Objective: Lectins are cell-agglutinating and sugar specific proteins or glycoproteins of non-immune origin that precipitate glycoconjugates having saccharides of appropriate complementarity. Because of these properties, plant lectins have been used to help characterize the carbohydrate moieties of glycoproteins in the zona pellucida (ZP) of several mammalian species including pigs. Treatment of oocytes with various lectins blocks sperm binding to the ZP in various mammalian species. This study was undertaken to examine the distribution of sugar residues in the ZP of pig oocytes matured in vitro and the ability of spermatozoa to bind to ZP and in vitro penetration in oocytes treated with fluorescein isothiocyanate (FITC)-labelled lectins. Materials and Methods: The lectins of Banderiaea simplicifolia (BS-II, bind to $\beta$-D-N-acetylglucosamine), Canavalin ensiformis (Con A, bind to $\alpha$-D-Mannose), Lens culinaris (LCA, bind to a-D-Mannose), Ricinus communis (RCA-I, bind to $\beta$-D-Galactose) and Ulex europaeus (UEA-I, bind to $\alpha$-L-Fucose) were examined for spermatozoa penetration, binding capacity to ZP and distribution of lectins. Results: The penetration rates were significantry (p<0.05) higher in control oocytes (63%) than those treated with all lectins, but penetration rates ($40{\sim}49%$) were simililar in group treated with lectins. The incidence of monospermy was similar in oocytes untreated and UEA-I, but it was higher in oocytes treated with BS-II, Con A, RCA-I and LCA. The porcine oocytes cultured for 48 h in TC-199 medium were freed from cumulus cells and treated for 30 min with fluorescein isothiocyanate-labelled lectins. When examined under fluorescein illumination, higher (p<0.001) proportions of oocytes showed fluorescein of zona pellucida after treatment with Con A (93%), LCA (93%) and RCA-I (100%) than BS-II (37%) and UEA-I (50%). All of the oocytes treated with RCA-I exhibited strong fluorescein in the outer region of the zona pellucida while those treated with LCA exhibited strong fluorescein throughout the zona pellucida. BS-II bounded mainly to the outer region and UEA-I bounded mainly to the inner region of the zona pellucida, with either strong or weak fluorescein. At 120 min after insemination in vitro, fewer spermatozoa were bound to the zona pellucida of the oocytes treated with BS-II, Con-A and RCA-I. Of the lectins, Con A most inhibited sperm binding. Conclusions: These results suggest that $\beta$-D-Galactose residues in the porcine zona pellucida may act as primary sperm receptors and inducers of the sperm acrosome reaction and these sugar residues may be involved in the block to polyspermy.
This study was designed to examine the ability of the bovine (MII) oocytes cytoplasm to support several mitotic cell cycles under the direction of differentiated somatic cell nuclei of bovine, porcine, mouse and human. Bovine GV oocytes were matured in TCM-199 supplemented with 10% FBS. At 20h after IVM, recipient oocytes were stained with 5 $\mu\textrm{g}$/$m\ell$ Hoechst and their 1st polar body (PB) and MII plate were removed by enucleation micropipette under UV filter. Ear skin samples were obtained by biopsy from an adult bovine, porcine, mouse and human and cultured in 10% FBS added DMEM. Individual fibroblast was anlaysed chromosome number to confirm the specificity of species. Nuclear transferred (NT) units were produced by electrofusion of enucleated bovine oocytes with individual fibroblast. The reconstructed embryos were activated in 5 $\mu$M ionomycin for 5 min followed by 1.9 mM 6-dimethylaminopurine (DMAP) in CR1aa for 3 h. And cleaved NT embryos were cultured in CR1aa medium containing 10% FBS on monolayer of bovine cumulus cell for 8 days. Also NT embryo of 4~8 cell stage was analysed chromosome number to confirm the origin of nuclear transferred somatic cell. The rates of fusion between bovine recipient oocytes and bovine, porcine, mouse and human somatic cells were 70.2%, 70.2%, 72.4% and 63.0%, respectively. Also, their cleavage rates were 60.6%, 63.7%, 54.1% and 62.7%, respectively, there were no differences among them. in vitro development rates into morula and blastocyst were 17.5% and 4.3% in NT embryos from bovine and human fibroblasts, respectively. But NT embryos from porcine and mouse fibroblasts were blocked at 16~32-cell stage. The chromosome number in NT embryos from individual fibroblast was the same as chromosome number of individual species. These results show that bovine MII oocytes cytoplasm has the ability to support several mitotic cell cycles directed by newly introduced nuclear DNA.
The addition of growth factors and cytokines to in vitro culture (IVC) media could affect embryo development and the quality of the resulting blastocysts. The present study was performed to investigate the effect of porcine induced pluripotent stem cell (piPSC)-culture conditioned medium (CM) on the in vitro maturation (IVM) and development of parthenogentic embryos (parthenotes) in pigs. Cumulus-oocyte complexes (COCs) or activated oocytes were cultured in IVM or IVC medium supplemented with 0 (control), 25, or 50% of stem cell medium (SM) or CM, respectively. The maturation rate of CM-25% group was significantly improved when compared with control group (p<0.05), but that was not different among SM or CM groups. Blastocyst formation rate was significantly higher in CM-25% group (29.2%) than that of control (20.7%), SM-50% (19.6%) and CM-50% (23.66%, p<0.05). Cell number and the apoptotic cell index in blastocysts was significantly lower in SM-25% than in CM-25% group (p<0.05). The embryo quality related genes, OCT4, KLF4, TERT and ZFP42, were significantly increased in CM-25% group compared with control (p<0.05). In conclusion, the addition of 25% of CM to IVM and IVC medium positively influences not only the developmental potential also quality of parthenotes in pig.
We investigated the optimal concentration and exposure time of cycloheximide(CHX) on development of activated porcine oocytes following electrical pulse(EP). After 42~44 h maturation, oocytes were treated with 0.1% hyaluronidase, and denuded cumulus cells by pipetting. Oocytes were stimulated by electric pulse (1.2 kV/cm, 30 $\mu$sec, 1 pulse) or incubated for 3, 5 and 7 h in cycloheximide (1, 5 and 10 $\mu\textrm{g}$/$m\ell$, respectively) following electric pulse, and cultured for 8 days. Cleavage rate of oocytes activated with 10 $\mu\textrm{g}$/$m\ell$ CHX following EP was significantly (P<0.05) higher than those of 1 $\mu\textrm{g}$/$m\ell$ (86.8% vs. 74.4%). The developmental competence of oocytes incubated to 5 $\mu\textrm{g}$/$m\ell$ of CHX was significantly (P<0.05) higher development to blastocysts (13.3%), compared with 10 $\mu\textrm{g}$/$m\ell$ of CHX (5.6%). When the oocytes were activated with 5$\mu\textrm{g}$/$m\ell$ CHX for 3, 5, and 7 h following EP, the cleavage rate of oocytes in 5 h group(86.6%) was significantly (P<0.05) higher than that in 3 h group(73.2%). The developmental rate of oocytes to morula in 5 and 7 h groups(26.7% and 16.4%) were significantly (P<0.05) high than that in 3 h group(14.5%). Matured oocytes were activated with electric pulse (EP) or electric pulse combined with cycloheximide (EP + CHX) and cultured for 8 days. The rate of cleavage and development to blastocyst (80.1% and 11.6%) of activated with EP group were similar to EP combined with CHX group. When activated with EP or EP combined with CHX, the mean cell number of blastocysts were less in the activated with EP (18.67$\pm$5.53) than in the activated EP combined CHX (20.71$\pm$6.16), but not significantly different. This results suggest that, when the porcine oocytes were activated with CHX following EP, the developmental rate of activated oocytes can be improved by treated with a concentration of 5 $\mu\textrm{g}$/$m\ell$ CHX for 5 h exposure time.
The present study was conducted to investigate the effects of antioxidants and growth factors on early development of porcine follicular oocytes fertilized in vitro. The embryos without cumulus cells were transferred into NCSU 23 medium and cultured for 5~6 days. The proportions of embryos developed to morula and blastocyst stages were significantly higher (P<0.05) in medium with 1.0(21.1%) and 2.0mM(22.3%) NAC than in control (14.7%) and 0.5mM NAC (12.2%). When the embryos were cultured in medium with ebselen, the highest proportion(36.9%) of embryos developed to morula or blastocyst stages was obtained in medium with 10 $\mu$M ebselen. Higher proportions of embryos were developed to rnorula and blastocyst stages during culture with 100$\mu$M than control, 50 and 200$\mu$M glutathione. The EGF and PDGF were evaluated as growth factors supplemented to the culture medium for in vitro development of porcine embryos. The proportions of embryos developed to morular and blastocyst stages were significantly higher (P<0.05) in medium with 100ng/m1 ECF than control, 10 and 50ng/$m\ell$ EGF. However, the proportions of embryos developed to morular and blastocyst stages were not significantly different among concentrations of PDGF. In conclusions, these results indicate that NAC, ebselen and glutathione or EGF and PDGF can increase the proportion of embryos that develop beyond morula stage.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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