Potato virus Y (PVY) is one of the most important viruses in many field crops in Korea. In this study, 31 PVY isolates were isolated from infected potato (Solanum tuberosum), tobacco (Nicotiana tabacum), pea (Pisum sativum), and weeds (Veronica persica, Lamium amplexicause and Capsella bursa-pastoris) showing different mosaic symptoms in Jeonbuk, Chungnam, Gangwon, and Gyeongbuk areas in Korea. The 640 nucleotide region containing the C-terminal portion of coat protein (CP) gene and 3'non-translated region (NTR) was amplified by reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR) using PVY-specific oligonucleotide primers. Sequence analyses of the amplified DNA fragments showed that the C-terminal portion of CP gene was not significantly different from that of previously reported PVY strains from potato (PVY-OK and -T) and tobacco (PVY-VN) in Korea. Homologies of the deduced CP amino acid sequences were 93.3-99.0% to corresponding regions of the other PVY strains including PV $Y^{N}$, PV $Y^{o}$ , PV $Y^{OK}$ , PV $Y^{T}$ , and PV $Y^{VN}$ . In contrast the sequences located at the 3'-NTR showed more diverse sequence homologies (76.4-99.7%). These results indicate that the C-terminal portion of the CP gene was relatively conserved while sequences at the 3'NTR were more diverse and variable over the host species and the regions where they were isolated.e isolated.
Kim, Seok-Ryel;Jeong, Byeong-Mun;Jung, Sung-Ju;Kitamura, Shin-Ichi;Kim, Du-woon;Kim, Do-Hyung;Oh, Myung-Joo
Journal of fish pathology
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v.21
no.1
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pp.13-20
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2008
This study evaluates the pathogenicity in striped beakperch, Oplegnathus fasciatus infected with red sea bream iridovirus (RSIV) at different water temperature (17°C, 20°C, 25°C and 27°C). When the fish group was infected with RSIV at 17°C and 20°C, cumulative mortality did not show any significant difference with control group. In contrast, the case at 25°C and 27°C, cumulative mortality reached more than 80%. However, RSIV was detected from all of the fish in each temperature. To confirm a relationship between temperature change and heat shock protein (HSP), partial HSP70 cDNA was isolated from striped beakperch.
Aqualysin I is an alkaline serine protease which is secretet into the culture medium by Thermus aquaticus YT-1, an extreme thermophile. Aqualysin I was purified, and its partial amino acid sequence was determined. The gene encoding aqualysin I was cloned into E. coli using synthetic oligodeoxyribonucleotides as hybridization probes. The nucleotide sequence of the cloned DNA was determined. The primary structure of aqualysin I, deduced from the nucleotide sequenc, agreed with the determid amino acid sequences, including the $NH_2-$ and COOH terminal sequence of the tryptides derived from aqualysin I. Aqualysin I comprised 281 amino acid residues and its molecular mass was determined to be 28350. On alignment of the whole amino acid sequence, aqualysin I showed high sequence homology with the subtilisin type serine protease, and 43% identity with proteinase K, 37-30% with subtilisins and 34% with thermitase. Extremely high sequence identity was observed in the regions containing the active-site residues, corresponding to Asp32, His64 and Ser221 of subtilisin BPN'. Aqualysin I contains two disulfide bonds, Cys67-Cys99 and Cys163-Cys194, and these disulfide bonds seem to contribute to the heat stability of the enzyme. The determined positions of the twe disulfide bonds of aqualysin I agreed with those predicted previously on the basis of computer graphics of the crystallographic data for subtilisin BPN'. Therefore, these findings sugests that the three-dimensional structure of aqualysin I is similar to that of subtilisin BPN' Aqualysin I is produced as a lage precursor, which contains $NH_2-$ and COOH- terminal portions besides the mature protease sequence.
Ordered differential display using RT-PCR (ODD-PCR) was conducted to have a profile of the differently expressed genes between a hypovirulent strain of Cryphonectria parasitica (UEP1) and its isogenic wild type strain (EP155/2). ODD-PCR has advantages of high sensitivity, reproducibility, proportional representation, and limited number of primer combinations comparing with other differential display methods. RNAs were prepared from 1 and 5 day liquid culture of both hypovirulent and wild type strains, and were further evaluated with the marker genes of C. parasitica such as cryparin and mating factor MF2-1, which were already proven to be specifically down-regulated by the presence of mycovirus CHV1-713. ODD-PCR was conducted using those RNAs and expressed genes were categorized to five groups according to their temporal and quantitative expression patterns. Those fives groups are CPC, CPE, CPL, CPD, and CPU which represent constitutively-expressed, early-expressed, late-expressed, down-regulated, and up-regulated, respectively. Ninety two primer combinations out of a total of 192 have been tested so far. Among the twenty to fifty distinct bands per each reaction, an average of four to ten genes was identified as viral-regulated fungal genes. Those viral-specifc genes were further analyzed by DNA sequencing followed by homology search. Characterization of 30 clones including all five groups were conducted as a preliminary data and more are under investigation.
To construct transformed Bm5 cells, Autographa californica nuclear polyhedrosis virus (AcNPV)IE1 gene, an immediate early viral gene was firstly used in this study. AcNPV IE1 gene, which shares on 95.3% uncleotide sequence homology with Bombyx mori nuclear polyhedrosis virus (BmNPV) IE1 gene, was isolated and cloned into pBluescript. Neomycin gene from pKO-neo was inserted under the control of the IE1 promoter to yield pAcIE1-neo. The plasmid pAcIE1-neo was transfected into Bm5 or Sf9 cells, and neomycin-resistant cells were selected in TC100 medium containing 10% fetal bovine serum (FBS) and 1 mg/$m\ell$ G418 for two weeks. Individual clones were picked and each was amplified for further characterization. The genomic DNA from neomycin-resistnt cells was isolated and characterized by PCR using AcNPV IE1 gene-specific primers and by Southern blot analysis using neomycin gene probe. We concluded that AcNPV IE1 gene was functional in B. moridrived Bm5 cells as well as Spodaptera frugiperda-derived Sf9 cells to produce stably-transformed insect cells.
Kim, Hee-Jung;Kang, Dae-Young;Kim, Eun-Mi;Kim, Eun-Gik;Lee, Bu-Heung;Yeo, Sang-Geon;Park, Choi-Kyu
Korean Journal of Veterinary Service
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v.37
no.3
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pp.219-224
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2014
A eight-month-old blue and yellow macaw (Ara ararauna) with psittacine beak and feather disease (PBFD)-suspected signs, such as, abnormal feather, depression and diarrhea, was presented to Animal Disease Intervention Center, Kyungpook National University in 16 April 2014. The partial ORF V1 gene of PBFD virus (PBFDV) was detected by polymerase chain reaction (PCR) from DNA templates extracted from feather, blood and cloacal swab sample of the bird, but no other viral DNAs that often infected in psittacine birds including avian bornavirus and avian polyomavirus were detected from the samples of the bird, indicating this case is due to single infection of PBFDV. Nucleotide sequence analysis of the amplified partial ORF V1 gene was confirmed to have 96.7% and 93.6% homology with that of previously reported PBFDV strain (Genbank no. HM748924 and FJ685980). This report describes the first detection of PBFDV in PBFD-suspected blue and yellow macaw in Korea.
In early April 2014, a month-old Alexandrine Paraqeet (Psittacula eupatria) that was raised in a domestic aviary located in Gyungju-si, Korea was suddenly died and submitted to Animal Disease Intervention Center, Kyungpook National University in order to diagnose the causative agent. In post-mortem examination, the bird had abnormally developed feathers on the neck and abdomen region and subcutaneous hemorrhages on the neck and cheek adjacent to the beak. At necropsy, the bird had hemorrhage on the muscle of the femoral region, ascites, multi-focal hemorrhages on the epicardium, and diffuse hemorrhages on the sub-serosa of proventriculus and gizzard, suggesting typical avian polyomavirus (APV) infection. The partial large tumor (T) antigen gene of APV was detected by PCR from tissues of the heart, lung, liver, kidney, proventriculus and feathers of the APV-suspected birds. However, other pathogenic virus-specific nucleic acid common with psittacine birds such as avian bornavirus, psittacine beak and feather disease virus and psittacid herpesvirus were not detected from the mixed tissue samples of the bird, indicating this case is due to single infection of APV. Nucleotide sequence analysis of the partially amplified large T antigen DNA was confirmed to have 99~100% homology with that of the previously reported APV strains. This case report describes the first detection of APV in Alexandrine Paraqeet in Korea.
Differentially expressed genes(DEG) were identified in a rice variety, Sathi, an indica type showing high allelopathic potential against barnyardgrass(Echinochloa crus-galli(L.) Beauv. var. frumentaceae). Rice plants were grown with and without barnyardgrass and total RNA was extracted from rice leaves at 45 days after seeding. DEG full-screening was performed by $GeneFishing^{TM}$ method. The differentially expressed bands were re-amplified and sequenced, then analyzed by Basic Local Alignment Search Tool(BLAST) searching for homology sequence identification. Gel electrophoresis showed nine possible genes associated with allelopathic potential in Sathi, six genes(namely DEG-1, 4, 5, 7, 8, and 9) showed higher expression, and three genes(DEG-2, 3 and 6) showed lower expression as compared to the control. cDNA sequence analysis showed that DEG-7 and DEG-9 had the same sequence. From RT PCR results, DEG-6 and DEG-7 were considered as true DEG, whereas DEG-1, 2, 3, 4, 5, and 8 were considered as putative DEG. Results from blast-n and blast-x search suggested that DEG-1 is homologous to a gene for S-adenosylmethionine synthetase, DEG-2 is homologous to a chloroplast gene for ribulose 1,5-bisphosphate carboxylase large subunit, DEG-8 is homologous to oxysterol-binding protein with an 85.7% sequence similarity, DEG-5 is homologous to histone 2B protein with a 47.9% sequence similarity, DEG-6 is homologous to nicotineamine aminotransferase with a 33.1% sequence similarity, DEG-3 has 98.8% similarity with nucleotides sequence that has 33.1% similarity with oxygen evolving complex protein in photosystem II, DEG-7 is homologous to nucleotides sequence that may relate with putative serin/threonine protein kinase and putative transposable element, and DEG-4 has 98.8% similarity with nucleotides sequence for an unknown protein.
An Actinomycetes producing an anti-VRSA (vancomycin-resistant Staphylococcus aureus) substance was isolated from soil. The cultural, morphological, physiological and phylogenetic analyses of an isolated strain were investigated for identification. Cultural characteristics based on ISP (International Streptomyces Project) were as follows: white aerial mycelium, yellow reverse side, and good growth on various medium. Also, the isolate did not produce the soluble pigment. Morphological characteristics were showed cylindrical spore chain and smooth spore surface by SEM (Scanning Electron Microscope). Physiological characteristics were showed LL-type by DAP isomer analysis and detected glycine, glutamic acid and alanine. A phylogenetic analysis of the 16S rDNA provided a clue that the isolated strain was actually a member of the genus Streptomyces, because the determined sequence exhibited a higher homology with Streptomyces echinatus. The isolate was identified to be a genus of Streptomyces sp.. The optimal culture conditions for the maximum production of anti-VRSA substance by Streptomyces sp. were attained in a culture medium composed of $2.0\%$ (w/v) glucose, and $0.4\%$ (w/v) yeast extract. The anti-VRSA substance was highly produced after 5 days of culture. Optimal pH and temperature conditions for the production of anti-VRSA substance were pH 7.0 and $28^{\circ}C$, respectively.
Proceedings of the Botanical Society of Korea Conference
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1999.07a
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pp.63-67
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1999
We have isolated more than a dozen cDNA clones corresponding to genes that were expressed in Arabidopsis leaves when they were kept in the dark. The nucleotide sequence analysis showed that some of the clones encoded proteins with significant homology to $\beta$-glucosidase (din2), branched-chain $\alpha$-keto acid dehydrogenase subunit E1$\beta$(din3), and another subunit E2 (din4), yeast RAD23 (din5), asparagine synthetase (din6), pre-mRNA splicing factor SRp35 (din7), phosphomannose isomerase (din9), seed imbibition protein (din10), and 2-oxoacid-dependent oxidase (din11). Accumulation of transcripts from din3,4,6 and 10 occurred rapidly after the plants were transferred to darkness. Transcripts from din2,9, and 11 could be detected only after 24 h of dark treatment. Inhibition of photo-synthesis by DCMU strongly induced the accumulation of transcripts from those genes, and application of sucrose to detached leaves suppressed the accumulation both in the dark and by DCMU. These observations indicate that expression of the genes is caused by sugar starvation resulted from the cessation of photosynthesis. We further showed that din2-encoded protein also accumulated in senescing leaves. Given these results, possible roles of din genes in leaves in the dark and senescing leaves are discussed.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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