Substance P[SP] has been known to be a peptide which may be plays a role as a neurotransmitter in central nervous system as well as peripheral autonomic nervous system. It has been reported that SP was widely distributed in the nerve of the tracheal smooth muscle and induced the muscle contraction. However, definite action mechanism of SP in the tracheal smooth muscle was not clear, yet. Thus, present experiment was performed to elucidate an effect of substance P and an action mechanism on contraction of the smooth muscle in rabbits. In order to find a neural mechanism to the effect of SP on the tracheal smooth muscle contraction, atropine sulfate, tetrodotoxin, propranol and phentolamine were administered at 10 min before the addition of SP. Otherwise,to find effect of SP antagonists on the action of SP, [D-Pro2, D-Try7,9]SP, [D-Arg1, D-Pro2, D-Trp7,9, Leu11]SP and [D-Pro4, D-Trp7,9]SP were administered as a same fashion. These following results were obtained. 1] SP induced contraction of the tracheal smooth muscle under resting condition and the contraction was increased dose-dependently. 2] Cholinergic blocker[atropine], neural blocker[tetrodotoxin] and adrenergic blocker[propranol and phentolamine] didn`t have an effect on the contractile response. 3] Three SP antagonists inhibited the contractile response. 4] Isoproterenol relaxed the contraction induced by SP. The above results suggested that SP induced contraction of the tracheal smooth muscle directly act to the smooth muscle in rabbits. The autonomic nervous system did not seem to participate in the SP action.
The aim of the present study was to examine the effects of ketamine, a dissociative anesthetics, on secretion of catecholamines (CA) secretion evoked by cholinergic stimulation from the perfused model of the isolated rat adrenal gland, and to establish its mechanism of action, and to compare ketamine effect with that of thiopental sodium, which is one of intravenous barbiturate anesthetics. Ketamine ($30{\sim}300{\mu}M$), perfused into an adrenal vein for 60 min, dose- and time-dependently inhibited the CA secretory responses evoked by ACh (5.32 mM), high $K^+$ (a direct membrane-depolarizer, 56 mM), DMPP (a selective neuronal nicotinic NN receptor agonist, $100{\mu}M$) and McN-A-343 (a selective muscarinic M1 receptor agonist, $100{\mu}M$). Also, in the presence of ketamine ($100{\mu}M$), the CA secretory responses evoked by veratridine (a voltage-dependent $Na^+$ channel activator, $100{\mu}M$), Bay-K-8644 (an L-type dihydropyridine $Ca^{2+}$ channel activator, $10{\mu}M$), and cyclopiazonic acid (a cytoplasmic $Ca^{2+}$-ATPase inhibitor, $10{\mu}M$) were significantly reduced, respectively. Interestingly, thiopental sodium ($100{\mu}M$) also caused the inhibitory effects on the CA secretory responses evoked by ACh, high $K^+$, DMPP, McN-A-343, veratridine, Bay-K-8644, and cyclopiazonic acid. Collectively, these experimental results demonstrate that ketamine inhibits the CA secretion evoked by stimulation of cholinergic (both nicotinic and muscarinic) receptors and the membrane depolarization from the isolated perfused rat adrenal gland. It seems likely that the inhibitory effect of ketamine is mediated by blocking the influx of both $Ca^{2+}$ and $Na^+$ through voltage-dependent $Ca^{2+}$ and $Na^+$ channels into the rat adrenal medullary chromaffin cells as well as by inhibiting $Ca^{2+}$ release from the cytoplasmic calcium store, which are relevant to the blockade of cholinergic receptors. It is also thought that, on the basis of concentrations, ketamine causes similar inhibitory effect with thiopental in the CA secretion from the perfused rat adrenal medulla.
배뇨근의 운동성에 대한 baclofen의 억제작용의 기전을 탐구하기 위하여 다음과 같은 실험을 하였다. 흰쥐 (Sprague-Dawley)의 방광에서 적출한 배뇨근절편을 적출근편실험조에 현수하고, 등척성 장력측정기를 사용하여 그 수축력을 묘기하였다. 실험조내의 영양액의 온도는 $37^{\circ}C$로 유지시키고, 95% 산소와 5% 이산화탄소의 혼합기체를 공급하여 pH를 7.4로 유지하였다. 배뇨근절편은 전기장자극에 의해 수축하였는데, 8분간의 전기장자극 유발수축 중 최초의 급격한 수축반응은 mATP와 baclofen에 의해 약간 억제되는 경향을 보였으며, 후기 4분간의 수축반응은 콜린성 무스카린성 수용체 봉쇄제인 atropine과 $GABA_B$ 수용체 효현제인 baclofen에 의해 유의하게 억제되었다. Atropine은 배뇨근 절편의 acetylcholine 유발 수축을 길항하였고, mATP는 ATP 유발 수축을 완전히 봉쇄하였으나, baclofen 존재하에서는 acetylcholine이나 ATP 첨가에 의한 배뇨근의 수축이 영향을 받지 않았다. 이상의 결과를 종합하면, 흰쥐 방광에는 $GABA_B$ 수용체가 존재하며 baclofen은 이 수용체를 통하여 콜린성신경 말단에서의 신경전달체의 유리를 억제하여 배뇨근의 수축성을 감소시킨다고 사료된다.
In addition to classic cholinergic and adrenergic pathways, the existence of a third division of autonomic control in the human airways has been proved. It is called a nonadrenergic noncholinergic(NANC) nervous system, and difficult to study in the absence of specific blockers. Neuropeptides are certainly suggested to be transmitters of this NANC nervous system. It is very frustrating to understand the pathophysiologic role of these peptides in the absence of any specific antagonists. However, further studies of neuropeptides might eventually lead to novel forms of treatment for bronchial asthma. Another study of the interaction between different components of the autonomic nervous system, either in ganglionic neurotransmission or by presynaptic modulation of neurotransmitters at the end-organ will elute neural control in airway disease, particularly in asthma. Studies of how autonomic control may be disordered in airway disease should lead to improvements in clinical management. Epithelial damage due to airway inflammation in asthma may induce bronchial hyperresponsiveness. Axon reflex mechanism is one of possible mechanisms in bronchial hyperresponsiveness. Epithelial damage may expose sensory nerve terminals and C-fiber nrve endings are stimulated by inflammatory mediators. Bi-directional communication between the nerves and mast cells may have important roles in allergic process. The psychological factors and conditioning of allergic reactions is suggested that mast cell activation might be partly regulated by the central nervous system via the peripheral nerves. Studies in animal models, in huamn airways in vitro and in patients with airway disease will uncover the interaction between allergic disease processes and psychologic factors or neural mechainsms.
The purpose of the present study was to examine the effect of naltrexone, an opioid antagonist, on secretion of catecholamines (CA) evoked by cholinergic nicotinic stimulation and membrane-depolarization from the isolated perfused rat adrenal gland and to establish the mechanism of its action. Naltrexone $(3{\times}10^{-6}M)$ perfused into an adrenal vein for 60 min produced time-dependent inhibition in CA secretory responses evoked by ACh $(5.32{\times}10^{-3}M)$ , high $K^+$$(5.6{\times}10^{-2}M)$ , DMPP ($10^{-4}$ M) and McN-A-343 $(10^{-4}M)$ . Naltrexone itself did also fail to affect basal CA output. In adrenal glands loaded with naltrexone $(3{\times}10^{-6}M)$ , the CA secretory responses evoked by Bay-K-8644, an activator of L-type $Ca^{2+}$ channels and cyclopiazonic acid, an inhibitor of cytoplasmic $Ca^{2+}-ATPase$, were also inhibited. However, in the presence of met-enkephalin $(5{\times}10^{-6}M)$ , a well-known opioid agonist, the CA secretory responses evoked by ACh, high $K^+$, DMPP, McN-A-343, Bay-K-8644 and cyclopiazonic acid were also significantly inhibited. Collectively, these experimental results demonstrate that naltrexone inhibits greatly CA secretion evoked by stimulation of cholinergic (both nicotinic and muscarinic) receptors as well as that by membrane depolarization. It seems that this inhibitory effect of naltrexone does not involve opioid receptors, but might be mediated by blocking both the calcium influx into the rat adrenal medullary chromaffin cells and the uptake of $Ca^{2+}$ into the cytoplasmic calcium store, which are at least partly relevant to the direct interaction with the nicotinic receptor itself.
The present study was undertaken to examine the influence of glucocorticoids on the secretory responses of catecholamines (CA) evoked by acetylcholine (ACh), DMPP, McN-A-343, excess K^+$ and Bay-K-8644 from the isolated perfused rat adrenal gland and to clarify the mechanism of its action. The perfusion of the synthetic glucocorticoid dexamethasone (10-100\;{\mu}M$) into an adrenal vein for 20 min produced a dose-dependent inhibition in CA secretion evoked by ACh (5.32 mM), excess K^+$ (a membrane-depolarizor 56 mM), DMPP (a selective nicotinic receptor agonist, 100\;{\mu}M$ for 2 min), McN-A-343 (a muscarinic receptor agonist, 100\;{\mu}M$ for 4 min), Bay-K-8644 (a calcium channel activator, 10\;{\mu}M$ for 4 min) and cyclopiazonic acid (a releaser of intracellular $Ca^{2+}$, 10\;{\mu}M$ for 4 min). Similarly, the preperfusion of hydrocortisone (30\;{\mu}M$) for 20 min also attenuated significantly the secretory responses of CA evoked by nicotinic and muscarinic receptor stimulation as well as membrane-depolarization, $Ca^{2+}$ channel activation and the release of intracellular $Ca^{2+}$. Furthermore, even in the presence of betamethasone (30{\mu}M$), CA secretion evoked by ACh, excess K^+$, DMPP and McN-A-343 was also markedly inhibited. Taken together, the present results suggest that glucocorticoids cause the marked inhibition of CA secretion evoked by both cholinergic nicotinic and muscarinic receptor stimulation from the isolated perfused rat adrenal gland, indicating strongly that this inhibitory effect may be mediated by inhibiting influx of extracellular calcium as well as the release of intracellular calcium in the rat adrenomedullary chromaffin cells.
Aim of this study was to investigate if pancreatic polypeptide (PP) reduced the insulin action via the intra-pancreatic cholinergic nerves in the isolated rat pancreas. The pancreas was isolated from rats and perfused with intra-arterial infusion of modified Krebs-Henseleit solution containing 2.5 mM glucose at a flow rate of 1.2 ml/min. Simultaneous intra-arterial infusion of insulin (100 nM) resulted inpotentiation of the pancreatic flow rate and amylase output which were stimulated by cholecystokinin (CCK, 14 pM). These potentiating actions of insulin on the CCK -stimulated pancreatic exocrine secretion were completely abolished by administration of rat PP. Vesamicol, a potent inhibitor of vesicular acetylcholine storage, and tetrodotoxin (TTX) also significantly reduced the combined actions of insulin and CCK. Administration of carbamylcholine, an acetylcholine agonist, completely restored the vesamicol- or TTX-induced inhibition of the potentiation between insulin and CCK. Also rat PP failed to attenuate the restoring effect of carbamylcholine. Electrical field stimulation (15-30 V, 2 msec and 8 Hz) resulted in a significant increase in the pancreatic flow rate and amylase output in voltage-dependent manner. Effects of electrical field stimulation were augmented by endogenous insulin. Rat PP also suppressed the pancreatic exocrine secretion stimulated by electrical field stimulation. These observations strongly suggest that PP inhibits the potentiating actions of insulin on CCK -stimulated pancreatic exocrine secretion by suppression of the intra-pancreatic cholinergic activity in the isolated rat pancreas.
The present study was designed to clarify whether tacrine affects the release of catecholamines (CA) from the isolated perfused model of rat adrenal gland or not and to elucidate the mechanism of its action. Tacrine $(3{\times}10^{-5}{\sim}3{\times}10^{-4}\;M)$ perfused into an adrenal vein for 60 min inhibited CA secretory responses evoked by ACh $(5.32{\times}10^{-3}\;M),$ DMPP (a selective neuronal nicotinic agonist, $10^{-4}$ M for 2 min) and McN-A-343 (a selective muscarinic M1-agonist, $10^{-4}$ M for 2 min) in relatively dose- and time- dependent manners. However, tacrine failed to affect CA secretion by high $K^+\;(5.6{\times}10^{-2}\;M).$ Tacrine itself at concentrations used in the present experiments did not also affect spontaneous CA output. Furthermore, in the presence of tacrine $(10^{-4}\;M),$ CA secretory responses evoked by Bay-K-8644 (an activator of L-type $Ca^{2+}$ channels, $10^{-4}\;M),$ but not by cyclopiazonic acid (an inhibitor of cytoplasmic $Ca^{2+}-ATPase,\;10^{-4}\;M),$ was relatively time-dependently attenuated. Also, physostigmine $10^{-4}\;M),$ given into the adrenal gland for 60 min, depressed CA secretory responses evoked by ACh, McN-A-343 and DMPP while did not affect that evoked by high $K^+.$ Collectively, these results obtained from the present study demonstrate that tacrine greatly inhibits CA secretion from the perfused rat adrenal gland evoked by stimulation of cholinergic (both nicotinic and muscarinic) receptors, but does fail to affect that by direct membrane-depolarization. It is suggested that this inhibitory effect of tacrine may be exerted by blocking both the calcium influx into the rat adrenal medullary chromaffin cells without $Ca^{2+}$ release from the cytoplasmic calcium store, that is relevant to the cholinergic blockade. Also, the mode of action between tacrine and physostigmine in rat adrenomedullary CA secretion seems to be similar.
The present study was designed to investigate the effect of naloxone, a well known opioid antagonist, on the secretion of catecholamines (CA) evoked by cholinergic stimulation and membrane-depolarization in the isolated perfused rat adrenal glands, and to establish its mechanism of action. Naloxone ($10^{-6}\~10^{-5}$ M), perfused into an adrenal vein for 60 min, produced dose- and time-dependent inhibition of CA secretory responses evoked by ACh ($5.32\times10^{-3}$ M), high K+ ($5.6\times10^{-2}$ M), DMPP ($10^{-4}$ M) and McN-A-343 ($10^{-4}$ M). Naloxone itself also failed to affect the basal CA output. In adrenal glands loaded with naloxone ($3\times10^{-6}$ M), the CA secretory responses evoked by Bay-K-8644, an activator of L-type $Ca^{2+}$ channels, and cyclopiazonic acid, an inhibitor of cytoplasmic $Ca^{2+}$-ATPase, were also inhibited. In the presence of met-enkephalin ($5\times10^{-6}$ M), a well known opioid agonist, the CA secretory responses evoked by ACh, high $K^+$, DMPP, McN-A-343, Bay-K-8644 and cyclopiazonic acid were also significantly inhibited. Taken together, these results suggest that naloxone greatly inhibits the CA secretion evoked by stimulation of cholinergic (both nicotinic and muscarinic) receptors as well as that by membrane depolarization. It seems that these inhibitory effects of naloxone does not involve opioid receptors, but might be mediated by blocking both the calcium influx into the rat adrenal medullary chromaffin cells and the uptake of $Ca^{2+}$ into the cytoplasmic calcium store, which are at least partly relevant to the direct interaction with the nicotinic receptor itself.
Kim, Dong-Yoon;Choi, Cheol-Hee;Kim, Chong-Dae;Kim, Kyoon-Hong;Kim, Soo-Bok;Lee, Byeong-Joo;Chung, Myung-Hyun
Archives of Pharmacal Research
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제12권3호
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pp.166-175
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1989
In the previous observations, it was reported that both total ginseng saponin and panaxadiol revealed the marked secretory effect of catecholamines (CA) from the rabbit adrenal gland and that CA secretion induced by them is due to dual mechanisms, cholinergic action and the direct action. In the present study, an attempt to investigate the effect of panaxatriol-type saponin (PT), which is known as an active component of Korean ginseng, on the secretion of CA from the rabbit adrenal gland was made. PT(200 $\mu$g) administered into adrenal vein evoked significantly secretion of CA from the isolated perfused rabbit adrenal gland. Secretory effect of CA produced by PT was attenuated clearly by treatment with chlorisondamine or adenosine, but was markedly increased by physostigmine. Perfusion of Krebs solution containing PT (200 $\mu$g) for 30 min potentiated greatly secretion of CA induced by acetylcholine. PT-induced CA secretion was weakened considerably by ouabain treatement or perfusion of calcium-free Krebs solution. These experimental data demonstrate that PT releases CA from the isolated perfused rabbit adrenal gland by a calcium-dependentd exocytotic mechanism. It seems that the secretory effect of PT is caused through the release of acetylcholine form cholinergic terminals present in the adrenal gland and a direct action on the chromaffin cell itself.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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