• 제목/요약/키워드: Cloning and Expression

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대장균에서 사람의 면역결핍 바이러스-1 epitopes 클로닝과 발현에 대한 연구 (Cloning and Expression of Human Immunodeficiency Virus-1 Epitopes in Escherichia coli)

  • 유향숙;장원희;박희동;현상원;남상욱;이영익
    • 미생물학회지
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    • 제29권1호
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    • pp.1-7
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    • 1991
  • Human immunodeficiency virus type 1 (HIV-1) causes a deadly infectious disease, Acquired Immunodeficiency Syndrome (ADIS). As a first step to develop a reliable and fast diagnostic procedure for HIV-1 infection, we cloned various immunodominant epitopes of HIV-1 in bacterial expression vectors containing tac or trp promoter. While the protein level of direct expression of gp160 was low, trp E fused gp120, gp41 and p17-p24 were produced at high levels (15-30% of total bacterial proteins) in E. coli. Since gp120 and gp41 contain relatively conserved regions which can react with antibodies in the plasma from most of HIV-1 infected individuals, these expression clones were used for large preparations of HIV-1 antigens.

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소 CYP26A1 유전자 프로모터의 molecular cloning 및 특성 (Molecular Cloning and Characterization of Bovine CYP26A1 Promoter)

  • 곽인석
    • 생명과학회지
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    • 제26권1호
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    • pp.42-49
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    • 2016
  • 레티노산(RA)는 많은 유형의 세포에서 성장 및 발달에 중요한 역할을 수행하며 생체 활성화에 적합한 RA의 농도는 CYP26A1 등 여러 가지 효소에 의해 조절된다. CYP26A1의 발현은 RA에 의해서 조절되며 CYP26A1는 RA에 반응하는 유전자 중 하나이다. CYP26A1 유전자 클로닝은 여러 동물에서 보고되어 있지만, 소에서 CYP26A1 유전자의 클로닝은 아직 보고되지 않았다. 소로부터 CYP26A1의 프로모터 부위를 중합효소 연쇄반응을 이용하여 클로닝 한 후 다른 동물과 염기 서열 비교분석 결과 RARE DR-5 (ttggg)의 존재를 확인하였고, DR-5의 염기서열은 분석한 종 에서 완전히 일치하였다. DR-5 motif를 함유한 소의 CYP26A1 프로모터 부위를luciferase리포터 유전자에 결합한 후 transient transfection에 의해 promoter 발현을 분석하였다. 폐 유래 세포주인 MTCC 세포에서 CYP26A1 promoter의 발현은 ATRA의 처리에 의하여 촉진되었다. CYP26A1 유전자의 발현은 ATRA 의존적으로 RAR-α 및 RAR-β에 의하여 현저하게 촉진되었다. 그러나 RAR-γ나 RXR-γ는 CYP26A1 발현에 별다른 영향을 미치지는 않았다. 또한 MTCC 세포주가 생산하는 내인성 CYP26A1 유전자 발현을 Q-RT-PCR로 분석한 결과 1-2일간의 ATRA 처리에 의해서는 현저한 영향을 받지 않으나, 3일 동안 ATRA를 처리한 샘플에서는 CYP26A1의 발현이 현저하게 감소하였다. 결론적으로, 소의 CYP26A1유전자의 프로모터 부위에 존재하는 DR-5 RARE는 RAR-α 및 RAR-β의 결합부위로 작용하여 MTCC 세포에서 CYP26A1 유전자 발현 조절과 RA signal의 조절에 관여하는 것을 확인하였다.

장관세포인 HT-29에 존재하는 디펩티드수송체의 Xenopus oocyte에서의 발현 (Functional Expression of a Dipeptide Transporter Obtained from Intestinal HT-29 Cells Using Xenopus Oocytes)

  • 오두만;양재하
    • Journal of Pharmaceutical Investigation
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    • 제25권4호
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    • pp.299-305
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    • 1995
  • Cloning the gene encoding a dipeptide transporter is necessary for understanding the absorption mechanism of peptides and peptide-like drugs in the gastrointestinal tract. Functional expression of a dipeptide transporter after microinjection into Xenopus laevis oocytes was performed using the mRNA purified from human intestinal HT-29 cells. Fifty nanoliters of purified mRNA (1 mg/mL) were microinjected into healthy oocytes followed by incubation for 4 days in order to express a dipeptide transporter. Functional expression was determined by a uptake assay using 10 Ci/mL $[^3H]-glycylsarcosine$, a dipeptide substate of the transporter. Seasonal variability and batch-to-batch variability were greater in summer. The usage of beveled micropipettes improves viability of oocytes at 4 days after microinjection. Expression of a dipeptide transporter in oocytes after microinjection of mRNA obtained from HT-29 cells was significantly larger than those after microinjection of water or mRNA obtained from the rabbit intestine.

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