The gene encoding ${\alpha}-\small{L}$-arabinofuranosidase (AFase) from Paenibacillus sp. DG-22 was cloned, sequenced, and expressed in Escherichia coli. The AFase gene (abfA) comprises a 1,509 bp open reading frame encoding 502 amino acids with a molecular mass of 56,520 daltons. The deduced amino acid sequence of the gene shows that AbfA is an enzyme consisting of only a catalytic domain, and that the enzyme has significant similarity to AFases classified into the family 51 of the glycosyl hydrolases. abfA was subcloned into the pQE60 expression vector to fuse it with a six-histidine tag and the recombinant AFase (rAbfA) was purified to homogeneity. The specific activity of the recombinant enzyme was 96.7 U/mg protein. Determination of the apparent molecular mass by gel-filtration chromatography indicated that AbfA has a tetrameric structure. The optimal pH and temperature of the enzyme were 6.0 and $60^{\circ}C$, respectively. The enzyme activity was completely inhibited by 1 mM $HgCl_2$. rAbfA was active only towards p-nitrophephenyl ${\alpha}-\small{L}$-arabinofuranoside and exhibited $K_m$ and $V_{max}$ values of 3.5 mM and 306.1 U/mg, respectively. rAbfA showed a synergistic effect in combination with endoxylanase on the degradation of oat spelt xylan and wheat arabinoxylan.
We report a glycoside hydrolase (GH)-118 ${\beta}$-agarase from a strain of Agarivorans, in which we previously reported recombinant expression and characterization of the GH-50 ${\beta}$-agarase. The GH comprised an open reading frame of 1,437 base pairs, which encoded a protein of 52,580 daltons consisting of 478 amino acid residues. Assessment of the entire sequence showed that the enzyme had 97% nucleotide and 99% amino acid sequence similarities to those of GH-118 ${\beta}$-agarase from Pseudoalteromonas sp. CY24, which belongs to a different order within the same class. The gene corresponding to a mature protein of 440 amino acids was inserted, recombinantly expressed in Escherichia coli, and purified to homogeneity with affinity chromatography. It had maximal activity at $35^{\circ}C$ and pH 7.0 and had 208.1 units/mg in the presence of 300 mM NaCl and 1 mM $CaCl_2$. More than 80% activity was maintained after 2 h exposure to $35^{\circ}C$; however, < 40% activity remained at $45^{\circ}C$. The enzyme hydrolyzed agarose to yield neoagarooctaose as the main product. This enzyme could be useful for industrial production of functional neoagarooligosaccharides.
진핵세포의 유전자 발현은 genomic DNA 부위의 프로모터라고 불리우는 지역에 전사인자와 RNA 중합효소가 자리하면서 시작되는 기작이다. 유전자 내의 프로모터를 동정하는 여러종류의 실험 방법들이 있지만, 많은 시간과 노동력이 요구되어진다. 본 연구에서는 Ensembl, NCBI, CpG plot 등과 같은 생물정보학 관련 프로그램들을 활용하여 SETDB1 유전자의 프로모터를 동정하여 클로닝하고자 하였다. PCR 증폭을 수행한 후 얻은 약 2 kb DNA 조각을 SETDB1-P1이라 명명하였으며, PCR 산물은 TA 벡터로 클로닝 후 확인하였으며, 이를 다시 제한 효소 절단을 통하여 pGL3-luc 벡터로 클로닝하였다. 클로닝된 pGL3-SETDB1-P1-luc 플라스미드를 H1299 폐암세포주에 transfection 시킨 후 여러 가지 항암제를 처리하였을 때, taxol, 5-FU, doxorubicin 처리군에서 SETDB1 프로모터 활성이 감소하는 것을 확인하였다. 이러한 결과는 웨스턴 블롯 및 RT-PCR 실험을 통해 항암제 처리 후 SETDB1 유전자 발현이 조절됨을 확인하였다. 그러므로 bioinformatics 프로그램을 통한 프로모터 동정 및 클로닝 방법을 다른 유전자들에도 적용시킨다면, 유전자 발현 연구에 매우 유용할 것으로 사료된다.
The xynA gene encoding the xylanase A of Paenibacillus sp. DG-22 was isolated with a DNA probe obtained by PCR amplification, using degenerated primers deduced from the amino acid residues of the known N-terminal region of the purified enzyme and the conserved region in the family 11 xylanases. The positive clones were screened on the LB agar plates supplemented with xylan, by the Congo-red staining method. The xynA gene consists of a 630-bp open reading frame encoding a protein of 210 amino acids, and the XynA preprotein contains a 28-residues signal peptide whose cleavage yields a l82-residues mature protein of a calculated molecular weight of 20,000Da and pI value of 8.77. The cloned DNA fragment also has another ORF of 873 nucleotides that showed 76% identity to the putative transcriptional activator of Bacillus halodurans C-125. Most of the xylanase activity was found in the periplasmic space of E. coli. The xynA gene was subcloned into pQE60 expression vector to fuse with six histidine-tag. The recombinant xylanase A was purified by heating and immobilized metal affinity chromatography. The optimum pH and temperature of the purified enzyme were 6.0 and $60^{\circ}C$, respectively. This histidine-tagged xylanase A was less thermostable than the native enzyme.
In an attempt to isolate novel molecules that may play a regulatory role in adipocyte differentiation, we devised an experimental strategy to identify adipose tissue-specific genes by modifying cDNA microarray technique. We used genefilter membranes containing approximately 15,000 rat non-redundant EST clones of which 4,000 EST were representative clones of known genes and 11,000 ESTs were uncharacterized clones. A series of hybridization of genefilter membranes with cDNA probes prepared from various rat tissues and nucleic acids sequence analysis allowed us to identify two adipose-tissue specific genes, adipocyte-specific secretory factor (ADSF) and H-rev107. Verification of tissue-specific expression patterns of these two genes by Northern blot analysis showed that ADSF mRNA is exclusive expressed in adipose tissue and the H-rev107 mRNA is predominantly expressed in adipose tissue. Further analysis of gene expression of ADSF and H-rev107 during 3T3-L1 adipocyte differentiation revealed that the ADSF and H-rev107 gene expression patterns are closely associated with the adipocyte differentiation program, indicating their possible role in the regulation of adipose tissue development. Overall, we demonstrated an application of modified cDNA microarray technique in molecular cloning, resulting in identification of two novel adipose tissue-specific genes. This technique will also be used as a useful tool in identifying novel genes expressed in a tissue-specific manner.
It is essential to clone the peptide transporter in order to obtain better understanding of its molecular structure, regulation, and substrate specificity. Characteristics of an endogenous peptide transporter in oocytes were studied along with expression of an exogenous proton/peptide cotransporter from rabbit intestine. And further efforts toward cloning the transporter were performed. The presence of an endogenous peptide transporter was detected in Xenopus laevis oocytes by measuring the uptake of $0.25\;{\mu}M\;(10\;{\mu}Ci/ml)\;[^3H]-glycylsarcosine$ (Gly-Sar) at pH 5.5 with or without inhibitors. Uptake of Gly-Sar in oocytes was significantly inhibited by 25 mM Ala-Ala, Gly-Gly, and Gly-Sar (p<0.05), but not by 2.5 mM of Glu-Glu, Ala-Ala, Gly-Gly, Gly-Sar and 25 mM glycine and sarcosine. This result suggests that a selective transporter is involved in the endogenous uptake of dipeptides. Collagenase treatment of oocytes used to strip oocytes from ovarian follicles did not affect the Gly-Sar uptake. Changing pH from 5.5 to 7.5 did not affect the Gly-Sar uptake significantly, suggesting no dependence of the endogenous transporter on a transmembrane proton gradient. An exogenous $H^+/peptide$ cotransporter was expressed after microinjection of polyadenylated messenger ribonucleic acid $[poly\;(A)^+-mRNA]$ obtained from rabbit small intestine. The Gly-Sar uptake in mRNA-injected oocytes was 9 times higher than that in water-injected oocytes. Thus, frog oocytes can be utilized for expression cloning of the genes encoding intestinal $H^+/peptide$ cotransporters. Using the technique size fractionation of mRNA was sucessfully obtained.
Mergulaho, Filipe J.M.;Monteiro, Gabriel A.;Kelly, Andrew G.;Taipa, Maria A.;Joaquim, M.S. Cabral
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제10권5호
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pp.690-693
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2000
Efficient intron deletion with the correct splicing of the two exons of the human proinsulin gene was accomplished by a novel stepwise method using genomic DNA [5]. The two exons were separately amplified in two steps, using the second step primers that incorporated additional bases complementary to the other exon. The fragments were combined in a third PCR reaction. Cloning and sequencing of the PCR product demonstrated the correct splicing of the two exons. Expression studies, using the pET9a vector, revealed a protein band with the correct size with respect to human proinsulin as confirmed by SDS-PAGe and Western blot. Proinsulin concentration was estimated to be around 200 mg per liter culture, expressed as inclusion bodies. Protein secretion to the culture medium and periplasmic space was achieved by cloning in the pEZZ18 vector.
To clone the gene coding for steroid $\Delta^1$-dehydrogenase of Arthrobacter simplex, its genomic library was constructed with a , $\lambda$gt11 expression vector and immunoscreened with antiserum against the enzyme. One positive clone was found to carry a 1.6-kb EcoR I restriction endonuclease fragment of A. simplex DNA. The restriction map of the 1.6-kb EcoR I fragment was determined after cloning of the DNA into pBS vector.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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