Taking advantage of the heat inducible HSP82 gene in yeast, chromatin structure after transcription cessation was investigated. Alteration of chromating conformation within the HSP82 gene transcription unit into an active state has been shown to correlate with its transcriptional induction. It was thus of interest to examine whether the active chromatin state within the HSP82 mRNA analysis, the gene ceased its transcription within a few hours of cultivation at a normal condition after heat induction. In this condition, an active chromatin conformation in the HSP82 gene body was changed into an inactie state which was revealed by DNase I resistance and by typical nucleosomal cutting periodicity in the corresponding chromatin. These results thus ruled out the possibility of a long-term maintenance of the DNase I sensitive chromatin after transcription cessation. DNA replication may be a critical event for the chromatin reprogramming.
Meyer J. Friedman;Haram Lee;Young-Chan Kwon;Soohwan Oh
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제32권12호
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pp.1515-1526
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2022
Eukaryotic chromatin is highly organized in the 3D nuclear space and dynamically regulated in response to environmental stimuli. This genomic organization is arranged in a hierarchical fashion to support various cellular functions, including transcriptional regulation of gene expression. Like other host cellular mechanisms, viral pathogens utilize and modulate host chromatin architecture and its regulatory machinery to control features of their life cycle, such as lytic versus latent status. Combined with previous research focusing on individual loci, recent global genomic studies employing conformational assays coupled with high-throughput sequencing technology have informed models for host and, in some cases, viral 3D chromosomal structure re-organization during infection and the contribution of these alterations to virus-mediated diseases. Here, we review recent discoveries and progress in host and viral chromatin structural dynamics during infection, focusing on a subset of DNA (human herpesviruses and HPV) as well as RNA (HIV, influenza virus and SARS-CoV-2) viruses. An understanding of how host and viral genomic structure affect gene expression in both contexts and ultimately viral pathogenesis can facilitate the development of novel therapeutic strategies.
Locus control region (LCR) is a cia-acting element which regulates the transcription of genes in developmental stage and/or tissue-specific pattern. Typically, LCR consists of several DNase I hypersensitive sites (HSs), where the binding motifs for transcriptional activators are present. The binding of activators to the HSs recruits chromatin modifying complexes to the LCR, opening chromatin structure and modifying histones covalently through the locus. LCR forms close physical contact with target gene located at a distance by looping away intervening region. In addition, non-coding RNA is transcribed from LCR toward target genes in continuously acetylated active domain. These structural and functional features of LCR suggest that the LCR plays many roles in chromatin activation and transcriptional regulation.
Kim, Sung Woo;Jee, Byung Chul;Kim, Seul Ki;Kim, Seok Hyun
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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제44권4호
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pp.201-206
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2017
Objective: The aim of this study was to compare the efficacy of swim-up and density gradient centrifugation (DGC) for reducing the amount of sperm with fragmented DNA, sex chromosome aneuploidy, and abnormal chromatin structure. Methods: Semen samples were obtained from 18 healthy male partners who attended infertility clinics for infertility investigations and were processed with swim-up and DGC. The percentages of sperm cells with fragmented DNA measured by the sperm chromatin dispersion test, normal sex chromosomes assessed by fluorescence in situ hybridization, and abnormal chromatin structure identified by toluidine blue staining were examined. Results: The percentage of sperm cells with fragmented DNA was significantly lower in the swim-up fraction (9.7%, p= 0.001) than in the unprocessed fraction (27.0%), but not in the DGC fraction (27.8%, p= 0.098). The percentage of sperm cells with normal X or Y chromosomes was comparable in the three fractions. The percentage of sperm cells with abnormal chromatin structure significantly decreased after DGC (from 15.7% to 10.3%, p= 0.002). The swim-up method also tended to reduce the percentage of sperm cells with abnormal chromatin structure, but the difference was not significant (from 15.7% to 11.6%, p= 0.316). Conclusion: The swim-up method is superior for enriching genetically competent sperm.
Kim, Bong-Ki;Lee, Yun-Jung;Cui, Xiang-Shun;Kim, Nam-Hyung
한국동물번식학회:학술대회논문집
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한국동물번식학회 2001년도 춘계학술발표대회
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pp.41-41
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2001
Chromatin configuration and microtubule assembly were determined in porcine maturing and activated oocytes following intracytoplasmic sperm injection. Microtubule localization was confirmed using a mouse monoclonal antibody to $\alpha$-tubulin and detected using a fluorescent labeled goat anti-mouse secondary antibody. DNA was stained with propidium iodide. The image of microtubules and chromatin was captured using laser scanning confocal microscope. In germinal vesicle stage oocyte, sperm chromatin remained condensation and sperm derived microtubules were not observed at 8 to 12 h after sperm injection. At 24 h after injection, the sperm nucleus developed to the metaphase chromatin along the metaphase structure of female nucleus. In some metaphase I stage oocytes, sperm chromatin decondensed at 8 h to 12 h after injection, sperm aster was seen soon after sperm injection. At 24 h after sperm injection into metaphase I stage oocyte, male chromatin developed to the metaphase chromatin while female chromatin extruded first polar body and formed the metaphase chromatin. At 12 to 15 h after sperm injection into preactivated oocytes, condensed sperm nucleus was located in close proximity of female pronucleus. However, the condensed nucleus did not fuse with female pronucleus. In preactivated ocytes, injected sperm remained condensation, a few sperm organized small microtubular aster. Instead, maternal derived microtubules were organized near the female chromatin, which seem to move condensed male chromatin near to the female pronucleus. These results suggest that sperm nuclear decondensing activity and nucleation activity of centrosome during fertilization are cell cycle dependent. In absence of male functional centrosome, female origin centrosome takes over the role of microtubule nucleation for nuclear movement.
Background Adipocyte differentiation is completed by changing gene expression. Chromatin is closely related to gene expression. Therefore, its structure might be changed for adipocyte differentiation. Mouse 3T3-L1 preadipocytes have been used as a cell model to study molecular mechanisms of adipogenesis. Objective To examine changes of chromatin modification and expression of histone modifying enzymes during adipocyte differentiation. Methods Microscopic analysis and Oil Red O staining were performed to determine distinct phenotype of adipocyte differentiation. RT-PCR and Western blot analysis were used to examine expression levels of histone modifying enzymes during adipocyte differentiation. Histone modifications were examined by immunostaining analysis. Results Expression levels of P300 and cbp were increased during adipocyte differentiation. However, acetylation of histones was not quantitatively changed postdifferentiation of 3T3-L1 cells compared to that at pre-differentiation. RT-PCR and Western blot analyses showed that expression levels of hdac2 and hdac3 were increased during adipocyte differentiation, suggesting histone acetylation at chromatin level was homeostatically controlled by increased expression of both HATs and HDACs. Tri-methylation level of H3K9 (H3K9me3), but not that of H3K27me3, was significantly decreased during adipocyte differentiation. Decreased expression of setdb1 was consistent with reduced pattern of H3K9me3. Knock-down of setdb1 induced adipocyte differentiation. This suggests that setdb1 is a key chromatin modifier that modulates repressive chromatin. Conclusion These results suggest that there exist extensive mechanisms of chromatin modifications for homeostatic balance of chromatin acetylation and deconstruction of repressive chromatin during adipocyte differentiation.
The eukaryotic genome forms a chromatin structure that contains repeating nucleosome structures. Nucleosome packaging is regulated by chromatin remodeling factors such as histone chaperones. The Saccharomyces cerevisiae H3/H4 histone chaperones, CAF-1 and Asf1, regulate DNA replication and chromatin assembly. CAF-1 function is largely restricted to non-transcriptional processes in heterochromatin, whereas Asf1 regulates transcription together with another H3/H4 chaperone, HIR. This study examined the role of the yeast H3/H4 histone chaperones, Asf1, HIR, and CAF-1 in chromatin dynamics during transcription. Unexpectedly, CAF-1 was recruited to the actively transcribed region in a similar way to HIR and Asf1. In addition, the three histone chaperones genetically interacted with Set2-dependent H3 K36 methylation. Similar to histone chaperones, Set2 was required for tolerance to excess histone H3 but not to excess H2A, suggesting that CAF-1, Asf1, HIR, and Set2 function in a related pathway and target chromatin during transcription.
Transcription factor GATA-3 is the critical transcription factor for Th2 cell differentiation. In spite of its importance in Th2 cell differentiation, the molecular mechanism for its action in Th2 differentiation is poorly understood. Previous studies have suggested that GATA-3 may be involved in the chromatin remodeling in the Th2 cytokine locus. To determine whether GATA-3 exerts its effect on its target sites in the extrachromosomal status, cell transfection assay was performed. In this assay, 800 bp IL4 promoter-luciferase constructs linked with GATA-3 target sites were transfected into the M12 B cell line, D10 mouse Th2 cell lines, and human T lymphoma Jurkat cell lines with or without the GATA-3 expression vector. The GATA-3 effects on its target sites were minimal in the extrachromosomal status, supporting the previous propositions that GATA-3 functions at the chromatin level by remodeling chromatin structure.
Kim, In-Cheul;Ryu, Jae-Weon;Cho, Kyu-Ho;Hong, Joon-Ki;Choi, Eun-Ji;Choi, Bong-Hwan;Park, Jun-Cheol;Moon, Hong-Kil;Son, Jung-Ho
Reproductive and Developmental Biology
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제32권2호
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pp.127-133
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2008
The objective of this study was two folds: to investigate the relationship between paternal identification rate and sperm quality parameters such as motility and sperm chromatin structure assay after heterospermic insemination; to see if mutual complement between tests and development of useful technique to enhance the fertility in artificial insemination. In individual boar's fertilizing ability, 3 high fertility boars showed significantly high fertility (p<0.05) compared to 3 low fertility boars, but there was no difference in litter size between two groups. Sperm motility test in pooled and individual semen using computer assisted sperm analysis (CASA) revealed that no significant difference among boars. The high fertile boar showed tendency of low %Red (High red fluorescence/green+red fluorescence) in sperm chromatin structure assay (SCSA) but paternal identification rate from piglets did not differ after heterospermic insemination. The correlation coefficient between individual or pooled semen function test and farrowing rates were well correlated as follows: %Red with litter size (r= - 0.53, p=0.03); %Red with paternal identification rates (r=-0.51, p=0.03); paternal identification rates with litter size (r=0.57, p=0.02). These results indicate that sperm chromatin structure assay and sperm quality parameter test in pooled semen are useful method to predict and evaluate the fertilizing capacity after heterospermic insemination in boars.
Candida albicans is a major pathogenic fungus in humans, and meets at first the innate immune cells, such as macrophages, in its host. One important strategy of the host cell to kill C. albicans is to produce reactive oxygen species (ROS) by the macrophages. In response to ROS produced by the macrophages, C. albicans operates its defense mechanisms against them by expressing its oxidative stress response genes. Although there have been many research studies explaining the specific transcription factors and the expression of the oxidative stress genes in C. albicans, the regulation of the oxidative stress genes by chromatin structure is little known. Epigenetic regulation by the chromatin structure is very important for the regulation of eukaryotic gene expression, including the chromatin structure dynamics by histone modifications. Among various histone modifications, histone acetylation is reported for its direct relationship to the regulation of gene expression. Recent studies reported that histone acetyltransferases regulate genes to respond to the oxidative stress in C. albicans. In this review, we introduce all histone acetyltransferases that C. albicans contains and some papers that explain how histone acetyltransferases participate in the oxidative stress response in C. albicans.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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