Although the sera used in animal cell culture media provide the macromolecules, nutrients, hormones, and growth factors necessary to support cell growth, it could also be an obstacle to the production of recombinant proteins in animal cell culture systems used in many sectors of the biotechnology industry. For this reason, many research groups, including our laboratory, have been trying to develop serum-free media (SFM) or serum-supplemented media (SSM) for special or multi-purpose cell lines. The Chinese hamster ovary (CHO) cell, for example, is frequently used to produce proteins and is especially valuable in the large-scale production of pharmaceutically important proteins, yet information about its genome is lacking. Also, SFMs have only been evaluated by comparing growth patterns for cells grown in SFMs with those grown in SSM or by measuring the titer of the target protein obtained from cells grown in each type of medium. These are not reliable methods of obtaining the type of information needed to determine whether an SFM should be replaced with an SSM. We carried out a cDNA microarray analysis to evaluate MED-3, an SFM developed in our laboratory, as a CHO culture medium When CHO cells were cultured in MED-3 instead of an SSM, several genes associated with cell growth were down-regulated, although this change diminished over time. We found that the insulin-like growth factor (IGF) gene was representative of the proteins that were down-regulated in cells cultured in MED-3. When several key supplements - including insulin, transferrin, ethanolamine, and selenium - were removed from MED-3, the IGF expression was consistently down- regulated and cell growth decreased proportionately. Based on these results, we concluded that when an SFM is used as a culture medium, it is important to supplement it with substances that can help the cells maintain a high level of IGF expression. The data presented in this study, therefore, might provide useful information for the design and development of SFM or SSM, as well as for the design of genome-based studies of CHO cells to determine how they can be used optimally for protein production in pharmaceutical and biomedical research.
Sodium butyrate (NaBu) is used as an enhancer for the production of recombinant proteins in Chinese hamster ovary (CHO) cells. However, NaBu is well-known for its cytotoxic effect, thereby inducing apoptosis. CHO cells which had been engineered to express a humanised anti-HBV antibody were cultured using serum-free medium, Ex-cell 301. From a seeding density of $2{\times}10^5$ cells/ml, CHO cells grown with serum-free medium reached a maximum cell density of $1.3{\times}10^6$ cells/ml after 9 days in culture and produced a maximal antibody concentration of 130 mg/l after 13 days in culture. In the perfusion culture system, CHO cells producing anti-HBV antibody grown in an 7.5 1 bioreactor seeded with $2{\times}10^5$ cells/ml reached a maximal antibody concentration of 85 mg/1 after 720 h in culture. The addition of 0.3 mM NaBu and lowering culture temperature to $33^{\circ}C$ elongated the culture period to 60 days and increased the production yield by 2-fold, compared to control culture.
Cell line development is the most critical and also the most time-consuming step in the production of recombinant therapeutic proteins. In this regard, a variety of vector and cell engineering strategies have been developed for generating high-producing mammalian cells; however, the cell line engineering approach seems to show various results on different recombinant protein producer cells. In order to improve the secretory capacity of a recombinant tissue plasminogen activator (t-PA)-producing Chinese hamster ovary (CHO) cell line, we developed cell line engineering approaches based on the ceramide transfer protein (CERT) and X-box binding protein 1 (XBP1) genes. For this purpose, CERT S132A, a mutant form of CERT that is resistant to phosphorylation, and XBP1s were overexpressed in a recombinant t-PA-producing CHO cell line. Overexpression of CERT S132A increased the specific productivity of t-PA-producing CHO cells up to 35%. In contrast, the heterologous expression of XBP1s did not affect the t-PA expression rate. Our results suggest that CERT-S132A-based secretion engineering could be an effective strategy for enhancing recombinant t-PA production in CHO cells.
Kim, Gyoo-Cheon;Lee, Dong-Wook;Shin, Eun-Joo;Um, Kyung-Il
한국환경성돌연변이발암원학회지
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제16권1호
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pp.19-23
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1996
This study was performed by the sister chromatid exchanges (SCEs) and micronuclei (MN) assays to investigate the adaptive response to ultraviolet light (UV) or ethyl methanesulfonate (EMS) in Chinese hamster ovary (CHO) and Sarcoma 180 (S180) cells. The pretreatment with 1 J/m$^2$ UV or 2 mM EMS decreased the frequency of SCEs induced by the treatment with 5 J/m$^2$ UV or 8 mM EMS in CHO cells. The pretreatment with UV (1 or 2 J/m$^2$) or EMS (1, 2 or 3 mM) did not affect the SCEs induced by the treatment with 7 J/m$^2$ UV or 10 mM EMS in S180 cells. On the other hand, the pretreatment with 1 J/m$^2$ UV or 2 mM EMS decreased the frequency of MN induced by the treatment with 5 J/m$^2$ UV or 8 mM EMS in CHO cells. The pretreatment with UV (1 or 2 J/m$^2$) or EMS (1, 2 or 3 mM) did not affect the frequency of MN induced by the treatment with 7 J/m$^2$ UV or 10 mM EMS in S180 cells. It is suggested that there are adaptive responses at the level of chromosome and micronuclei to UV and EMS in CHO cells.
Vascular endothelial growth factors (VEGFs) are a family of proteins that mediate angiogenesis. $VEGF_{165}$ is a VEGF-A isoform and has been extensively studied owing to its potential use in therapeutic angiogenesis. This study established Chinese hamster ovary (CHO) cells overexpressing recombinant human $VEGF_{165}$$(rhVEGF_{165})$ protein. The production rate of the established CHO cells was over 80mg/l of $rhVEGF_{165}$ protein from a 7-day batch culture process using a 7.5-l bioreactor with a 5-l working volume and serum-free medium. The $rhVEGF_{165}$ protein was purified to homogeneity from the culture supernatant using a two-step chromatographic procedure that resulted in a 48% recovery rate. The purified $rhVEGF_{165}$ protein was a glycosylated homodimeric protein with a higher molecular weight (MW) than the protein expressed from insect cells, suggesting that the glycosylation of the $rhVEGF_{165}$ protein in CHO cells differed from that in insect cells. The purified $rhVEGF_{165}$ protein in this study was functionally active with a half-maximal effective concentration of 3.8ng/ml and specific activity of $2.5{\times}10^5U/mg$.
Bone morphogenetic protein-4 (BMP-4) is considered to have therapeutic potential for various diseases, including cancers; however, the high expression of biologically active recombinant human BMP-4 (rhBMP-4) needed for its manufacture for therapeutic purposes has yet to be established. In the current study, we established a recombinant Chinese hamster ovary (rCHO) cell line overexpressing rhBMP-4 as well as a production process using 7.5-l bioreactor (5 L working volume). The expression of the mature rhBMP-4 was significantly enhanced by recombinant furin expression. The combination of a chemically defined medium and a nutrient supplement solution for high expression of rhBMP-4 was selected and used for bioreactor cultures. The 11-day fed-batch cultures of the established rhBMP-4-expressing rCHO cells in the 7.5-L bioreactor produced approximately 32 mg/l of rhBMP-4. The mature rhBMP-4 was purified to homogeneity from the culture supernatant using a two-step chromatographic procedure, resulting in a recovery rate of approximately 55% and a protein purity greater than 95%. The N-terminal amino acid sequences and N-linked glycosylation of the purified rhBMP-4 were confirmed by N-terminal sequencing and de-N-glycosylation analysis, respectively. The mature purified rhBMP-4 has been proved to be functionally active, with an effective dose concentration of $EC_{50}$ of 2.93 ng/ml.
세로토닌 수용체는 세로토닌과 반응하여 세포막의 G단백질을 통해 중개단백질 (adenylyl cyclase, phospholipase C, cGMP phosphodiesterase, ion channel)을 활성화시켜, 이뇨, 기억, 발생 등의 다양한 생리적 반응에 관여한다. 곤충세포인 Schneider2 (S2)와 척추동물 세포인 Chinese hamster ovary (CHO)-Kl에서 Aedes 5-HT$_{7}$ 수용체 유전자 발현을 비교하기 위해, Aedes 5-HT$_{7}$ 수용체 유전자를 형질이입시켰다. 선발된 세포주들(Tr-S2, Tr-CHO)에서 세로토닌 수용체 유전자의 발현은 reverse transcription-PCR, Western blot, immunocytochemistry를 이용하여 확인하였다. 세로토닌 농도증가에 대한 Aedes 5-HT$_{7}$수용체의 기능을 세포 내 cAMP수준을 통해 조사한 결과,Tr-CHO 세포주는 Tr-S2 세포주보다 9배 이상 cAMP수준이 높게 나타났으며, 농도에 의존적이었다. 이 결과는 수용체 유전자가 세포에서 발현되었으나, 세포의 종류와 세포막에 존재하는 G단백질 차이에 따라 중개단백질 활성 차이가 있다는 것을 보여주었다. CHO-Kl 세포에서 Aedes 5-HT$_{7}$ 수용체의 기능이 S2 세포보다 더 효율적이며, Aedes 5-HT$_{7}$ 수용체를 발현하는 Tr-CHO 세포주는 동력제 또는 대립제 검정에 활용될 수 있을 것으로 기대된다. 것으로 기대된다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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