Organ growth is fundamental to animal development. One of major mechanisms for growth control is mediated by the conserved Hippo signaling pathway initially identified in Drosophila. The core of this pathway in Drosophila consists of a cascade of protein kinases Hippo and Warts that negatively regulate transcriptional coactivator Yorkie (Yki). Activation of Yki promotes cell survival and proliferation to induce organ growth. A key issue in Hippo signaling is to understand how core kinase cascade is activated. Activation of Hippo kinase cascade is regulated in the upstream by at least two transmembrane proteins Crumbs and Fat that act in parallel. These membrane proteins interact with additional factors such as FERM-domain proteins Expanded and Merlin to modulate subcellular localization and function of the Hippo kinase cascade. Hippo signaling is also influenced by cytoskeletal networks and cell tension in epithelia of developing organs. These upstream events in the regulation of Hippo signaling are only partially understood. This review focuses on our current understanding of some upstream processes involved in Hippo signaling in developing Drosophila organs.
In this study, we investigated the ability of luteolin, a plant derived flavonoid on hepatocarcinoma cell growth using HepG2 cell culture system. We found that luteolin increased the Smac/DIABLO releases, a mitochondrial protein that potentiates apoptosis. Luteolin also induced either transcriptional activity or expression of PPAR-gamma, a target of cancer growth that PPAR-gamma agonist sensitizes to apoptosis in certain cancer types. To find the possible upstream target molecules of PPAR-gamma activated by luteolin treatment, we used compound C, a specific inhibitor of AMP-activated protein kinase. Pre-treatment of Compound C significantly restored the activation or expression of PPAR-gamma stimulated by luteolin. This result indicated that AMPK signaling might be involved in the activation or expression of PPAR-gamma signaling pathway stimulated by luteolin. Moreover, we also found that luteolin inhibited the insulin-stimulated Akt phosphorylation as well as AICAR, a specific AMPK activator. These results propose that luteolin significantly induces cancer cell death through modulating survival signal pathways such as PPAR-gamma and Akt. AMPK signaling pathway may be an upstream regulator for survival signal pathways such as PPAR-gamma and Akt stimulated by luteolin.
Proceedings of the Plant Resources Society of Korea Conference
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2019.04a
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pp.33-33
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2019
The AKT signaling pathway is a highly regulated cell signaling system that forms a network with other cell signaling pathways. Hence, the AKT signaling pathway mediates several important cellular functions that include cell survival, proliferation, cell migration, and et cetera. Irregularities that led overactive AKT signaling have been linked to many diseases such as cancer and metabolic-associated diseases. Hence, modulating the overactive AKT signaling pathway via inhibitor is a tantalizing prospect for treatment of cancer and metabolic-associated diseases. Two inhibitors of the AKT signaling pathway will be presented in this symposium: 1) Bisleuconothine A (BisA), a bisindole alkaloid that inhibit autophagy and 2) Ceramicine B (CerB), a limonoid that inhibit adipogenesis. The first topic is on a bisindole alkaloid, BisA and its mechanism in inducing autophagosome formation in lung cancer cell line, A549.(1) Since most autophagy inducing agents generally induce apoptosis, we found that BisA does not induce apoptosis even in high dose. BisA up-regulation of LC3 lipidation is achieved through mTOR inactivation. The phosphorylation of PRAS40, a mTOR repressor was suppressed by BisA. This observation suggested that BisA inactivates mTOR via suppression of PRAS40 phosphorylation. Interestingly, the phosphorylation of AKT, an upstream regulator of PRAS40 phosphorylation was also down-regulated by BisA. These findings suggested that Bis-A induces autophagosomes formation by interfering with the AKT-mTOR signaling pathway. The second topic is on CerB and its mechanism in inhibiting adipogenesis in preadipocytes cell line, MC3T3-G2/PA6.(2,3) CerB inhibits the phosphorylation of protein kinase B (AKT) at the Thr308 position but not the Ser473. Consequently, the phosphorylation of FOXO3 which is located downstream of AKT is also inhibited. Considering that FOXO3 is an important regulator of PPARγ which is a key factor in adipogenesis, CerB may inhibit adipogenesis via the AKT-FOXO3 signaling pathway. Taken together, both BisA and CerB highlighted the potential of AKT signaling pathway modulation as an approach to induce autophagy and inhibit the formation of fat cells, respectively.
This review explored the mechanism of breast carcinoma progression by focusing on integrins and receptor tyrosine kinases (or growth factor receptors). While the primary role of integrins was previously thought to be solely as mediators of adhesive interactions between cells and extracellular matrices, it is now believed that integrins also regulate signaling pathways that control cancer cell growth, survival, and invasion. A large body of evidence suggests that the cooperation between integrin and receptor tyrosine kinase signaling regulates certain signaling functions that are important for cancer progression. Recent developments on the crosstalk between integrins and receptor tyrosine kinases, and its implication in mammary tumor progression, are discussed.
The epothilones are a class of microtubule inhibitors that exhibit a strong antitumor activity. UTD2 is a novel epothilone analog generated by genetic manipulation of the polyketide biosynthetic gene cluster. This study investigated the effects of UTD2 on the actin cytoskeleton and its critical regulators, and the signaling pathways which are essential for cell motility, growth and survival in MCF-7 breast cancer cells. Results showed that UTD2 inhibited the cellular functions of actin cytoskeleton, such as wound-closure, migration and invasion, as well as adhesion. Our study further demonstrated that UTD2 suppressed Rac1 GTPase activation and reduced the activity of PAK1, which is a downstream effector of Rac1, while the activity of Cdc42 was not affected. Additionally, the phosphorylation of p38 and ERK were significantly inhibited, but the phosphorylation of JNK remained the same after UTD2 treatment. Moreover, UTD2 inhibited the activity and mRNA expression of MMP-2, which plays a key role in cell motility. UTD2 also reduced the phosphorylation of Akt, which is an important signaling kinase regulating the cell survival through Rac1. Furthermore, UTD2 interrupted the synergy between Rac1 and Raf in focus formation assays. Taken together, these results indicated that UTD2 exerted multiple effects on the actin cytoskeleton and signaling pathways associated with Rac1. This study provided novel insights into the molecular mechanism of the antineoplastic and antimetastatic activities of epothilones. Our findings also suggest that the signaling pathways regulated by Rac1 may be evaluated as biomarkers for the response to therapy in clinical trials of epothilones.
Human breast cancer cell line, MDA-MB-231, is highly invasive and aggressive, compared to less invasive cell line, MCF-7. To explore the genes that might influence the malignancy of MDA-MB-231, DNA microarray analysis was performed. The results showed that G0/G1 switch 2 (G0S2) was one of the most highly expressed genes among the genes upregulated in MDA-MB-231. Although G0S2 acts as a direct inhibitor of adipose triglyceride lipase, action of G0S2 in cancer progression is not yet understood. To investigate whether G0S2 affects invasiveness of MDA-MB-231 cells, G0S2 expression was inhibited using siRNA, which led to decreased cell proliferation, migration, and invasion of MDA-MB-231 cells. Consequently, G0S2 inhibition inactivated integrin-regulated FAK-Src signaling, which promoted Hippo signaling and inactivated ERK1/2 signaling. In addition, G0S2 downregulation decreased ${\beta}$-catenin expression, while E-cadherin expression was increased. It was demonstrated for the first time that G0S2 mediates the Hippo pathway and induces epithelial to mesenchymal transition (EMT). Taken together, our results suggest that G0S2 is a major factor contributing to cell survival and metastasis of MDA-MB-231 cells.
In various organisms, the Hippo signaling pathway has been identified as a master regulator of organ size determination and tissue homeostasis. The Hippo signaling coordinates embryonic development, tissue regeneration and differentiation, through regulating cell proliferation and survival. The YAP and TAZ (YAP/TAZ) act as core transducers of the Hippo pathway, and they are tightly and exquisitely regulated in response to various intrinsic and extrinsic stimuli. Abnormal regulation or genetic variation of the Hippo pathway causes a wide range of human diseases, including cancer. Recent studies have revealed that Hippo signaling plays a pivotal role in the immune system and cancer immunity. Due to pathophysiological importance, the emerging role of Hippo signaling in blood cell differentiation, known as hematopoiesis, is receiving much attention. A number of elegant studies using a genetically engineered mouse (GEM) model have shed light on the mechanistic and physiological insights into the Hippo pathway in the regulation of hematopoiesis. Here, we briefly review the function of Hippo signaling in the regulation of hematopoiesis and immune cell differentiation.
We are exposed to numerous xenobiotic electrophiles on a daily basis through the environment, lifestyle, and dietary habits. Although such reactive species have been associated with detrimental effects, recent accumulated evidence indicates that xenobiotic electrophiles appear to act as signaling molecules. In this review, we introduce our findings on 1) activation of various redox signaling pathways involved in cell proliferation, detoxification/excretion of electrophiles, quality control of cellular proteins, and cell survival during exposure to xenobiotic electrophiles at low concentrations through covalent modification of thiol groups in sensor proteins, and 2) negative regulation of reactive sulfur species (RSS) in the modulation of redox signaling and toxicity caused by xenobiotic electrophiles.
Stem cells can be applied usefully in basic research and clinical field due to their differentiation and self-renewal capacity. The aim of this study was to establish an effective novel therapeutic cellular source and create its molecular expression profile map to elucidate the possible therapeutic mechanism and signaling pathway. We successfully obtained a mesenchymal stem cell population from human embryonic stem cells (hESCs) cultured on chemically defined feeder-free conditions and treated with connective tissue growth factor (CTGF) and performed the expressive proteomic approach to elucidate the molecular basis. We further selected 12 differentially expressed proteins in CTGF-induced hESC-derived mesenchymal stem cells (C-hESC-MSCs), which were found to be involved in the metabolic process, immune response, cell signaling, and cell proliferation, as compared to bone marrow derived-MSCs(BM-MSCs). Moreover, these up-regulated proteins were potentially related to the Wnt/β-catenin pathway. These results suggest that C-hESC-MSCs are a highly proliferative cell population, which can interact with the Wnt/β-catenin signaling pathway; thus, due to the upregulated cell survival ability or downregulated apoptosis effects of C-hESC-MSCs, these can be used as an unlimited cellular source in the cell therapy field for a higher therapeutic potential. Overall, the study provided valuable insights into the molecular functioning of hESC derivatives as a valuable cellular source.
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