In this study, it is reported that a large polyprotein can be stoichiometrically cleaved by the use of caspase-3-dependent proteolysis. Previously, it has been shown that the proteolytic IETD motif was partially processed when treated with caspase-3, while the DEVD motif was completely cleaved. The cleavage efficiency of the DEVD-based substrate was approximately 2.0 times higher than that of the IETD substrate, in response to caspase-3. Based on this, 3 protein genes of interest were genetically linked to each other by adding two proteolytic cleavage sequences, DEVD and IETD, for caspase-3. Particularly, glutathione-S transferase (GST), maltose binding protein (MBP), and red fluorescent protein (RFP) were chosen as model proteins due to the variation in their size. The expressed polyprotein was purified by immobilized metal ion affinity chromatography (IMAC) via a hexa-histidine tag at the C-terminal end, showing 93 kDa of a chimeric GST:MBP:RFP fusion protein. In response to caspase-3, cleavage products, such as MBP:RFP (68 kDa), MBP (42 kDa), RFP (26 kDa), and GST (25 kDa), were separated from a large precursor GST:MBP:RFP (93 kDa) via SDS-PAGE. The results obtained from this study indicate that a multi-protein can be stoichiometrically produced from a large poly-protein by using proteolytic recognition motifs, such as DEVD and IETD tetra-peptides, for caspase-3.
Park, Kyoung-Sook;Yi, So-Yeon;Kim, Un-Lyoung;Lee, Chang-Soo;Chung, Jin-Woong;Chung, Sang-J.;Kim, Moon-Il
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.19
no.9
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pp.911-917
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2009
The apoptotic caspases have been classified in accordance with their substrate specificities, as the optimal tetrapeptide recognition motifs for a variety of caspases have been determined via positional scanning substrate combinatorial library technology. Here, we focused on two proteolytic recognition motifs, DEVD and IETD, owing to their extensive use in cell death assay. Although DEVE and IETD have been generally considered to be selective for caspase-3 and -8, respectively, the proteolytic cleavage of these substrates does not display absolute specificity for a particular caspase. Thus, we attempted to monitor the cleavage preference for caspase-3, particularly using the recombinant protein substrates. For this aim, the chimeric GST:DEVD:EGFP and GST:IETD:EGFP proteins were genetically constructed by linking GST and EGFP with the linkers harboring DEVD and IETD. To our best knowledge, this work constitutes the first application for the monitoring of cleavage preference employing the recombinant protein substrates that simultaneously allow for mass and fluorescence analyses. Consequently, GST:IETD:EGFP was cleaved partially in response to caspase-3, whereas GST:DEVD:EGFP was completely proteolyzed, indicating that GST:DEVD:EGFP is a better substrate than GST:IETD:EGFP for caspase-3. Collectively, using these chimeric protein substrates, we have successfully evaluated the feasibility of the recombinant protein substrate for applicability to the monitoring of cleavage preference for caspase-3.
Autophagy is a complex signaling process and has been implicated in tumor suppression and anticancer therapy resistance. Autophagy can produce tumor-suppressive effect by inducing autophagic cell death, either in collaboration with apoptosis. In this current study, we found that celecoxib (CCB), a nonsteroidal anti-inflammatory drug (NSAID) with multifaceted effects, induced autophagy including enhanced LC3 conversion (LC3-I to LC3-II) and reduced autophagy substrate protein p62 level in multidrug-resistant (MDR) cancer cells. CCB sensitized human multidrug resistant (MDR) cancer cells to the ansamycin-based HSP90 inhibitor 17-allylamino-17-demethoxygeldanamycin (17-AAG), a benzoquinoid ansamycin, which causes the degradation of several oncogenic and signaling proteins, by inducing autophagic cell death and apoptosis. CCB significantly augmented 17-AAG-mediated level of LC3-II/LC-I, indicating the combined effect of 17-AAG and CCB on the induction of autophagy. Autophagic degradation of mutant p53 (mutp53) and activation of caspase-3 in 17-AAG-treated MDR cells were accelerated by CCB. Inhibition of caspase-3-mediated apoptotic pathway by Z-DEVD-FMK, a caspase-3 inhibitor, did not completely block CCB-induced cell death in MCF7-MDR cells. In addition, treatment of MDR cells with Z-DEVD-FMK failed to prevent activation of autophagy by combined treatment with 17-AAG and CCB. Based on our findings, the ability of clinically used drug CCB to induce autophagy has important implications for its development as a sensitizing agent in combination with Hsp90 inhibitor of MDR cancer.
Curcumin a yellow pigment from Curcuma Tonga, has been known to possess antioxidative and anticarcinogenic properties, as well as to induce apoptosis in some cancer cells. There have been, however, several contradictory reports that hypothesized curcumin (a hydrophobic molecule) can bind a membrane Gpid bilayer and induce nonspecific cytotoxicity in some cell lines. Why curcumin shows these contradictory effects is unknown. In A-431 cells, growth inhibition by curcumin is due mostly to the specific inhibition of the intrinsic tyrosine kinase activity of the epidermal growth factor receptor, as reported earlier by Korutla et al. Thus, we assumed that the cell death of A-431 by curcumin might be due to the specific induction of apoptosis. In this paper we clearly show that curcumin induces apoptosis in A-431 cells. The cureumin-induced cell death of A-431 exhibited various apoptotic features, including DNA fragmentation and nuclear condensation. Furthermore, the curcumin-induced apoptosis of A-431 cells involved activation of caspase-3-like cysteine protease. Involvement of caspase-3 was further confirmed by using a caspase-3 specific inhibitor, DEVD-CHO. In another study, decreased nitric oxide (NO) production was also shown in A-431 cells treated with curcumin, which seems to be the result of the inhibition of the iNOS expression by curcumin, as in other cell lines. However, 24 h after treatment of curcumin there was increased NO production in A-431 cells. This observation has not yet been clearly explained. We assumed that the increased NO production may be related to denitrosylation of the enzyme catalytic site in caspase-3 when activated. Taken together, this study shows that the cell death of A-431 by curcumin is due to the induction of apoptosis, which involves caspase-3 activation.
To elucidate the apoptosis mechanism of Trichoplusia ni cell, fundamental studies for apoptosis induction and suppression were performed. Hygromycin B, a known inducer of apoptosis, started the inhibition of T. ni cell growth at $200\;{\mu}/ml$ concentration. Furthermore, at $400\;{\mu}/ml$ concentration, DNA fragmentation was detected on day 2 of incubation. Although both dexamethasone and sodium butyrate inhibited T. ni cell growth, DNA fragmentation was not detected by both treatments. Also, when apoptosis induced T. ni cells with $200\;{\mu}/ml$ hygromycin B were treated with caspase inhibitor (Ac-DEVD-CHO), the apoptotsis was suppressed by 36%. In addition, N-acetylcysteine, another apoptosis repressor, also inhibited the apoptosis of T. ni cells. In order to express the anti-apoptosis gene (bcl-2), T. ni cells were transiently transformed with bcl-2 and its expression was confirmed by western blot analysis. These results showed the potential of developing new insect cell lines with suppressed apoptosis.
SET (Suppressor of variegation, Enhancer of zeste, and the Trithorax) domain-containing proteins are known to have methyltransferase activity at lysine residues of histone proteins. In this study, we identified a novel SET domain-containing protein from mouse and named Kodo7. Indeed, Kodo7 has methyltransferase activity at K9 residue of the H3 protein as demonstrated by a histone methyl-transferse activity assay using GST-tagged Kodo7. Confocal microscopy showed that Kodo7 is co-localized with histones in the nucleus. Interestingly, ectopic expression of Kodo7 by transient transfection induced cell death and treatment of the transfectants with a caspase-3 inhibitor, Ac-DEVD-AFC decreased Kodo7-induced apoptosis. These results suggest that Kodo7 induces apoptotic cell death through increased methylation of histones leading to transcriptional repression.
Dially disulfide (DADS), a component of garlic (Allium sativum), has been known to exert potent chemopreventive activity against various cancers. In this study, the synergistic effect of DADS and daunorubicin on the cytotoxicity of HL-60 cells, a human leukemia cell line, was investigated. DADS at 25 M greatly potentiated daunorubicin-induced cell death, decreasing cell viabilityto50%ofthe control. Daunorubicin-induced apoptosis was accompanied by the activation of caspase-3, the degradation of poly-(ADP-ribose) polymerase (PARP) and D4-GDI, and DNA fragmentation, which were blocked by pre-treatment with acetyl-Asp-Glu-Val-Asp- dialdehyde (Ac-DEVD-CHO). Treatment that combined 25 M DADS and 100 nM daunorubicin caused a similar degree of caspase-3 activation, PARP and D4-GDI degradation, and DNA fragmentation to that caused by treatment with 250 nM daunorubicin alone. These results indicate that combined therapy using daunorubicin with DADS, a component of food, and garlic can effectively decrease the therapeutic dose of daunorubicin, preventing the severe side effects of daunorubicin.
In human neuroblastoma SK-N-BE(2) cells undergoing apoptotic death induced by ginsenos-ide Rh2, a dammarane glycoside that was isolated from Panax ginseng C. A. Meyer, caspase-1 and caspase-3 were activated. The expression of Bax was increased in the cells treated with ginsenoside Rh2, whereas Bcl-2 expression was not altered. Treatment with caspase-1 inhibi-tor, Ac-YVAD-CMK, or caspase-3 inhibitor, Z-DEVD-FMK, partially inhibited ginsenoside Rh2-induced cell death but almost suppressed the cleavage of the 116 kDa PARP into a 85 kDa fragment. When the levels of p53 were examined in this process, p53 accumulated rapidly in the cells treated early with ginsenoside Rh2. These results suggest that activation of caspase-1 and -3 and the up-regulation of Bax are required in order for apoptotic death of SK-N-BE(2) cells to be induced by ginsenoside Rh2, and p53 plays an important role in the pathways to promote apoptosis.
Nitric oxide(NO) induces apoptosis in human osteoblasts. Treatment with exogenous NO donors, SNAP (S-Nitroso-N-acelylpenicillamine) and SNP (sodium nitroprusside), to MG-63 osteoblasts resulted in apoptotic morphological changes, as shown by a bright blue-fluorescent condensed nuclei and chromatin fragmentation by fluorescence microscope of Hoechst 33258-staining. The activities of caspase-9 and the subsequent caspase-3-like cysteine proteases were increased during NO-induced cell death. Pretreatment with Z-VAD-FMK (a pancaspase inhibitor) or Ac-DEVD-CHO (a specific caspase-3 inhibitor) abrogated the NO-induced cell death. The NO donor markedly activated JNK, a stress-activated protein kinase in the human osteoblasts. This study showed that the inhibition of the JNK pathway markedly reduced NO-induced cell death. But neither PD98059 (MEK inhibitor) nor SB203580 (p38 MAPK inhibitor) had any effect on NO-induced death. Taken together, these results suggest that JNK/SAPK may be related to NO-induced apoptosis in MG-63 human osteoblasts.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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