CopA3 (LLCIALRKK), an antimicrobial peptide isolated from the Korean dung beetle, has been shown to suppress apoptosis in various cell types. CopA3 inhibits not only bacterial toxin-induced colonocyte apoptosis but also 6-hydroxy dopamine-induced neural cell apoptosis. Our recent study revealed that CopA3 directly binds to caspases (key regulators of apoptosis) and inhibits the proteolytic cleavage required for their activation. But molecular mechanisms underlying CopA3-mediated inhibition of apoptosis in multiple cell types remain unknown. Here we assessed possible effects of CopA3 on expression of survivin, which is known to inhibit apoptosis. In HT29 human colonocytes, CopA3 exposure markedly upregulated survivin expression in a concentration- and time-dependent manner. RT-PCR revealed that CopA3-mediated upregulation of survivin was attributable to increased gene transcription, and further showed that CopA3 also increased expression of Sp1, one of many transcription factors known to be involved in transcription of the survivin gene. Notably, blocking Sp1 by treatment with the Sp1 inhibitor, tolfenamic acid, significantly reduced CopA3-mediated upregulation of survivin. These results collectively suggest that CopA3 induces Sp1 expression, which in turn is involved in upregulation of survivin in human colonocytes. These novel findings establish another pathway for explaining the anti-apoptotic effects of CopA3 against various cellular apoptosis systems.
We recently found that the insect-derived antimicrobial peptide CopA3 (LLCIALRKK) directly binds to and inhibits the proteolytic activation of caspases, which play essential roles in apoptotic processes. However, the mechanism of CopA3 binding to caspases remained unknown. Here, using recombinant GST-caspase-3 and -6 proteins, we investigated the mechanism by which CopA3 binds to caspases. We showed that replacement of cysteine in CopA3 with alanine caused a marked loss in its binding activity towards caspase-3 and -6. Exposure to DTT, a reducing agent, also diminished their interaction, suggesting that this cysteine plays an essential role in caspase binding. Experiments using deletion mutants of CopA3 showed that the last N-terminal leucine residue of CopA3 peptide is required for binding of CopA3 to caspases, and that C-terminal lysine and arginine residues also contribute to their interaction. These conclusions are supported by binding experiments employing direct addition of CopA3 deletion mutants to human colonocyte (HT29) extracts containing endogenous caspase-3 and -6 proteins. In summary, binding of CopA3 to caspases is dependent on a cysteine in the intermediate region of the CopA3 peptide and a leucine in the N-terminal region, but that both an arginine and two adjacent lysines in the C-terminal region of CopA3 also contribute. Collectively, these results provide insight into the interaction mechanism and the high selectivity of CopA3 for caspases.
Kim, Hyeon-Jeong;Kim, Dong-Hee;Lee, Jin-Young;Hwang, Jae-Sam;Lee, Joon-Ha;Lee, Seul-Gi;Jeong, Hyeon-Guk;An, Bong-Jeun
Journal of Life Science
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v.23
no.1
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pp.38-43
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2013
The objective of this study was to evaluate the effect of the synthetic CopA3 peptide of Copris tripartitus on skin inflammation. Regulatory mechanisms of cytokines and nitric oxide (NO) are involved in the immunological activity of RAW 264.7 cells. Tested cells were treated with different concentrations of CopA3 and further cultured for an appropriate time after lipopolyssacharide (LPS) addition. During the entire experimental period, 5, 25, 50, and 100 ${\mu}g/ml$ of CopA3 had no cytotoxicity. At these concentrations, CopA3 inhibited tumor necrosis factor-${\alpha}$ (TNF-${\alpha}$), interleukin-$1{\beta}$ (IL-$1{\beta}$), and interleukin-6 (IL-6). CopA3 also inhibited the expression of inducible NO synthase (iNOS) and cyclooxygenase-2 (COX-2). CopA3 inhibited the activity of iNOS and COX-2 by 41% and 59%, respectively, at 100 ${\mu}g/ml$. In addition, CopA3 reduced the release of inflammatory cytokines including TNF-${\alpha}$, IL-$1{\beta}$, and IL-6. These results suggest that CopA3 may have significant effects on inflammatory factors and that it may be a potential anti-inflammatory therapeutic agent.
Kim, Soon-Ja;Kim, In-Woo;Kwon, Yong-Nam;Yun, Eun-Young;Hwang, Jae-Sam
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.22
no.2
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pp.264-269
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2012
Recently, we reported that the synthetic Coprisin analog peptide 9-mer dimer CopA3 (consisted of all-L amino acid sequence) was designed based on a defensin-like peptide, Coprisin isolated from Copris tripartitus. The 9-mer dimer CopA3 (L-CopA3) had antibacterial activity and induced apoptosis in human leukemia cells via a caspase-independent pathway. In this study, all of amino acid sequences of L-CopA3 were modified to all D-form amino acids (DCopA3) to develop a more effective antimicrobial peptide. We investigated whether D-CopA3 had antimicrobial activities against pathogenic microorganisms and pro-apoptotic effects in human leukemia cells (U937, Jurkat, and AML-2). The synthetic peptide D-CopA3 had antimicrobial activities against various pathogenic bacteria and yeast fungus with MIC values in the 4~64 ${\mu}M$ range. Moreover, D-CopA3 caused cell growth inhibition, and increased the chromosomal DNA fragmentation and the expression of inflammatory cytokines, TNF-${\alpha}$ and IL1-${\beta}$, transcripts in human leukemia cells. The all-D amino acid peptide DCopA3 proved as effective as the L-CopA3 reported previously. These results provide the basis for developing D-CopA3 as a new antibiotic peptide.
Insects are a valuable natural source that can produce a variety of bioactive compounds due to their increasing species diversity. CopA3 is an antimicrobial peptide derived from Copris tripartitus (i.e., the dung beetle). It is known to increase the proliferation of colonic epithelial and neuronal stem cells by regulating cell cycle. This research hypothesized that CopA3 can promote the proliferation of porcine muscle satellite cells (MSCs). The effects of CopA3 on porcine MSCs, which are important for muscle growth and regeneration, remain unclear. Here, we investigated the effects of CopA3 on porcine MSCs. According to viability results, we designed four groups: control (without CopA3) and three treatment groups (treated with 5,10, and 25 ㎍/mL of CopA3). At a CopA3 concentration of 5 ㎍/mL and 10 ㎍/mL, the proliferation of MSCs increased more than that observed in the control group. Furthermore, compared to that in the control, CopA3 treatment increased the S phase but decreased the G0/G1 phase ratio. Additionally, early and late apoptotic cells were found to be decreased in the 5 ㎍/mL group. The expressions of the myogenesis-related transcription factor PAX7 and MYOD proteins were significantly upregulated in the 5 ㎍/mL and 10 ㎍/mL groups, whereas the MYOG protein remained undetected in all group. This study suggested that CopA3 promotes muscle cell proliferation by regulating the cell cycle of MSCs and can regulate the activity of MSCs by increasing the expressions of PAX7 and MYOD.
Yoon, I Na;Hong, Ji;Zhang, Peng;Hwang, Jae Sam;Kim, Ho
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.27
no.2
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pp.350-356
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2017
We previously reported that the CopA3 peptide (LLCIALRKK, ${\small{D}}-form$) originally isolated from the Korean dung beetle has antimicrobial and immunosuppressive effects. However, the high cost of producing the synthetic peptide, especially the ${\small{D}}-form$, has limited the development of CopA3 for therapeutic purposes. Here, we investigated whether the CopA3 deletion derivative, CopA5, which is composed of only five amino acids (LLCIA) and has the ${\small{L}}-form$ structure, could inhibit the lipopolysaccharide (LPS)-induced activation of macrophages. Peritoneal exudate macrophages (PEM) were isolated from mice and exposed to LPS in the presence or absence of CopA5, and biomarkers of macrophage activation were measured. Our results revealed that LPS-induced nitric oxide (NO) production, tumor necrosis factor $(TNF)-{\alpha}$ secretion, and phagocytic activity of PEM were significantly inhibited by CopA5 treatment. Similar to CopA3, the structurally modified CopA5 peptide had no cell toxicity (as assessed by measurement of cell viability loss and apoptosis) in PEM. Moreover, the LPS-induced upregulation of the activating phosphorylation of signal transducer and activator of transcription 1 (STAT1) was markedly inhibited by CopA5 treatment. These results suggest that, similar to CopA3, CopA5 inhibits macrophage activation by inhibiting STAT1 phosphorylation and blocking the release of NO and $TNF-{\alpha}$. CopA5 may therefore prove therapeutically useful in the realm of immune suppression.
Alcoholic liver disease (ALD), which encompasses alcoholic steatosis, alcoholic hepatitis, and alcoholic cirrhosis, is a major cause of morbidity and mortality worldwide. Although the economic and health impacts of ALD are clear, few advances have been made in its prevention or treatment. We recently demonstrated that the insect-derived antimicrobial peptide CopA3 exerts anti-apoptotic and anti-inflammatory activities in various cell systems, including neuronal cells and colonic epithelial cells. Here, we tested whether CopA3 inhibits ethanol-induced liver injury in mice. Mice were intraperitoneally injected with ethanol only or ethanol plus CopA3 for 24 h and then liver injury and inflammatory responses were measured. Ethanol enhanced the production of proinflammatory cytokines, tumor necrosis factor (TNF)-α, interleukin (IL)-1β, interferon (IFN)-γ, and IL-10. It also induced hepatocyte apoptosis and ballooning degeneration in hepatocytes. Notably, all these effects were eliminated or significantly reduced by CopA3 treatment. Collectively, our findings demonstrate that CopA3 ameliorates ethanol-induced liver cell damage and inflammation, suggesting the therapeutic potential of CopA3 for treating ethanol-induced liver injury.
CopA3 is a homodimeric ${\alpha}$-helical peptide derived from coprisin which is a defensin-like antimicrobial peptide that was identified from the dung beetle, Copris tripartitus. CopA3 has been reported to have anticancer activity against leukemia cancer cells. In the present study, we investigated the anticancer activity of CopA3 in human gastric cancer cells. CopA3 reduced cell viability and it was cytotoxic to gastric cancer cells in the MTS and LDH release assay, respectively. CopA3 was shown to induce necrotic cell death of the gastric cancer cells by flow cytometric analysis and acridine orange/ethidium bromide staining. CopA3-induced cell death was mediated by specific interactions with phosphatidylserine, a membrane component of cancer cells. Taken together, these data indicated that CopA3 mainly caused necrosis of gastric cancer cells, probably through interactions with phosphatidylserine, which suggests the potential utility of CopA3 as a cancer therapeutic. [BMB Reports 2015; 48(6): 324-329]
Numerous studies have reported that enteric neurons involved in controlling neurotransmitter secretion and motility in the gut critically contribute to the progression of gut inflammation. Clostridium difficile toxins, which cause severe colonic inflammation, are also known to affect enteric neurons. Our previous study showed that C. difficile toxin A directly induces neural cell toxicities, such as viability loss and apoptosis. In the current study, we attempted to identify a potent inhibitor of toxin A-induced neural cell toxicity that may aid in managing toxin A-induced gut inflammation. In our recent study, we found that the Korea dung beetle-derived antimicrobial peptide CopA3 completely blocked neural cell apoptosis caused by okadaic acid or 6-OHDA. Here, we examined whether the antimicrobial peptide CopA3 inhibited toxin A-induced neural cell damage. In neuroblastoma SH-SY5Y cells, CopA3 treatment protected against both apoptosis and viability loss caused by toxin A. CopA3 also completely inhibited activation of the pro-apoptotic factor, caspase-3. Additionally, CopA3 rescued toxin A-induced downregulation of neural cell proliferation. However, CopA3 had no effect on signaling through ROS/p38 $MAPK/p27^{kip1}$, suggesting that CopA3 inhibits toxin A-induced neural cell toxicity independent of this well-characterized toxin A pathway. Our data further suggest that ability of CopA3 to rescue toxin A-induced neural cell damage may also ameliorate the gut inflammation caused by toxin A.
The ubiquitin E3 ligase COP1 (Constitutive Photomorphogenesis 1) is a protein repressor of photomorphogenesis in Arabidopsisplants, and it found in various organisms, including animals. The COP1 protein regulates the stability of many of the light-signaling components that are involved in photomorphogenesis and in the developmental processes. To study the effect of COP1 on flowering in a short day plant, we have cloned a full-length of PnCOP1 (Pharbitis nil COP1) cDNA from Pharbitis nil Choisy cv. Violet, and we examined its transcript levels under various conditions. A full-length PnCOP1 cDNA consists of 2,280 bp nucleotidesthat contain 47 bp of 5'-UTR, 232 bp of 3'-UTR including the poly (A) tail, and 1,998 bp of the coding sequence. The deduced amino acid sequence contains 666 amino acids, giving it a theoretical molecular weight of 75 kD and a isolectric point of 6.2. The PnCOP1 contains three distinct domains, an N-terminal $Zn^2+$-binding RING-finger domain, a coiled-coil structure, and WD40 repeats at the C-terminal, implying that the protein plays a role in protein-protein interactions. The PnCOP1 transcript was detected in the cotyledon, hypocotyls and leaves, but not in root. The levels of the PnCOP1 transcript were reduced in leaves that were a farther distance away from the cotyledons. The expression level of the PnCOP1 gene was inhibited by light, while the expression was increased in the dark. During the floral inductive 16 hour-dark period for Pharbitis nil, the expression was increased and it reached its maximum at the 12th hour of the dark period. The levels of PnCOP1 mRNA were dramatically reduced upon light illumination. These results suggest that PnCOP1 may play an important function in the floral induction of Pharbitis nil.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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