Proceedings of the Korea Society of Poultry Science Conference
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한국가금학회 2000년도 제17차 정기총회 및 학술발표
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pp.88-90
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2000
Although primordial germ cells(PGCs) have been used in the production of germline chimera, efficiency has not been satisfactory. The Present study was conducted to improve efficiency of germline chimera production using the cultured gonadal PGCs(gPGCs). Germline chimeric chickens were produced by transfer of cultured gonadal primordial germ cells from Korean Ogol Chicken (KOC) to White Leghorn (5.5-day-old) and cultured in vitro for 10 days. Approximately 200 gPGCs (2-day-old) recipient embryos from which blood had been withdrawn via the dorsal aorta prior to the injection. Recipient embryos were incubated until hatching. Germline chimerism of the chickens reaching maturity was examined by mating them with Korean Ogol Chicken. Donor-derived offspring were identified as germline chimeric chickens based on their feather color. The frequency of germline transmission of donor PGCs ranged 1.9∼60.7%. There was no difference between both sexes. Therefore, it can be concluded that efficiency of germline chimerism can be improved via using cultured gPGCs.
Poor long term patient survival (60% at 2 years) in lung allograft recipients are mainly due to rejection and complications associated with the use of nonspecific immunosuppressants. Better means to achieve waft acceptance is desperately needed. 1 have investigated whether mixed allogeneic chimerism in the form of bone marrow stem cell engraftment would induce donor-specific tolerance for lung allografts. Fisher (F344) and Wistar Forth (WF)rats were lethally irradiated (1100c0y) and reconstituted with a mixture of T-cell depleted syngeneic and allogeneic bone marrow (F344+WFIWF, ACI +F344- F344). After Mixed chimerism was documented by peripheral blood Ipnphocyte typing at 28 days, orthotopic left single lung transplantation was performed, using donor-s ecific or third party allografts. No immunosuppressants were administered. Graft rejection was monitored by chest rentgenography, and con- firmed by histology Mixed chimeric rats accepted lung allografts permanently, and it was not strain specific effect. Tolerance was all or none phenomenon which had nothing to do with the percentage of chimerlsm. Mixed chimeras rejected third party allografts in less than 10 days, a time course similar to that of unmanipulated controls. No acute or chronic rejection was observed in donor specific grafts more than 150 days posttransplant. These data suggest that mixed chimerism in the form of bone marrow stem cell engraftment results in stable, systemic donor-specific transplantation tolerance for lung allografts.
Multiplex PCR-based short tandem repeat (STR) analysis is considered as a good tool for monitoring bone marrow engraftment after sex-mismatched allogeneic transplantation and provides a sensitive and accurate assessment of the contribution of both donor and/or recipient cells in post-transplantation specimens. Forensic STR analysis and quantitative real time PCR are used to determine the proportion of donor versus recipient each contained within the total DNA. The STR markers were co-amplified in a single reaction by using commercial $PowerPlex^{(R)}$ 16 system and $AmpFISTR^{(R)}$$Identifiler^{(R)}$ / $Yfiler^{(R)}$ PCR amplification kits. Separation of the PCR products and fluorescence detection were performed by ABI $PRIS^{(R)}$ 3100 Genetic Analyzer with capillary electrophoresis. The $GeneMapper^{TM}$ ID software were used for size calling and analysis of STR profiles. Extracted DNA was quantified by the $Quantifiler^{TM}$ Human DNA / Y Human Male DNA Quantification Kit The intent of this study was to analyze the ratio of donor versus recipient cells in the post-transplant peripheral blood, spleen, lung and kidney specimens. Specimens were taken from the traffic accident male victim who had been engrafted from bone marrow female donor. Blood and spleen specimens displayed female donor DNA profile. Kidney specimen showed male recipient DNA profile. Interestingly, lung tissue showed mixed profiles. The findings of this study indicate that the forensic STR analysis using fluorescence labeling PCR combined with capillary electrophoresis is quick and reliable enough to assess the ratio of donor versus recipient cells and to monitor the mixed chimeric patterns.
Background: Graft-versus-host disease (GVHD) is a huddle for success of hematopoietic stem cell transplantation. In this study, effects of irradiation dose on immune kinetics of GVHD were investigated using B6 ${\rightarrow}$ BALB.B system, a mouse model for GVHD after MHC-matched allogeneic transplantation. Methods: BALB.B mice were transplanted with bone marrow and spleen cells from C57BL/6 mice after irradiation with different doses. Leukocytes residing in the peripheral blood and target organs were collected periodically from the GVHD hosts for analysis of chimerism formation and immune kinetics along the GVHD development via flow cytometry. Myeloid cells were tested for production of IL-17 via flow cytometry. Results: Pre-conditioning of BALB.B hosts with 900 cGy and 400 cGy resulted in different chimerism of leukocytes from the blood and affected survival of GVHD hosts. Profiles of leukocytes infiltrating GVHD target organs, rather than profiles of peripheral blood leukocytes (PBLs), were significantly influenced by irradiation dose. Proportions of IL-17 producing cells in the infiltrating $Gr-1^+$ or $Mac-1^+$ cells were higher in the GVHD hosts with high does irradiation than those with low dose irradiation. Conclusion: Pre-conditioning dose affected tissue infiltration of leukocytes and cytokine production by myeloid cells in the target organs.
Chimerism has become an important tool for investigating fundamental aspects of early embryonic development and differentiation in mammals for producing transgenic animals. The objective of this study was to evaluate the developmental capacity of chimeric embryos reconstructed with parthenotes and IVF bovine embryos into empty zona pellucida. The MII oocytes were activated by two treatment groups [Group 1, 5 μM inomycin, 5min, + 10 ㎍/㎖ cycloheximide (CHX)/5 ㎍/㎖ cytochalasin B (CCB), 3 h; Group 2, 5 μM ionomycin, 5 min + 1.9 mM 6-dimetylaminopurine (6-DMAP), 3 h]. (omitted)
To obtain monozygotic multiplets from 8-cell mouse embryos, we artificially constructed chimeric embryos by introducing one blastomere (donor) of 8-cell embryos of Fl hybrid (C57BL/6 X CBA) mice into 4-cell ICR mouse embryos (carrier) of which one blastomere had been previously removed with a micromanipulator. After 42 h of culture, the developmental frequency of chimeric embryos to normal morula and blastocyst was 95% (310/328). When chimeric embryos at morula or blastocvst stage were transferred to pseudopregnant mice,39%, (70/180) of them were born. Most of the offspring (56/70) were the carrier type in coat color, whereas only three of them were the donor type, of which ho were assumed to be derived from single 8-cell donor embryo. Because the two donor type mice Ivere the same sex and produced only the donor type offspring from a testcross, they are probably monozvgotic multiplets of 8-cell mouse embryos. However, since their internal chimerism was not able to be examined, it remains to be determined if their genetic constitutions are identical.
This study was conducted to detect the Y-specific DNA in the blood of the female calf in bovine heterosexual production. Genomic DNAs of the freemartin were isolated from the blood and amplified with Y-chromosome specific DNA primer(l4lbp). In order to estimate the lower limit for the detection of XY cells, blood from a hull was diluted in cow blood to 0.01%. DNA sequencing on the PCR products was shown the same sequences as Y chromosome DNA of the normal cows. The Y specific DNA hand by PCR was detected all blood of female calf suspected to have bovine freemar tin syndrom and the karyotyping with freemartin blood was identified as XX / XY chimerism. Therefore, the PGR methods used in this study was very useful technique for the detection of freemartin in Ranwoo and Holstein.
A novel sterategy has been established to determine the origin of the Primordial Germ Cells (PGCs) in avian embryos directly and the developmental fate of the PGCs for the application to Poultry biotechnology. Cells were removed from 1) the centre of area pellucida, 2) the outer of area pellucida and 3) the area opaca of the stage X blastoderm (Eyal-Giladi & Kochav, 1976). When the cells were removed from the centre of area pellucida, the mean number of circulating PGCs in blood was significantly decreased in the embryo at stage 15 (Hamburger & Hamilton, 1951) as compared to intact embryos. When the cells were replenished with donor cells, no reduction in the PGCs number was observed. The removal of cells at the outer of area pellucida or at the area opaca had no effect on the number of PGCs. In case, another set of the manipulated embryos were cultured ex vivo to the hatching and reared to the sexual maturity, the absence of germ cells and degeneration of seminiferous tubules was observed in resulting chickens derived from the blastoderm in which the cells were removed from the centre of the area pellucida. It was concluded that the avian Primordial Germ cells are originated at the center of area pellucida. Developmental ability of the cells to differentiate into somatic cells and germ cells in chimeras were analyzed. Somatic chimerism was detected as black feather attributed from donor cells. Molecular identification by use of female - specific DNA was performed. It was confirmed that the donor cells could be differentiated into chimeric body and erythrocytes. Donor cells retained the ability to differentiate into germline in chimeric gonads. More than 70% of the generated chimeras transmitted donor derived gametes to their offspring indicating that the cells at the center of area pellucida had the high ability to differentiate into germ cells. A molecular technique to identify germline chimerism has been developed by use of gene scan analysis. Strain specific DNA fragments were amplified by the method. It would be greatly contributed for the detection of germline chimerism. Mixed- sex chimeras which contained both male and female cells were produced to investigate the developmental fate of male and female cells in ovary and testes. The sex combinations of donor and recipient of the resulting chimeras were following 4 pairs; (1) chimeras (ZZ/ZZ) produced by a male donor (ZZ) and a male recipient (ZZ), (2) chimeras (ZW/ZW) produced by a female donor (ZW) and a female recipient (ZW), (3) chimeras (ZZ/ZW) Produce by a male donor (ZZ) and a female recipient (ZW), (4) chimeras (ZW/ZZ) produced by a female donor (ZW) and a male recipient (ZZ). It was found that genetically male avian germ cells could differentiate into functional ova and that genetically female germ cells can differentiate into functional spermatozoa in the gonad of the mixed- sex chimeras. An ability for introduction of exogenous DNA into the PGCs from stage X blastoderms were analyzed. Two reporter genes, SV-$\beta$gal and RSV-GFP, were introduced into the PGCs. Expression of bacterial/gal was improved by complexing DNA with liposome detectedcc in 75% of embryos at 3 days embryos. At the embryos incubated for 1 day, expression of the GFP was observed all the embryos. At day 3 of incubation, GFP was detected in about 70% of the manipulated embryos. In case of GFP, expression of the transgene was detected in 30 %e of the manipulated embryos. These results suggested that the cells is one of the most promising vectors for transgenesis. The established strategy should be very powerfull for application to poultry biotechnology.
This experiment was designed to improve the production efficiency of germ-line chimeric mice from phospholipase C (PLC)-$\beta$3 or peroxiredoxin (Prx) E -targeted ($\Delta$) ES cells by the investigating the manipulation conditions and characteristics of Jl ES cells. Four targeting clones were isolated to investigate the karyotypical and morphological stability prior to injection. All clones ($\Delta$PLC$\beta$-3 C3, $\Delta$Prx II C3, C10 and I5) showed more than 80% euploidism, however, most of $\Delta$PLC$\beta$-3 C3 clones were extensively differentiated compared to the other clones. Nine of 13 $\Delta$Prx II chimeras appeared to have at least 80% chimerism, whereas $\Delta$PLC$\beta$-3 C3 chimeras had 20% chimerism at most. Therefore, the morphological stability of ES cells under stable euploidism might mainly affect the production rate of high-coat chimeric mice. To increase the collection rate of injectable blastocysts (IBs), 5 to 10 week -aged C57BL/6J female mice were sacrificed at 3.5 days post-coitum. Ten week-aged mice were the most optimal IB donors by showing the highest collection rate (2.94/mouse) of injectable blastocysts without increase of non-injectable embryos (0.29/mouse). Foster mothers might be another factor because ICR x C57BL/6J F1 foster mother showed more increased productivity in litter size (2.8 vs. 5.6) and chimera (0 vs. 35.3%) than those of ICR foster mothers. In conclusion, the efficient production of germ-line chimeras mainly depends on the maintenance of ES cell morphology during targeting procedure, and the establishment of manipulation conditions might be a key point to maximize it.
This study was conducted to identify optimistic primordial germ cells'(PGCs) migration activity using heat activated busulfan treatment for the increasing germline chimerism. Donar PGCs viability tests of important conditions for useful germ line chimerism indicated approximately $70{\sim}80%$ viability was time dependent. Transplantation experiments of PGCs into recipient embryos after busulfun treatment, showed the treatment group having 23.5% viability. By comparison, the control group showed 4.8% viability. The 96 hour treatment group and the 118 hour treatment group of the cultured PGCs showed high migration activity. Generally, the transplantation method would consider morphological and physiological characteristics before transplantation. In the present study, the effect of busulfan on migration activity showed viability highest at 53.4% after 48-hour incubation time. However, a previous study showed the best condition for transplantation time to be prior to the 48-hour incubation period, when the chicken embryo does not yet have a developed blood vessel system. In conclusion, an important condition for the production of a transgenic chicken is that most donor PGCs migrate into the recipient embryo without any inhibitory factors. The present results suggest, perhaps by using this modified method of transplantation, it can produce a more efficient chimeric germ line, transgenic chicken.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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