As a new colon-specific prodrug of 5-aminosalicylic acid (5-ASA), 5-aminosalicyl-glycine (5-ASA-Gly) was prepared by a simple synthetic route in good yield. Apparent partition coefficients of 5-ASA-Gly were lower than those of 5-ASA, which determined in$ CHCl_{3}$/pH 6.8 buffer or n-octanol/pH 6.8 buffer system. Stability of 5-ASA-Gly by peptidases was investigated by incubation of 5-ASA-Gly with the homogenates of tissue and contents of stomach, proximal small intestine or distal small intestine of rats at $37^{\circ}C$. 5-ASA was not detected, indicating that the prodrug was stable in the upper intestine. The amount of 5-ASA liberated from incubation of the prodrug in cecal or colonic contents of rats was about 65% or 27% in 8 hrs, respectively, which indicated that the prodrug activation took place more readily in the rat cecum whose bacterial counts are high like human colon. Results from in vitro experiments suggested 5-ASA-Gly as a promising candidate of a colon-specific prodrug of 5-ASA.
5-Aminosalicylic acid (5-ASA) is an active ingredient of therapeutic agents used for Crohn s disease and ulcerative colitis. Because it is absorbed rapidly and extensively in the upper intestine, delivery of the agent specifically to the colon is necessary. We selected taurine as a colon-specific promoiety and designed 5-aminosalicyltaurine (5-ASA-Tau) as a new colon-specific prodrug of 5-aminosalicylic acid (5-ASA). It was expected that introduction of taurine would restrict the absorption of the prodrug and show additive effect to the anti-inflammatory action of 5-ASA after hydrolysis. 5-ASA-Tau was prepared in good yield by a simple synthetic route. The apparent partition coefficient of 5-ASA-Tau in 1-octanol/pH 6.8 phosphate buffer or $CHCl_3$/pH 6.8 phosphate buffer was 0.10 or 0.18, respectively, at $37^{\circ}C$. To determine the chemical and biochemical stability in the upper intestinal environment, 5-ASA-Tau was incubated in pH 1.2 and 6.8 buffer solutions, and with the homogenates of tissue and contents of stomach or small intestine of rats at $37^{\circ}C$. 5-ASA was not detected from any of the incubation medium with no change in the concentration of 5-ASA-Tau. On incubation of 5-ASA-Tau with the cecal and colonic contents of rats, the fraction of the dose released as 5-ASA was 45% and 20%, respectively, in 8 h. Considering low partition coefficient and stability in the upper intestine, 5-ASA-Tau might be nonabsorbable and stable in the upper intestine. After oral administration, it would be delivered to the colon in intact form and release 5-ASA and taurine. These results suggested 5-ASA-Tau as a promising colon-specific prodrug of 5-ASA.
Dextran-5-(4-ethoxycarbonylphenylazo)salicylic acid ester(Dextran-5-ESA) was synthesized as a potential colon-specific prodrug of 5-aminosalicylic acid (5-ASA). No free 5-(4-eth oxycarbonylphenylazo) salicylic acid (5-ESA) was detected when the chemical stability of dextran-5-ESA was tested at pH 1.2, or pH 6.8 bath solution, Effects of the degree of substitution (DS) and molecular weight of dextran on the depolymerization by dextranase was investigated. Depolymerization(%) decreased with increasing DS, and was not affected by M.W. of dextran. The extent of prodrug conversion after incubation in the contents of various G.I. Tract segments of rats was evaluated. 5-ASA was released in the cecal contents, but not in the contents of proximal small intestine (PSI) or distal small intestine (DSI). No significant prodrug conversion was observed in the cecal contents of rats pretreated with kanamycin sulfate, which indicated that microbial enzymes were responsible for the cleavage of the prodrug.
Dextran-5-aminosalicylic acid conjugate (dextran-5-ASA) was in vitro-evaluated as a polymeric colon-spe-cific prodrug of 5-aminosalicylic acid (5-ASA). Chemical stability of dextran-5-ASA in the pH 1.2 or 6.8 buffer solutions was investigated at 37 for 6 hrs. The dextran backbone was not degraded and no 5-ASA release was detected. Moreover, dextran-5-ASA neither liberated 5-ASA in the homogenates of the small intestine of rats nor was transported across Caco-2 cell monolayers, suggesting no significant loss of dextran-5-ASA during transit through the upper intestine. Furthermore, incubation of dextran-5-ASA in 10% cecal contents of rats released about 37% and 55% of 5-ASA bound to dextran in 8 hr and 24 hr, respectively. While that with either esterase or dextranase failed to liberate 5-ASA from the polymeric prodrug, incubation of dextran-5-ASA with both esterases and dextranse released 5-ASA up to about 24% of 5-ASA bound to dextran. These results suggest that, after oral administration of dextran-5-ASA, the polymeric prodrug is delivered specifically to and releases 5-ASA in the large intestine, and reveal that the 5-ASA release by cleavage of the ester bond requires precedent depolymerization of the dextran backbone.
Dextran-5-aminosalicylic acid ester (dextran-5-ASA) was synthesized as a colon-specific prodrug of 5-aminosalicylic acid (5-ASA) which is active against inflammatory bowel diseases. Chemical stability of dextran-5-ASA in the bath of pH 1.2 or 6.8 was investigated at $37^{\circ}C$ for 6 hrs, and 5-ASA was not released on such conditions. Depolymerization (%) of dextran-5-ASA by dextranase with the degree of substitution (DS) of 18, 23, or 30 was 92, 62 or 45 in 8 hrs respectively, but was not affected by the MW of dextran (9,000, 40,600, 80,200 or 580,000). Distribution of 5-ASA in dextran, determined by gel filtration chromatography, appeared to be relatively uniform. Incubation of dextran-5-ASA (DS 18) in cecal contents of rats released 20% (28 g) and 35% (49 g) of 5-ASA in 8 hrs and 24 hrs, respectively, but no 5-ASA was liberated from small intestinal contents.
5-Aminosalicyl-L-aspartic acid (5-ASA-Asp) and 5-aminosalicyl-L-glutamic acid (5-ASA-Glu) were synthesized as new colon-specific prodrugs of 5-aminosalicylic acid (5-ASA), their apparent partition coefficients, and the extent of conversion in the homogenates of tissue and contents of various G.I. Tract segments of rats were evaluated. These prodrugs were stable in the homogenate of tissue and contents of stomach, proximal small intestine (PSI) or distal small intestine (DSI). Release of 5-ASA from 5-ASA-Asp after incubation with the cecal and colonic contents for 8hrs at $37^{\circ}C$ was 18%, and 8%, respectively. No significant conversion of prodrug was observed in the cecal and colonic contents of rats pretreated with kanamycin sulfate, which indicated that microbial enzymes were responsible for the cleavage of these prodrugs.
Kim, Ji-Hye;Kim, Jung-Yoon;Lee, Yong-Hyun;Kim, Young-Mi;Jung, Yun-Jin
Journal of Pharmaceutical Investigation
/
v.40
no.4
/
pp.213-218
/
2010
In a previous paper, we showed that 5-aminosalicyl-L-aspartic acid (5-ASA-Asp) has much greater deconjugation efficiency in the cecal contents than does 5-aminosalicyl-L-glutamic acid (5-ASA-Glu). To explore a reason for ineffective deconjugation of 5-ASA-Glu, structural analysis of the conjugate was performed. Aromatic acyl-L-glutamic acid derivatives, N-benzoyl-glumatic acid (BA-Glu), N-(2-hydroxybenzoyl)-glutamic acid (SA-Glu), N-(3-aminobenzoyl)-glutamic acid (3-ABA-Glu) and N-(4-aminobenzoyl)-glutamic acid (4-ABA-Glu), were prepared and incubated in the cecal contents. The deconjugation rates were compared with that of 5-ASA-Glu. The order of the rates was BA-Glu $\approx$ 4-ABA-Glu $\approx$ 3-ABA-Glu $\gg$ SA-Glu $\approx$ 5-ASA-Glu. The deconjugation of the aromatic acyl-L-glutamic acid derivatives was carried out by enzyme(s) in the cecal contents since the deconjugation did not occur in the autoclaved cecal contents and on incubation with N-benzoyl-D-glutamic acid. Our data suggest that the 2-hydroxyl group in 5-ASA is ascribed to the poor deconjugation of 5-ASA-Glu in the cecal contents.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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