We examined mRNAs, isolated from the rat brain, to ascertain if there is any polymorphism for S-100 beta protein gene. As templates for polymerase chain reaction (PCR) the reverse-transcribed cDNA from the rat brain or phage DNAs isolated from the rat brain cDNA libraries were used. Although PCR products turned out to be exactly same as the expected size based on the previously reported mRNA sequence a single base substitution (CAT to CAC) was identified at nucleotide level. This change was considered as polymorphism since it did not cause any change of the primary structure for S-100 beta protein. This result should facilitate the understanding of the overall structure of the gene for S-100 beta protein.
본 연구는 목저은 다음과 같다: 1) 돼지에서 150-kDa temary insulin-like growth faetor(IGF)complex의 한 구성 요소인 acid-labile subunit(ALS) 유전자 intron의 존재 확인. cloning 및 돼지 ALS(porcine ALS; pALS) complementary DNA(cDNA)의 3' 비해독(untranslated) 부위(3' UT) 증폭. cloning, 2) intron-spanning primer pair를 이용한 reverse transcription-polymerase chain reaction(RT-PCR) 방법에 의한 돼지 조직에서의 ALS 유전자 발현 분포 확인 및 3) 돼지 hepatocyte에서의 ALS 유전자 발현 여부 확인. 돼지 genomic DNA를 template로 하여 PCR 방법으로 예상된는 intron 부위를 증폭하고 plasmid vector에 삽입하여 염기서열을 결정한 결과 타 종의 ALS 유전자에서와 같은 위치에 1,371-base pair(bp)의 pALS intron이 존재함을 확인하였다. 역시 본 연구에서 간에서 추출한 RNA를 주형으로 시작하여 3' rapid amplification of cDNA end(3' RACE) 방법으로 147-bp의 3'UT를 합성하고 그 염기성열을 결정하였다. RT-PCR 결과 간은 물론 조사된 모든 돼지의 내장기관(신장, 폐, 비장)과 자성 생식기관(난소, 난관, 자궁) 및 골격근육에서 ALS 유전자가 발현됨이 밝혀졌다. 또한 돼지 간 조직에 대한 in-situ hybridization 결과 hepatocyte에서 ALS 유전자가 발현됨이 확인되었다. 이상의 결과는 ALS가 혈중 IGF의 저정/조절체로서의 주기능 외에 모세혈관 밖에서도 미지의 기능이 있을 기능성을 시사한다.
Double stranded targets on the cDNA microarray contain representatives of both the coding and noncoding strands, which will introduce hybridization competition with probes. Here, the effect of double and single strands of targets on the signal intensity and the ratios of Cy5/Cy3 within the same slide were compared. The results show that single stranded targets can increase the hybridization efficiency without changing the Cy5/Cy3 ratio. Based on these results, a new strategy was established by generating cDNA targets with asymmetric PCR, instead of conventional PCR, to increase the sensitivity of the cDNA microarray. Furthermore, the feasibility of this approach was validated. The results indicate that the cDNA microarray system based on asymmetric PCR is more sensitive, with no decrease in the reliability and reproducibility as compared with that based on conventional symmetric PCR.
A gene encoding the dextransucrase(dsCB) that synthesizes mostly $\alpha-(1\rightarrow6)$ linked dextran with low amount(10%) of $\alpha-(1\rightarrow3)$ branching was cloned and sequenced from Leuconostoc mesenteroides B-742CB. The 6.1 kbp DNA fragment carrying dsCB showed one open reading frame(ORF) composed of 4,536bp. The deduced amino acid sequence shows that it begins from the start codon(ATG) at position 698 of the cloned DNA fragment and extends to the termination condon(TAA) at position 5,223. The enzyme is consisted of 1,508 amino acids and has an calculated molecular mass of 168.6kDa. This calculated Mw was in good agreement with an activity band of 170kDa on non-denaturing SDS-PAGE. A recombinant E. coli DH5 $alpha$ harboring pDSCB produced extracellular dextransucrase in 2% sucrose medium, and synthesized both soluble and insoluble dextran. To compare the properties of enzyme with B-742CB dextransucrase, the acceptor reaction, hydrolysis of dextran and methylation were performed. The expressed enzyme showed the same properties as B-742CB dextransucrease, but its ability to synthesize $\alpha-(1\rightarrow3)$ branching was lower than that of B-742CB dextransucrase. In order to identify the critical amino acid residues known as conserved regions related to catalytic activity, Asp-492 was replaced with Asn. D492N resulted in a 1.6 fold decrease in specific activity.
Lee, Y.Y.;Kim, M.S.;Park, J.J.;H.Y. Kang;Y.M. Chang;Yoon, J.T.;K.S. Min
Proceedings of the Korean Society of Developmental Biology Conference
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2003.10a
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pp.84-84
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2003
DNA methylation is involved in epigenetic processes such as X-chromosome inactivation, imprinting and silencing of transposons. DNA methylation is a highly plastic and critical component of mammalian development The DNA methyltransferases (Dnmts) are responsible for the generation of genomic methylation patterns, which lead to transcriptional silencing. The maintenance DNA methyltransferase enzyme, Dnmt 1, and the de novo methyltransferase, Dnmt3a and Dnmt3b, are indispensable for development because mice homozygous for the targeted disruption of any of these genes are not viable. The occurrence of DNA methylation is not random, and it can result in gene silencing The mechanisms underlying these processes are poorly understood. It is well established that DNA methylation and histone deacetylation operate along a common mechanistic pathway to repress transcription through the action of methyl-binding domain proteins (MBDs), which are components of, or recruit, histone deacetylase (HDAC) complexes to methylated DNA. As a basis for future studies on the role of the DNA-methyl-transferase in porcine development, we have isolated and characterized a partial cDNA coding for the porcine Dnmt1. Total RNA of testis, lung and ovary was isolated with TRlzol according to the manufacture's specifications. 5 ug of total RNA was reverse transcribed with Super Script II in the presence of porcine Dnmt 1 specific primers. Standard PCRs were performed in a total volume of 50 ul with cDNA as template. Two DNA fragmenets in different position were produced about 700bp, 1500bp and were cloned into pCR II-TOPO according to the manufacture's specification. Assembly of all sequences resulted in a cDNA from 158bp of 5'to 4861bp of 3'compare with the known human maintenance methyltransferase. Now, we are cloning the unknown Dnmt 1 region by 5'-RACE method and expression of Dnmt 1 in tissues from adult porcine animals.
Transmission electron microscopy of an ArGnthnmoebo isolate (KA/LS) from a contact lens case revealed bacterial endosymbionts within cytoplasm of the amoebae. The Acnnthamoebn isolate belonged to the morphological group ll. Based on the polymerase chain reaction (PCR) - restriction fragment leilgth polymorphism (RFLP) of 185 ribosomal RNA coding DNA (rDNA) , the isolate was identified as A. Iwnunensis. Strain typing by isoenzyme analysis using isorlectric focusing (IEF) and mitochondrial (Ent) DNA RFLP revealed that the isolate was closely related with KA/Ll , the most predominant type of isolates from contact lens storage casas, KA/E2, a clinical isolate, KA/W4, previou:fly reported to host endosymbionts. and L3a strains of A. Iwnunensis. The endosymbionts were similar to those of KA/W4 in a.jpects that they were randomly distributed in both trophozoites and cysts, and were rod-shaped bacteri3 measuring approximately 1.38 x 0.50 ㎛. But the number of endosymbionts per amoeba was significantly lower than that of KA/W4. They were neither limited by phagosomal membranes nor included in lacunae- like stnlcture.
We have cloned and analyzed cDNA coding for non-virion (NV) protein of the m V - P R T The NV gene contained 336 bp open readmg frame and encoded a protein of 11 1 amino acids with a molecular weight of 13.2 kDa. The deduced amino acid sequence of NV of IHNVPRT was found to be 90-95% identical to those of foreign isolates of IHNV. These results indicate that NV gene of the MNV is highly conserved among &ifferent strains of THNV Northern blot analyses revealed that the levels of NV gene expression were strongly elevated after 20 h post-infection. In order to identify the role of NV in the replication of MNV in fish cells, IHNVinfected cells were treated with antisense oligonucleotides. While IHNV-PRT exposed to glycoprotein (G) antisense oligonucleotide showed severely reduced growth, the growth of virus exposed to NV antisense oligonucleotide was not affected by NV antisense oligonucleotide, which suggests that NV is not essential for replication of IHNV in fish cells.
Objective: Aim of present study was the set up of a fast and reliable protocol using species-specific markers for the quali-quantitative analysis of DNA and the detection of ruminant biological components in dairy products. For this purpose, the promoter of the gene coding for the ${\alpha}$-lactoalbumin (LALBA) was chosen as possible candidate for the presence of short interspersed nuclear elements (SINEs). Methods: DNA was isolated from somatic cells of 120 individual milk samples of cattle (30), Mediterranean river buffalo (30), goat (30), and sheep (30) and the gene promoter region (about 600/700 bp) of LALBA (from about 600 bp upstream of exon 1) has been sequenced. For the development of a single polymerase chain reaction (PCR) protocol that allows the simultaneous identification of DNA from the four species of ruminants, the following internal primers pair were used: 5'-CACTGATCTTAAAGCTCAGGTT-3' (forward) and 5'-TCAGA GTAGGCCACAGAAG-3' (reverse). Results: Sequencing results of LALBA gene promoter region confirmed the presence of SINEs as monomorphic "within" and variable in size "among" the selected species. Amplicon lengths were 582 bp in cattle, 592 bp in buffalo, 655 in goat and 729 bp in sheep. PCR specificity was demonstrated by the detection of trace amounts of species-specific DNA from mixed sources ($0.25ng/{\mu}L$). Conclusion: We developed a rapid PCR protocol for the quali-quantitative analysis of DNA and the traceability of dairy products using a species-specific marker with only one pair of primers. Our results validate the proposed technique as a suitable tool for a simple and inexpensive (economic) detection of animal origin components in foodstuffs.
To clone the gene coding for steroid $\Delta^1$-dehydrogenase of Arthrobacter simplex, its genomic library was constructed with a , $\lambda$gt11 expression vector and immunoscreened with antiserum against the enzyme. One positive clone was found to carry a 1.6-kb EcoR I restriction endonuclease fragment of A. simplex DNA. The restriction map of the 1.6-kb EcoR I fragment was determined after cloning of the DNA into pBS vector.
The protein coding sequence of the 4-aminobutyrate aminotransferase was amplified by polymerase chain reaction (PCR) from a previously cloned cDNA of pig brain using a pair of primers based on the published sequence. The amplified DNA was introduced into a T7 expression vector. Recombinant 4-aminobutyrate aminotransferases were overexpressed in Escherichia coli. The inclusion bodies were formed when enzyme was overexpressed. The unfolded, overproduced proteins were purified by chromatography with hydroxyapatite and refolded by a sequential dialysis method. The renatured 4-aminobutyrate aminotransferase regained the catalytic activity. However, the purified mutant protein did not show the catalytic function of 4-aminobutyrate aminotransferase.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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