Mevinolin, a fungal metabolite, is a potent inhibitor of 3-hydroxy-methyl-3-glutaryl-coenzyme A (HMG-CoA) reductase, the rate-controlling enzyme in cholesterol biosynthesis. In this investigation, the optimum factors for mevinolin production by Monascus pilosus IFO 480 in soymeal fermentation were studied. The highest yield of mevinolin, 2.82 mg mevinolin per g dry weight, without citrinin (a toxic fungal secondary metabolite) was obtained after 21 days of fermentation at $30^{\circ}C$ at 65% moisture content, particle size 0.6-0.9 mm, and initial substrate pH of 6.0. Mevinolin was present in the fermentation substrate predominantly in the hydroxycarboxylate form (open lactone, 92.1-97.3%), which is currently being used as a hypocholesterolemic agent.
Lovastatin (also known as Mevinolin, Mevacor, and Monacolin K), an inhibitor of the HMG-CoA reductase produced by Aspergillus terreus and other fungi, is used to reduce serum cholesterol levels in human beings. It is derived biosynthetically from two polyketides. One of these is a nonaketide that undergoes cyclization at a hexahydronaphthalene ring system, and the other is a simple diketide, 2-methylbutyrate. Two primer pairs were designed based on the amino acid sequences of lovastatin polyketide synthase and lovastatin diketide synthase for the PCR screening of lovastatin-producing strains. Among the seven selected strains, SJ-2 evidenced the highest level of lovastatin production in both liquid and solid cultures. Soybeans with SJ-2 were treated via 1 hour of heat shock at $30^{\circ}C$ for the mass production of lovastatin. The heat-treated soybeans were inoculated on rice bran and the koji extract was obtained after 15 days of incubation. It yielded the highest level of lovastatin production among the strains, and also evidenced 75% inhibition activity against HMG-CoA reductase. We developed an efficient PCR screening method for lovastatin-producing strains, using lovastatin biosynthesis genes.
HMG-CoA reductase is th rate-limiting enzyme of cholesterol biosynthesis. As intracellular levels of cholesterol should be regulated elaborately in response to external stimuli an internal needs, the expression of the HMG-CoA reductase gene is regulated intricately at several different levels from transcription to post-translational modification. In this study, we investigated the regulatory mechanism of HMG-CoA reductase gene expression at the post-transcriptional/pre-translational levels in a baby hamster kidney cell line, C100. when 25-hydroxycholesterol was added to cells cultured in medium containing 5% delipidized fetal bovine serum and 25$\mu$M lovastatin, the levels of HMG-CoA reductase mRNA decreased rapidly, which seemed to be due to the increased degradation of reductase mRNA. These suppressive effects of 25-hydroxycholesterol on MG-CoA reductase mRNA levels were blocked by a translation inhibitor, cycloheximide. Similarly, actinomycin D and 5,6-dichloro-1-$\beta$-D-ribofuranosylbenzimidazole, transcription inhibitors, blocked the 25-hydroxycholesterol-mediated degradation of HMG-CoA reductase mRNA. These results indicate that new protein/RNA synthesis is required for the degradation of HMG-CoA reductase mRNA. In addition, data from the transfection experiments shows that cis-acting determinants, regulating the stability of reductase mRNA, were scattered in the sequence corresponding to 1766-4313 based on the sequence of Syrian hamster HMG-CoA reductase cDNA. Our data suggests that sterol-mediated destabilization of reductase mRNA might be one of the important regulatory mechanism of HMG-CoA reductase gene expression.
Buckwheat contains dietary rutin, a flavonol glycoside, which is able to antagonize hypertension in human and has antioxidant activity. Monacolin K, a secondary metabolite produced by fungi Monascus species, is an effective specific inhibitor of cholesterol biosynthesis. To develop functional health food, dehulled buckwheat was fermented with Manascus ruber to produce Anka, and contents of rutin and monacolin K and Anka were determined. The rutin content in dehulled buckwheat decreased slightly after germination, but increased with the growth of sprout. Growth of fungi had no influence on rutin content in dehulled buckwheat Anka, Monacolin K content in fermented dehulled buckwheat malt was lower than that in dehulled buckwheat Anka. Monacolin K content in dehulled buckwheat Anka decreased with increasing length of sprout in fermented dehulled buckwheat malt, probably due to consumption of nutrients, such as polysaccharides as carbon sources, during sprouting for growth of M. ruber.
Kim, Kwang-Hyeon;Park, Jun-Bom;Choi, Won-Jae;Lee, Han-Seung;Kang, Chin-Yang
Journal of Pharmaceutical Investigation
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v.41
no.4
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pp.239-247
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2011
Simvastatin is an inhibitor of 3-hydroxy-3-methylglutaryl-coenzyme A (HMG-CoA) reductase, which catalyzes the conversion of HMG-CoA to mevalonate, an early and rate-limiting step in the biosynthesis of cholesterol. Simvastatin has good permeability, but it also has low solubility (BCS class II), which reduces its bioavailability. To overcome this problem, a solid dispersion is formed using a spray-dryer with polymeric material carrier to potentially enhance the dissolution rate and extend drug absorption. As carriers for solid dispersion, Gelucire$^{(R)}$44/14 and Gelucire$^{(R)}$ 50/13 are semisolid excipients that greatly improve the bioavailability of poorly-soluble drugs. To avoid any toxic effects of an organic solvent, we used aqueous medium to melt Tween$^{(R)}$ 80 and distilled water. The structural behaviors of the raw materials and the solid dispersion were analyzed by differential scanning calorimetry (DSC), powder X-ray diffraction (PXRD) and scanning electron microscopy (SEM). The DSC and PXRD data indicated that the crystalline structure of simvastatin was transformed to an amorphous structure through solid dispersion. Then, solid dispersion-based tablets containing 20 mg simvastatin were prepared with excipients. Dissolution tests were performed in distilled water and artificial intestinal fluid using the USP paddle II method. Compared with that of the commercial tablet (Zocor$^{(R)}$ 20 mg), the release of simvastatin from solid dispersion based-tablet was more efficient. Although the stability study is not complete, this solid dispersion system is expected to deliver poorly water-soluble drugs with enhanced bioavailability and less toxicity.
Pravastatin sodium is a 3-hydroxy-3-methylglutaryl-coenzyme A (HMG-CoA) reductase inhibitor used in the treatment of hypercholesterolemia by reducing cholesterol biosynthesis. Pharmaceutical excipients of commonly used including water, diluents, stabilizers, disintegrants, lubricants and colorants, and were identified for compatibility. All tests were performed by means of physical mixture of pravastatin and the excipients, which were placed in a press-through-pack (PTP) and incubated under accelerated conditions ($40^{\circ}C$ and 75% relative humidity) for 3 months. The blends of pravastatin with all excipients developed white, off white, and light brown powders, which showed no changes upon visual analysis. Accelerated conditions changed the degradation profile of pravastatin calcium in the HPLC system when mixed with different excipients. Although most excipients can have minor effects on pravastatin stability, the major degradation product from pravastatin was lactone. Low-level interaction (assay and impurity) was induced by all excipients except for microcrystalline cellulose and croscarmellose sodium. These excipients increased lactone impurity in 3 months by as much as 0.22% and 0.18% respectively. The total mixture slightly increased the lactone impurity (by 0.43% in 3 months) of pravastatin. There was no change in the assays of all excipients. These results will be helpful in studying tablet size reductions for convenience of use.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.26
no.2
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pp.236-241
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1997
Inhibitory effects of several edible plant extracts against 3-hydroxy-3-methylglutaryl coenzyme A(HMG-CoA) reductase, a rate-limiting enzyme in the biosynthesis of cholesterol, were screened. Inhibition rates of $10{\sim}15%$ were observed with hot water extracts of Allium fistulosum, Allium sativum and Cucurbita maxima. Methanol extracts of Aster scaber, Allium sativum, Zingiber officinale, Oenanthe javanica and Angelica keiskei effectively reduced the enzyme activity with inhibition rates of $29{\sim}51%$. The methanol extract of Angelica keiskei was fractionated sequentially with chloroform, ethyl acetate and n-butanol. Of the fractions ethyl acetate fraction showed the highest inhibition against the enzyme. $Luteolin-7-O-{\beta}-D-glucoside$ and hyperoside isolated from the ethyl acetate fraction of Angelica keiskei inhibited the enzyme activity by 65.5% and 14.8%, respectively, at the concentration of $30{\mu}M$.
Lovastatin is a lipid lowering agent for the treatment of hypercholesterolemia and belongs to a new class of pharmacologic compounds called the 3-hydroxy-3-methylglutaryl coenzyme A (HMG CoA) reductase inhibitors. By competitively inhibiting HMG CoA reductase, lovastatin disrupts the biosynthesis of cholesterol in hepatic and peripheral cells and increases the synthesis of high-density-lipoprotein HDL) receptors. Following oral administration, the lactone ring of lovastatin is hydrolysed to the active inhibitor of HMG CoA reductase, lovastatin acid. Lovastatin is known to have poor oral absorption and wide individual variation. In this study, bioequivalence test of two lovastatin formulations, the test drug ($Lovaload^{TM}$, Chong Kun Dang Pharmaceutical Co.) and the reference drug ($Mevacor^{TM}$, Chung Wae Pharmaceutical Co.) were conducted according to the guidelines of Korea Food and Drug Administration (KFDA). A total of 18 healthy male volunteers, $31.90\pm3.60$ years old and $72.17\;7.88$ kg of body weight in average, were evaluated in a randomized crossover manner with a 2-week washout period. Concentrations of lovastatin acid in plasma were measured upto 12 hours following a single oral administration of eight tablets (20 mg of lovastatin per tablet) by high-performance liquid chromatography with UV detection at 238 nm. The area under the concentration-vs-time curve from 0 to 12 hours $(AUC_{0-12h})$ was calculated by the trapezoidal summation method. The statistical analysis showed that there are no significant differences in $AUC_{0-12h),\;C_{max}\;and\;T_{max}$ between the two formulations ($6.72\%,\;1.52\%,\;and\;0.88\$, respectively). The least significant differences between the formulations at $\alpha$=0.05 were less than $20\%\;(11.65\%,\;19.73\%,\;and\;14.81\%\;for\;AUC_{0-12h},\;C_{max}\;and\;T_{max}$, respectively). The $90\%$ confidence intervals for these parameters were also within $\pm20\%\;(-1.50{\leq}{\delta}{\leq}15.00$, $-12.50{\leq}{\delta}{\leq}15.50,\;and\;-9.64{\leq}{\delta]{\leq}11.40{\leq}\;for\;\;AUC_{0-12h}$ ,$C_{max}\;and\;T_{max}$, respectively). In conclusion, the new generic product $Lovaload^{TM}$ was proven to be bioequivalent with the reference drug.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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