerase 와 상호작용을 하였지만. 변이형 융합단백질(GST-2.5$\Delta$21C)는 interaction을 하지 못했다. 이 결과는 carbohyl-terminal domain이 단백질-단백질 상호작용을 하는데 직접적으로 관여하는 것을 증명하였다. 또한,GST2.5(WT)는 gene 4 protein(helicase/primase)와 직접 상호작용을 하나. GST2.5$\Delta$21C는 상호작용을 하지 못하는 것으로 나타났다. 따라서 gene 4 proteins와의 상호작용에도 gene 2.5 protein의 carboxyl-terminal domain이 직접 관여 한다는 것이 증명되었다. 이상의 결과에서 gene 2.5 protein은 박테리오파지 T7 의 유전자 목제 시 단백질-단백질 상호작용에 관혀아며, 특히 gene 2.5 protein의 carboxyl-terminal domain이 이러한 상호작용에 직접적으로 관여하는 domain이라는 것을 알 수가 있었다.
DNA 복제시 중추적 단백질은 DNA 합성을 수행하는 DNA polymerase이다. 따라서 DNA polymerase의 구조 및 기능에 대한 연구는 DNA polymerase의 중합반응에 대한 기작을 비롯하여 교정 및 수선기능에 대한 정보를 얻게 함으로써 복잡한 DNA 복제 기적을 이해하는 첩경이 된다. Bacteriophage T7의 Gene 5 단백질은 T7 DNA polymerase로 Richardson group에 의해 처음으로 발견되었으며, E. coli의 12 KDa thioredoxin과 tight complex를 형성한다. T7 DNA polymerase의 클로닝은 분자생물학의 새로운 장을 열어준 중요한 의미를 지닌다 . 본 연구에서는 T7 DNA polymerase의 구조적, 기능적 특성을 파악하고 DNA 염기서열 분석에의 응용 및 DNA 염기서열 결정을 위한 새로운 전략 및 최근연구 동향에 대해 기술하였다.
The Bombyx mori parvo-like virus (China isolate) DNA polymerase (BmDNV-3 dnapol) gene has been tentatively identified based on the presence of conserved motifs. In the present study, we perform a transcriptional analysis of the BmDNV-3 dnapol gene using the total RNA isolated from BmDNV-3 infected silkworm at different times. Northern blot analysis with a BmDNV-3 dnapol-specific riboprobe showed a major transcript of 3.3 kb. 5'-RACE revealed that the major transcription start point was located 20 nucleotides downstream of the TATA box. In a temporal expression analysis using differential RT-PCR, BmDNV-3 dnapol transcript was detected at low levels at 6 h.p.i., increased from 6 to 36 h.p.i., and remained fairly constant thereafter. Analysis of the predicted DNA polymerase sequence using neighborjoining and protein parsimony algorithms indicated that the predicted 1115-residue polypeptide contained five motifs associated with DNA polymerases synthetic activities and three additional motifs associated with polymerases possessing 3' to 5' exonuclease activity. The molecular phylogenetic analysis of this gene supported the placement of Bombyx mori parvo-like virus in a separate virus family.
PCR법을 이용하여 Thermus thermophilus HJ6 유래 DNA polymerase(Tod) 유전자를 클로닝하고 염기서열을 분석한 결과, ORF는 2,505개의 뉴클레오타이드로 구성되고 834개의 아미노산을 암호화하였다. 아마노산 서열을 바탕으로 상동성을 분석한 결과, Thermus thermophilus HB8 유래 DNA polymerase와 98%, Thermus aquaticus 유래 DNA polymorase와 86%의 identity를 나타내었다. 이 유전자를 박테리오파지 $\lambda$ 유래 온도감수성 프로모터(PR, PL)를 포함하는 pJLA503 벡터를 이용하여 대장균에서 발현하였다. 발현된 효소는 열처리, $HiTrap^{TM}$ Q column과 $HiPrep^{TM}$ Sephacryl S-200 HR 26/60 columun으로 정제하여 94 kDa의 단백질을 얻을 수 있었다. 정제된 효소의 DNA 중합 활성에 대한 최적온도는 $75{\sim}80^{\circ}C$이고 최적 pH가 9.0이었다. $Mg^{2+}$ and $Mn^{2+}$에 대한 최적 농도는 각각 2.5mM과 1mM이었고 효소활성은 2가 양이온의 존재 하에서는 활성화 되지만 1가양이온에서는 저 해되었다. Tod DNA 중합효소를 이용한 PCR 실험결과, Tod DNA 중합효소는 DNA 증폭 및 PCR 관련 기술에 응용 가능할 것으로 생각된다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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