Lipofuscins are oxidized lipid and protein complexes that accumulate during cellular senescence and tissue aging, regarded as markers for cellular oxidative damage, tissue aging, and certain aging-associated diseases. Therefore, understanding their cellular biological properties is crucial for effective treatment development. Through traditional microscopy, lipofuscins are readily observed as fluorescent granules thought to accumulate in lysosomes. However, lipofuscin granule formation and accumulation in senescent cells are poorly understood. Thus, this study examined lipofuscin accumulation in human fibroblasts exposed to various stressors. Our results substantiate that in glucose-starved or replicative senescence cells, where elevated oxidative stress levels activate autophagy, lipofuscins predominately appear as granules that co-localize with autolysosomes due to lysosomal acidity or impairment. Meanwhile, autophagosome formation is attenuated in cells experiencing oxidative stress induced by a doxorubicin pulse and chase, and lipofuscin fluorescence granules seldom manifest in the cytoplasm. As Torin-1 treatment activates autophagy, granular lipofuscins intensify and dominate, indicating that autophagy activation triggers their accumulation. Our results suggest that high oxidative stress activates autophagy but fails in lipofuscin removal, leaving an abundance of lipofuscin-filled impaired autolysosomes, referred to as residual bodies. Therefore, future endeavors in treating lipofuscin pathology-associated diseases and dysfunctions through autophagy activation demand meticulous consideration.
Dihydroartemisinin (DHA) has been reported to possess anti-cancer activity against many cancers. However, the pharmacologic effect of DHA on HBV-positive hepatocellular carcinoma (HCC) remains unknown. Thus, the objective of the present study was to determine whether DHA could inhibit the proliferation of HepG2.2.15 cells and uncover the underlying mechanisms involved in the effect of DHA on HepG2.2.15 cells. We found that DHA effectively inhibited HepG2.2.15 HCC cell proliferation both in vivo and in vitro. DHA also reduced the migration and tumorigenicity capacity of HepG2.2.15 cells. Regarding the underlying mechanisms, results showed that DHA induced cellular senescence by up-regulating expression levels of proteins such as p-ATM, p-ATR, ${\gamma}-H_2AX$, P53, and P21 involved in DNA damage response. DHA also induced autophagy (green LC3 puncta gathered together and LC3II/LC3I ratio increased through AKT-mTOR pathway suppression). Results also revealed that DHA-induced autophagy was not linked to senescence or cell death. TPP1 (telomere shelterin) overexpression could not rescue DHA-induced anticancer activity (cell proliferation). Moreover, DHA down-regulated TPP1 expression. Gene knockdown of TPP1 caused similar phenotypes and mechanisms as DHA induced phenotypes and mechanisms in HepG2.2.15 cells. These results demonstrate that DHA might inhibit HepG2.2.15 cells proliferation through inducing cellular senescence and autophagy.
Kim, Jin Hwa;Oh, Jung Young;Bae, Jun Tae;Lee, Geun Soo;Pyo, Hyeong Bae
Journal of the Society of Cosmetic Scientists of Korea
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v.43
no.3
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pp.239-245
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2017
Aging is a physiological and irreversible, progressive process involving changes in the ability to maintain cellular functionality. It affects tissues, organs and the whole organism and thus finally cause to death. Oxidative stress has been postulated to contribute significantly to the accelerated accumulation of advanced glycation endproducts (AGEs) in collagen, which is implicated in the process of skin aging. In the present study, glycation inhibitory activity of methoxy PEG-45 thioctate (LA-PEG), and its inhibitory effect of cellular oxidation and senescence was investigated. Treatment of LA-PEG significantly showed lower fluorescent intensity induced by AGEs. In addition, LA-PEG was significantly reduced the formation of ROS induced by AGEs. High antioxidant and anti-glycation activities of LA-PEG in glycated collagen model indicated its contribution to anti-aging process. Cellular senescence leads to an increase in senescence-associated ${\beta}$-galactosidase ($SA-{\beta}-gal$) activity, which can be used as a biomarker to identify senescent cells. Treatment with LA-PEG showed a dose-dependent, statistically significant decreased in $SA-{\beta}-gal$ indicating reduced senescence. These results suggest that LA-PEG may have potent anti-aging effects and can be used as new functional materials against cellular accumulation of AGEs.
Objective : Endothelial colony-forming cells (ECFCs) have been reported to play an important role in the pathogenesis of moyamoya disease (MMD). We have previously observed stagnant growth in MMD ECFCs with functional impairment of tubule formation. We aimed to verify the key regulators and related signaling pathways involved in the functional defects of MMD ECFCs. Methods : ECFCs were cultured from peripheral blood mononuclear cells of healthy volunteers (normal) and MMD patients. Low-density lipoproteins uptake, flow cytometry, high content screening, senescence-associated β-galactosidase, immunofluorescence, cell cycle, tubule formation, microarray, real-time quantitative polymerase chain reaction, small interfering RNA transfection, and western blot analyses were performed. Results : The acquisition of cells that can be cultured for a long time with the characteristics of late ECFCs was significantly lower in the MMD patients than the normal. Importantly, the MMD ECFCs showed decreased cellular proliferation with G1 cell cycle arrest and cellular senescence compared to the normal ECFCs. A pathway enrichment analysis demonstrated that the cell cycle pathway was the major enriched pathway, which is consistent with the results of the functional analysis of ECFCs. Among the genes associated with the cell cycle, cyclin-dependent kinase inhibitor 2A (CDKN2A) showed the highest expression in MMD ECFCs. Knockdown of CDKN2A in MMD ECFCs enhanced proliferation by reducing G1 cell cycle arrest and inhibiting senescence through the regulation of CDK4 and phospho retinoblastoma protein. Conclusion : Our study suggests that CDKN2A plays an important role in the growth retardation of MMD ECFCs by inducing cell cycle arrest and senescence.
Lee, Hyeon Ju;Jung, Yu-Jin;Lee, Seungkoo;Kim, Jong-Il;Han, Jeong A.
Molecules and Cells
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v.43
no.4
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pp.397-407
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2020
DNAJB9 is known to be a member of the molecular chaperone gene family, whose cellular function has not yet been fully characterized. Here, we investigated the cellular function of DNAJB9 under strong mitogenic signals. We found that DNAJB9 inhibits p53-dependent oncogene-induced senescence (OIS) and induces neoplastic transformation under oncogenic RAS activation in mouse primary fibroblasts. In addition, we observed that DNAJB9 interacts physically with p53 under oncogenic RAS activation and that the p53-interacting region of DNAJB9 is critical for the inhibition of p53-dependent OIS and induction of neoplastic transformation by DNAJB9. These results suggest that DNAJB9 induces cell transformation under strong mitogenic signals, which is attributable to the inhibition of p53-dependent OIS by physical interactions with p53. This study might contribute to our understanding of the cellular function of DNAJB9 and the molecular basis of cell transformation.
Background: Although microbial infection is direct cause of periodontal disease, various environmental factors influence the disease severity. Aging is considered a risk factor for oral diseases, with the prevalence of periodontal diseases increasing with age. Moreover, senescence-associated secretory phenotype (SASP) expressed in age-related diseases is a key marker of chronic inflammation and aging phenotypes. Therefore, this study aimed to understand the relevance of senescent cells to periodontal health and disease, investigate the possibility of regulating the expression of aging- and osteolysis-related factors in gingival fibroblasts, and investigate the effect of senescence induction in gingival fibroblasts on osteoclast differentiation in mouse bone marrow-derived macrophages (BMMs). Methods: After stimulation with 400 nM hydrogen peroxidase, human gingival fibroblasts (HGFs) were examined for senescence-associated β-galactosidase. Western blot and enzyme-linked immunosorbent assays were performed to assess the expression of SASP. Osteoclast formation was assessed in BMMs using a conditioned medium (CM) from hydrogen peroxide-stimulated HGFs. Osteoclastic differentiation was investigated using tartrate-resistant acid phosphatase (TRAP) staining and activity. Data analysis was performed using SPSS version 25.0. Results: The expression of senescence-related molecules, including p53, p16, and p21, and the expression of osteolytic factors, including IL-6, IL-8, and IL-17, were found to be significantly higher in the hydrogen peroxide-stimulated HGF than in the control group. Regarding the indirect effects of senescent gingival cells, the number of osteoclasts and TRAP activity increased according to the differentiation of BMM cultured in CM. Conclusion: Our results on the of between osteolytic factors and cellular senescence in gingival fibroblast cells helped to reveal evidence of pathological aging mechanisms. Furthermore, our results suggest that the development of novel therapies that target specific SASP factors could be an effective treatment strategy for periodontal disease.
Lim, Chae Jin;Lee, Yong-Moon;Kang, Seung Goo;Lim, Hyung W.;Shin, Kyong-Oh;Jeong, Se Kyoo;Huh, Yang Hoon;Choi, Suin;Kor, Myungho;Seo, Ho Seong;Park, Byeong Deog;Park, Keedon;Ahn, Jeong Keun;Uchida, Yoshikazu;Park, Kyungho
Biomolecules & Therapeutics
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v.25
no.5
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pp.511-518
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2017
Ultraviolet (UV) irradiation is a relevant environment factor to induce cellular senescence and photoaging. Both autophagy- and silent information regulator T1 (SIRT1)-dependent pathways are critical cellular processes of not only maintaining normal cellular functions, but also protecting cellular senescence in skin exposed to UV irradiation. In the present studies, we investigated whether modulation of autophagy induction using a novel synthetic SIRT1 activator, heptasodium hexacarboxymethyl dipeptide-12 (named as Aquatide), suppresses the UVB irradiation-induced skin aging. Treatment with Aquatide directly activates SIRT1 and stimulates autophagy induction in cultured human dermal fibroblasts. Next, we found that Aquatide-mediated activation of SIRT1 increases autophagy induction via deacetylation of forkhead box class O (FOXO) 1. Finally, UVB irradiation-induced cellular senescence measured by $SA-{\beta}-gal$ staining was significantly decreased in cells treated with Aquatide in parallel to occurring SIRT1 activation-dependent autophagy. Together, Aquatide modulates autophagy through SIRT1 activation, contributing to suppression of skin aging caused by UV irradiation.
Explanted mammalian cells perform a limited number of cell division in vitro and than are arrested in a state known as replicative senescence. Such cells are irreversibly blocked, mostly in the G1 phase of cell cycle, and are no longer sensitive to growth factor stimulation. Thus replicative senescence is defined as a permanent and irreversible loss of replicative potential of cells. For this characteristic, replicative senescence seems to evolve to protect mammalian organism from cancer. However, senescence also contributes to aging. It seems to decrease with age of the cell donor and, as a form of cell senescence, is thought to underlie the aging process. Extensive evidence supports the idea that progressive telomere loss contributes to the phenomenon of cell senescence. Telomeres are repetitive structures of the sequence (TTAGGG)n at the ends of linear chromosomes. It has been shown that the average length of telomere repeats in human somatic cells decreases by 30∼200 bp with each cell division. It is generally believed that when telomeres reach a critical length, a signal is activated to initiate the senescent program. This has given rise to the hypothesis that telomeres act as mitotic clocks to regulate lifespan. One proposes that cumulative oxidative stress, mainly reactive oxygen species generated from mitochondria, may mainly cause telomere shortening, accelerating aging. Here, the biological importance and mechanism of replicative senescence were briefly reviewed. Also it was summarized that how oxidative stress affects replicative senescence and telomere shortening.
Normal somatic cells proliferate for a limited number of doublings in culture and then enter an irreversible growth-arrest state called replicative senescence. Replicative senescence has been believed a reason for the limited cellular turnover and deterioration of tissue function in aged animals. However, there is no experimental evidence supporting this assumption. Furthermore, cells from aged person have been poorly characterized with an exception of the cases of T cells. In this study, we examined cell biological changes occurring in replicative senescence of fibroblast strains originated from a new-born (NHF-NB) and a 87 year old man (NHF-87). NHF-87 (and the cells from a 75-year old) proliferated to smaller population doublings and with longer doubling times than NHF-NB did. At early passages, NHF-87 exhibited a low senescence-associated ${\beta}-Gal$ (SA ${\beta}-Gal$) activity and lipofuscin level, typical markers for cellular senescence. Furthermore, they maintained low levels of lysosome and reactive oxygen species (ROS). All of these levels increased dramatically in the late passage NHF-87 quite similarly as those in the late passaged NHF-NB did. These results indicate that most cells originated from the aged maintain a phenotype of the cells originated from new-born donors and undergo replicative senescence with the same kinetics as that of the cells from new-born. It is also indicated that not SA ${\beta}-gal$ activity but cell proliferation rate may be qualified as a biomarker for cells aged in vivo.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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