A trap identification system for isolating functional sequences to allow the constitutive expression of foreign protein from Edwardsiella tarda was developed. Using the green fluorescent protein (GFP) reporter-based trap system, various functional sequences to drive heterologous expression of the GFP were selectable in Escherichia coli host. However from the bioinformatic sequence analysis, all the segments predicted as regulatory regions were not native promoters actually existing upstream of endogenous E. tarda genes. Instead, a number of non-authentic sequences, possibly resulted from the random shuffling and/or intermolecular ligation were also proven to be able to display a potent GFP expression in the recombinant E. coli. Further analysis with selected clones showed that both authentic and non-authentic sequences could function in as a constitutive promoter, leading quite a consistent and stable GFP expression after repetitive subcultures. Microscopic examination also confirmed the uniform pattern of GFP expression in every host bacterium. Semi-quantitative assay of GFP showed that there was no clear relationship between expression levels and organizational features of the promoters trapped. Functional promoter-like elements achieved in the present study could be a good starting material for multivalent genetic engineering of E. tarda in order to produce recombinant vaccines in a cost-effective fashion.
Efficient cellulolytic enzyme production is important for the development of lignocellulose-degrading enzyme mixtures. However, purification of cellulases from their native hosts is time- and labor-consuming. In this study, a constitutive expression system was developed in Penicillium oxalicum for the secreted production of proteins. Using a constitutive polyubiquitin gene promoter and cultivating with glucose as the sole carbon source, nine cellulolytic enzymes of different origins with relatively high purity were produced within 48 h. When supplemented to a commercial cellulase preparation, cellobiohydrolase I from P. funiculosum and cellobiohydrolase II from Talaromyces verruculosus showed remarkable enhancing effects on the hydrolysis of steam-exploded corn stover. Additionally, a synergistic effect was observed for these two cellobiohydrolases during the hydrolysis. Taken together, the constitutive expression system provides a convenient tool for the production of cellulolytic enzymes, which is expected to be useful in the development of highly efficient lignocellulose-degrading enzyme mixtures.
Liang, Ying Shi;Bae, Hee-Jin;Kang, Sang-Ho;Lee, Theresa;Kim, Min Gab;Kim, Young-Mi;Ha, Sun-Hwa
Plant Biotechnology Reports
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v.3
no.4
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pp.325-331
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2009
To efficiently express a gene of interest in transgenic plants, the choice of promoter is a crucial factor as it directly affects the expression of the transgene that will yield the desired phenotype. The Arabidopsis ${\beta}-carotene$ hydroxylase 1 gene (AtBch1) shows constitutive and ubiquitous expression and was thus selected as one of best candidates for constitutive promoter analysis by both in silico northern blotting and semi-quantitative RT-PCR analysis. To investigate AtBch1 promoter activity, the 1,981-bp 5'-upstream region of this gene was fused with ${\beta}-glucuronidase$ (GUS) and transformed into Arabidopsis. Through the molecular characterization of transgenic leaf tissues, the AtBch1 promoter generated strong activity that drives 1.8- and 2-fold higher GUS expression than the cauliflower mosaic virus 35S (35S) promoter at the transcriptional and translational levels, respectively. Furthermore, the GUS enzyme activity driven by the AtBch1 promoter was 2.8-fold higher than that produced by the 35S promoter. By histochemical GUS staining, the ubiquitous expression of the AtBch1 promoter was observed in all tissues of Arabidopsis. Semi-quantitative RT-PCR analysis with different tissues further showed that this promoter serves as a strong constitutive driver of transgene expression in dicot plants.
Approximately 2.0 kb of the promoter region of the Pichia pastoris phosphoglycerate kinase gene (PGK1) was reduced to a 266 bp fragment and this minimized portion was used for construction of a new episomal constitutive expression vector in P. pastoris. As an approach to developing a constitutive expression vector in P. pastoris, the GAP promoter region of the Pichia expression vector pGAPZB was replaced with sequentially deleted PGK1 promoter fragments fused to a beta-galactosidase gene. When a lacZ gene was used as a reporter gene, PGK1 promoter strength was lower than that of the constitutive GAP promoter but it was higher than TEF1. We report here the development of the pPGKZ-E vector as a new episomal expression vector for heterologous gene expression by removing non-essential regions of the PGK1 promoter. This broadens the choice of episomal expression vectors for controlled constitutive expression in P. pastoris.
We have developed a constitutive display system of the Pseudomonas fluorescens SIK W1 TliA lipase on the cell surface of Escherichia coli using E. coli outer membrane protein C (OmpC) as an anchoring motif, which is an economical compared to induced system. For the constitutive expression of truncated OmpC-TliA fusion proteins, gntT104 promoter was employed. Cell growth was not affected by over expression of fusion protein during entire culture time, suggesting cell lysis was not a problem. The localization of truncated OmpC-TliA fusion protein on the cell surface was confirmed by immunofluorescence microscopy and measuring whole cell lipase activity. Constitutively displayed lipase was very stable, retaining activity enantioselectivity throughout the five repeated reactions. These results suggest that OmpC from E. coli be a useful anchoring motif for displaying enzymes on the cell surface without any inducers, and this stable surface display system can be employed for a broad range of biotechnological applications.
We published that bacterial heme was over-produced in a recombinant Corynebacterium glutamicum expressing 5-aminolevulinic acid synthase ($hemA^+$) under control of a constitutive promoter ($P_{180}$) and the heme-producing C. glutamicum had commercial potentials; as an iron feed additive for swine and as a preservative for lactic acid bacteria. To enhance the heme production, the $hemA^+$ gene was expressed under controls of various promoters in the recombinant C. glutamicum. The $hemA^+$ expression by $P_{gapA}$ (a constitutive glycolytic promoter of glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase) led 75% increase of heme production while the expression by $P_{H36}$ (a constitutive, very strong synthetic promoter) resulted in 50% decrease compared with the control ($hemA^+$ expression by $P_{180}$ constitutive promoter). The $hemA^+$ expression by a late log-phase activating $P_{sod}$ (an oxidative-stress responding promoter of superoxide dismutase) led 50% greater heme production than the control. The $hemA^+$ expression led by a heat-shock responding chaperone promoter ($P_{dnaK}$) resulted in 121% increase of heme production at the optimized heat-shock conditions. The promoter strength and induction phase are discussed based on the results for the heme production at an industrial scale.
HYEON-OK JIN;SUNG-EUN HONG;JI-YOUNG KIM;MI-RI KIM;YOON HWAN CHANG;YOUNG JUN HONG;JIN KYUNG LEE;IN-CHUL PARK
Oncology Letters
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v.41
no.5
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pp.3119-3126
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2019
Redd1 is a stress response protein that functions as a repressor of mTORC1, a central regulator of protein translation, resulting in the inhibition of cell growth and metabolism. However, paradoxically, high Redd1 expression favors cancer progression and generates resistance to cancer therapy. Herein, we revealed that constitutive overexpression of Redd1 induced HSP27 and HSP70 expression in lung cancer cells. The expression of Redd1, HSP27 and HSP70 was highly increased in lung cancer tissues compared with that in normal lung tissues. Inhibition of HSP27 or HSP70 suppressed AKT phosphorylation, which was induced by constitutive overexpression of Redd1 and enhanced the inhibitory effects on viability of Redd1-overexpressing cells. Inhibition of AKT phosphorylation resulted in a decrease of HSP27 and HSP70 expression in Redd1-overexpressing cells. These data indicated that HSPs and AKT in Redd1-overexpressing cells positively regulated the function and expression of each other and were involved in lung cancer cell survival. Knockdown of HSP27, HSP70 or AKT enhanced ionizing radiation (IR) sensitivity, particularly in lung cancer cells in which Redd1 was stably overexpressed. Collectively, constitutive overexpression of Redd1 led to HSP27 and HSP70 induction and AKT activation, which were involved in lung cancer cell survival and resistance to IR, suggesting that Redd1 may be used as a therapeutic target for lung cancer.
Proceedings of the Botanical Society of Korea Conference
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1996.07a
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pp.4-9
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1996
The majority of plants sense environmental signals, such as day length or temperature, to select their transition timing from vegetative growth t flowering. Here, we report the identification of a regulatory gene, OsMADS1, that controls the photoperiod sensitivity of flowering time. Constitutive expression of OsMADS1 in a long-day flowering plant, Nicotiana sylvestris, resulted in flowering in both short-day long-day conditions. Similarly, ectopic expression of the gene in a short-day flowering plant, N. tabacum cv. Maryland Mammoth, also induced flowering regardless of the day length. The transition time was dependent on the level of the OsMADS1 transcript in transgenic plants. These suggest that OsMADS1 is a key regulatory factor that determines the transition from shoot apex to floral meristem and that it can be used for controlling flowering time in a variety of plant species.
To overproduce the cyclodextrin glucanotransferase(CGTase) of Bacillus stearothermophilus NO2 in B. subtilis, the pJH-CGTl plasmid (8.14 kb) was constructed, in which the ORF of CGTase gene could be transcribed by strong constitutive promoter, P$\_$JH/. To overproduce CGTase from a recombinant B. subtilis, the effect of media on the cell growth and expression level of CGTase were investigated with various media (LB, 2${\times}$LB, 5% molasses+2% CSL, CS, LBG) in the flask culture. Among them, [5% molasses+2% CSL] medium revealed the maximum expression level of CGTase with 1.8 unit/$m\ell$ at 9 hr culture. In the batch culture on [10% molasses+5% corn steep liquor] medium the expression level of CGTase, the secretion efficiency, and plasmid stability were about 4.2 unit/$m\ell$, 90% and 90%, respectively, at 30 hr culture. The cell growth and expression level in the fermenter culture with the industrial molasses medium were increased by 2-folds over the flask culture.
This study was focused on the screening of valuable genetic resources, such as promoters from metagenome, and describes a promoter trapping system with a bidirectional probe concept, which can select promoters or operons from various biological resources including metagenomic DNA. A pair of reporters, GFP and DsRed, facing the opposite direction without promoters, is an effective system that can function regardless of the direction of inserted promoters. The feasibility of this system was tested for the isolation of constitutively expressed promoters in E. coli from a soil metagenome, resulting in a potential pool of various promoters for practical application. The analyses of structural organization of the trapped genes demonstrated that constitutively expressible promoters in E. coli were broadly distributed within the metagenome, and suggested that some promoters were useful for the construction of expression vectors. Based on these observations, three constitutive promoters were employed in the expression vector system and their potentials for practical application were evaluated in terms of expression level, protein solubility, and effects on host growth.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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