Celluloytic bacteria, -Gram positive, Gram negative and actionmycetes-were used to study their catabolic pathways of carbohydrate. It was found that Embden-Meyerhof-Parnas(EMP) pathway and hexose monophosphate(MHP) shunt were operated in Cellulomonase sp. CS1-1, C. flavigena, and Pseudomonas fluorescens subsp. cellulosa when they were cultured in a glucose containing medium, whilst gluconate was catabolised mainly via Entner-Doudoroff(ED) pathway, and to some extend through HMP shunt. Enzymes of ED pathway in the orgamisms were induced by gluconate. On the other hand Nocardia cellulans catabolised glucose and gluconate via EMP pathway and HMP shunt. The growth rate of N. Cellulans on gluconate were much slower than that on glucose.
This study was conducted to evaluate the yield of bio-ethanol produced by separate hydrolysis and fermentation (SHF) with the pretreated rapeseed straw (RS) using crude enzyme of Cellulomonas flavigena and Saccharomyces cereviase. Crude enzyme of C. flavigena showed enzymatic activity of 14.02 U/mL for CMC 133.40 U/mL, for xylan 15.21 U/mL, for locust gum and 15.73 U/mL for rapeseed straw at pH 5.0 and $40^{\circ}C$, respectively. The hemicellulose contents of RS was estimated to compromise 36.62% of glucan, 43.20% of XMG (xylan + mannan + galactan), and 2.73% of arabinan by HPLC analysis. The recovering ratio of rapeseed straw were investigated to remain only glucan 75.2% after 1% $H_2SO_4$ pretreatment, glucan 45.44% and XMG 32.13% after NaOH, glucan 44.75% and XMG 5.47% after $NH_4OH$, and glucan 41.29% and XMG 41.04% after hot water. Glucan in the pretreatments of RS was saccharified to glucose of 45.42 - 64.81% by crude enzyme of C. flavigena while XMG was made into to xylose + mannose + galactose of 58.46 - 78.59%. Moreover, about 52.88 - 58.06 % of bio-ethanol were obtained from four kinds of saccharified solutions by SHF using S. cerevisiae. Furthermore, NaOH pretreatment was determined to show the highest mass balance, in which 21.22 g of bio-ethanol was produced from 100 g of RS. Conclusively, the utilization of NaOH pretreatment and crude enzyme of Cellulomonas flavigena was estimated to be the best efficient saccharification process for the production of bio-ethanol with rapeseed straw by SHF.
Three hundred and one cellulolytic bacterial were isolated from the 148 screening sources such as decomposed wood, soil, compost and leaf mold. Among them, strain KL-6 was found to have the highest of cellulase activity, and identified as species belonged to the genus Cellulomonas. Strain KL-6 was decompose up to 90% of the filter paper (whatman No. 1) substrate within 50 hours, and showed the colony halo formation (11 cm). The activities of CMCase (67 unit/ml), FPase (70 unit/ml) and ${\beta}-glucosidase$ (0.68 unit/ml) were obtained when this strain was cultured for 50 hrs at $30^{\circ}C$. Glucose was not found in detectable amounts at the FP medium. The optimum composition of nutrient medium for the cell growth by strain KL-6 was sucrose 0.5%, yeast extract 0.1%, $(NH_4)_2HPO_4\;0.1%$, $K_2HPO_4\;0.1%$, $MgSO_4{\cdot}7H_2O\;0.01%$, $CaCl_2\; 0.01%$, NaCl 0.6%, $CaCO_3\;0.1%$ and the optimum pH and temperature were 7.0 and $30^{\circ}C$, respectively.
To produce L-lysine from cellulosic substrate, the intergeneric protoplast fusion between Cellulomonas flavigena and Corynebacterium glutamicum, Cellulomonas flavigena and Brevibacterium flavum was performed. The fusion frequencies were 1.9$\times$10$^{-6}$ to 2.1$\times$10$^{-6}$ for the regenerated protoplasts when two parental strains were treated with 30% of polyethyleneglycol (M.W.6000) containing 5 mM EDTA at 3$0^{\circ}C$ for 30 min. Two fusants, FCB3 and FCC 19 were finally selected by comparision of their genetic stability and L-lysine productivity. The properties of fusants-DNA con-tent, G+C content and L-lysine productivity-were investigated. The DNA content of fusants was greater than those of the parental strain and their G+C contents are equal to half of total G+C con-tent of two parental strains. The fusants showed high productivity of L-lysine from carboxy methyl cellulose as substrate.
A ${\beta}$-glucosidase with the molecular mass of 160,000 Da was purified to homogeneity from cell extract of a cellulolytic bacterium, Cellulomonas uda CS1-1. The kinetic parameters ($K_m$ and $V_{max}$) of the enzyme were determined with pNP-cellooligosccharides (DP 1-5) and cellobiose. The molecular orbital theoretical studies on the cellulolytic reactivity between the pNP-cellooligosaccharides as substrate (S) molecules and the purified ${\beta}$-glucosidase (E) were conducted by applying the frontier molecular orbital (FMO) interaction theory. The results of the FMO interaction between E and S molecules verified that the first stage of the reaction was induced by exocyclic cleavage, which occurred in an electrophilic reaction based on a strong charge-controlled reaction between the highest occupied molecular orbital (HOMO) energy of the S molecule and the lowest occupied molecular orbital (LUMO) energy of the hydronium ion ($H_3O^+$), more than endocyclic cleavage, whereas a nucleophilic substitution reaction was induced by an orbital-controlled reaction between the LUMO energy of the oxonium ion ($SH^+$) protonated to the S molecule and the HOMO energy of the $H_2O_2$ molecule. A hypothetic reaction route was proposed with the experimental results in which the enzymatic acid-catalyst hydrolysis reaction of E and S molecules would be progressed via $SN_1$ and $SN_2$ reactions. In addition, the quantitative structure-activity relationships (QSARs) between these kinetic parameters showed that $K_m$ has a significant correlation with hydrophobicity (logP), and specific activity has with dipole moment, respectively.
This study was performed to produce succinic acid from biomass by developing mutants of Cellulomonas flavigena in which the succinate dehydrogenase gene (sdh) is deleted. For development of succinate producing mutants, the upstream and downstream regions of sdh gene from C. flavigena and antibiotic resistance gene (neo, bla) were inserted into pKC1139, and the recombinant plasmids were transformed into Escherichia coli ET12567/pUZ8002 which is a donor strain for conjugation. C. flavigena was conjugated with the transformed E. coli ET12567/pUZ8002 to induce the deletion of sdh in chromosome of this bacteria by double-crossover recombination. Two mutants (C. flavigena H-1 and H-2), in which sdh gene was deleted in the chromosome, were constructed and confirmed by PCR. To estimate the production of succinic acid by the two mutants when the culture broth was fermented with biomass such as CMC, xylan, locust gum, and rapeseed straw; the culture broth was analyzed by HPLC analysis. The succinic acid in the culture broth was not detected as a fermentation products of all biomass. One of the reasons for this may be the conversion of succinic acid to fumaric acid by sdh genes (Cfla_1014 - Cfla_1017 or Cfla_1916 - Cfla_1918) which remained in the chromosomal DNA of C. flavigena H-1 and H-2. The other reason could be the conversion of succinyl-CoA to other metabolites by enzymes related to the bypass pathway of TCA cycle.
Experiments were carried out to find possibility of economic production of SCP in mixed culture by Cellulomonas sp. KL-6 and E. coli LI-10. The best cell growth was obtained at the ratio of 1 : 1(v/v) in mixed culture. When these strains were mixed culture, cell growth was increased to about 63%, compared with those of single culture of strain KL-6. It was found that the majority of the population during growth in mixed culture consisted of strain KL-6. $CaCO_3$ added to the medium as the ratio of 0.1% was enhanced medium pH. Cell growth increased in that circumstances. These strains produced much amounts of cellobiose, but glucose was not detected in filter paper medium. When these organisms were cultured under the optimal medium for 4 days, cell mass was produced $1.0\;g/{\ell}$. The results showed the increase of cell mass up to 53% than those produced in CMC medium.
Experiments were carried out to find out the optimal condition of SCP produced by Cellulomonas sp. KL-6 and to evaluate nutritional value for the protein of this organism Intracellular- and extracellular proteins produced by this strain were estimated to be nearly maximum, $266\;{\mu}g/m{\ell}\;and\;37\;{\mu}g/m{\ell}$, in the medium containing 0.001% of thiamin after 5 days cultivation. When used rice straw as carbon source for the cell growth of this organism after crusing them by cutting mill, and treating them with 1.0% of NaOH and 10.0% of $NH_4OH\;at\;80^{\circ}C$ for 30 minutes and neutralizing continuatively them with 85% of $H_3PO_4$, SCP production rates were very increased to $1.63\;g/{\ell}$ (NaOH) and $1.47\;g/{\ell}$ (NH4OH), respectively than $0.5\;g/{\ell}$ produced in untreated rice straw. We compared their amino acids patterns with that of FAO provisional patterns. Amino acids content of strain KL-6 was excellents. However. when intended these cell mass to use in practical animal feeding test it would be advisable that destruction or lysis of cell wall should be done.
Park, Sung-Won;Her, Nam-Yun;Kim, Dong-Seob;Park, Sun-Jin;Lee, Han-Seung;Park, Hak-Jong;Yu, Ju-Hyun
Preventive Nutrition and Food Science
/
v.2
no.2
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pp.174-179
/
1997
CMCase produced by recombinant E. coli JM109 (pCEH#4) containing CMCase gene from Cellulomonas sp. YE-5 was purified to 24.3 fold and 2.6% yield by ammoniumsulfate precipitation, DEAE-cellulose column chromatography and gel filtration on Sephadex G-100. The optimum pH and temperature for CMCase activity were pH 7.0 and 5$0^{\circ}C$. The enzyme was stable between pH 5.0 and 10.0, and up to 6$0^{\circ}C$. The molecular weight of he enzyme was estimated to be approximately 40,000 daltons by SDS-PAGE. Analysis of the amino acid composition showed that the enzyme contained many glycines and acidic amino acids. The enzyme was an endo-type CMCase and the final enzyme reaction product from hydrolysis of Cm-cellulose by the enzyme was cellobiose. {TEX}$K_{M}${/TEX} value determined with CM-cellulose was 1.28mM.
Cellobiose dehydrogenases (CDHs) are a group of enzymes belonging to the hemoflavoenzyme group, which are mostly found in fungi. They play an important role in the production of acid sugar. In this research, CDH annotated from the actinobacterium Cellulomonas palmilytica EW123 (CpCDH) was cloned and characterized. The CpCDH exhibited a domain architecture resembling class-I CDH found in Basidiomycota. The cytochrome c and flavin-containing dehydrogenase domains in CpCDH showed an extra-long evolutionary distance compared to fungal CDH. The amino acid sequence of CpCDH revealed conservative catalytic amino acids and a distinct flavin adenine dinucleotide region specific to CDH, setting it apart from closely related sequences. The physicochemical properties of CpCDH displayed optimal pH conditions similar to those of CDHs but differed in terms of optimal temperature. The CpCDH displayed excellent enzymatic activity at low temperatures (below 30℃), unlike other CDHs. Moreover, CpCDH showed the highest substrate specificity for disaccharides such as cellobiose and lactose, which contain a glucose molecule at the non-reducing end. The catalytic efficiency of CpCDH for cellobiose and lactose were 2.05 × 105 and 9.06 × 104 (M-1 s-1), respectively. The result from the Fourier-transform infrared spectroscopy (FT-IR) spectra confirmed the presence of cellobionic and lactobionic acids as the oxidative products of CpCDH. This study establishes CpCDH as a novel and attractive bacterial CDH, representing the first report of its kind in the Cellulomonas genus.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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