The fungal cell wall and membrane are the principal targets of antifungals. Herein, we report that myricetin exerts antifungal activity against Candida albicans by damaging the cell wall integrity and notably enhancing the membrane permeability. In the presence of sorbitol, an osmotic protectant, the minimum inhibitory concentration (MIC) of myricetin against C. albicans increased from 20 to 40 and 80 ㎍/ml in 24 and 72 h, respectively, demonstrating that myricetin disturbs the cell wall integrity of C. albicans. Fluorescence microscopic images showed the presence of propidium iodide-stained C. albicans cells, indicating the myricetin-induced initial damage of the cell membrane. The effects of myricetin on the membrane permeability of C. albicans cells were assessed using crystal violet-uptake and intracellular material-leakage assays. The percentage uptakes of crystal violet for myricetin-treated C. albicans cells at 1×, 2×, and 4× the MIC of myricetin were 36.5, 60.6, and 79.4%, respectively, while those for DMSO-treated C. albicans cells were 28.2, 28.9, and 29.7%, respectively. Additionally, myricetin-treated C. albicans cells showed notable DNA and protein leakage, compared with the DMSO-treated controls. Furthermore, treatment of C. albicans cells with 1× the MIC of myricetin showed a 17.2 and 28.0% reduction in the binding of the lipophilic probes diphenylhexatriene and Nile red, respectively, indicating that myricetin alters the lipid components or order in the C. albicans cell membrane, leading to increased membrane permeability. Therefore, these data will provide insights into the pharmacological worth of myricetin as a prospective antifungal for treating C. albicans infections.
Metal-based drugs, such as 1,10-phenanthroline, have demonstrated anticancer, antifungal and antiplasmodium activities. One of the 1,10-phenanthroline derivatives compounds (1)-N-2-methoxybenzyl-1,10-phenanthrolinium bromide (FEN), which has been demonstrated an inhibitory effect on the growth of Candida spp. This study aimed to explore the in vitro antifungal activity of FEN and its effect on the membrane integrity of Candida albicans. The minimum inhibitory concentration (MIC) and the minimum fungicidal concentration (MFC) of FEN against planktonic C. albicans cells were determined using the broth microdilution method according to the Clinical and Laboratory Standards Institute guidelines. Cell membrane integrity was determined with the propidium iodide assay using a flow cytometer and were visualized using scanning electron microscopy (SEM). Planktonic cells growth of C. albicans were inhibited by FEN, with an MIC of $0.39-1.56{\mu}g/mL$ and a MFC that ranged from 3.125 to $100{\mu}g/mL$. When C. albicans was exposed to FEN, the uptake of propidium iodide was increased, which indicated that membrane disruption is the probable mode of action of this compound. There was cells surface changes of C. albicans when observed under SEM.
In this study, we demonstrate that equol has fungicidal activities against Candida albicans. The minimum inhibitory and minimum fungicidal concentrations of equol against C. albicans were 516 and $1,032{\mu}M$, respectively. Two separate viability assays found that equol changed the integrity of the C. albicans cell membrane, possibly by formation of membrane lesions. Scanning electron microscopy demonstrated ultrastructural changes.
Park, Mi-Young;Kim, Min Young;Seo, Young Rok;Kim, Jong-Sang;Sung, Mi-Kyung
Journal of Cancer Prevention
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제21권2호
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pp.95-103
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2016
Background: Excess energy supply induces chronic low-grade inflammation in association with oxidative stress in various tissues including intestinal epithelium. The objective of this study was to investigate the effect of high-fat diet (HFD) on intestinal cell membrane integrity and intestinal tumorigenesis in $Apc^{Min/+}$ mice. Methods: Mice were fed with either normal diet (ND) or HFD for 12 weeks. The number of intestinal tumors were counted and biomarkers of endotoxemia, oxidative stress, and inflammation were determined. Changes in intestinal integrity was measured by fluorescein isothiocyanate (FITC)-dextran penetration and membrane gap junction protein expression. Results: HFD group had significantly higher number of tumors compared to ND group (P < 0.05). Blood total antioxidant capacity was lower in HFD group, while colonic 8-hydroxy-2'-deoxyguanosine level, a marker of oxidative damage, was higher in HFD group compared to that of ND group (P < 0.05). The penetration of FITC-dextran was substantially increased in HFD group (P < 0.05) while the expressions of membrane gap junction proteins including zonula occludens-1, claudin-1, and occludin were lower in HFD group (P < 0.05) compared to those in ND group. Serum concentration of lipopolysaccharide (LPS) receptor (CD14) and colonic toll-like receptor 4 (a LPS receptor) mRNA expression were significantly higher in HFD group than in ND group (P < 0.05), suggesting that significant endotoxemia may occur in HFD group due to the increased membrane permeability. Serum interleukin-6 concentration and myeloperoxidase activity were also higher in HFD group compared to those of ND group (P < 0.05). Conclusions: HFD increases oxidative stress disrupting intestinal gap junction proteins, thereby accelerating membrane permeability endotoxemia, inflammation, and intestinal tumorigenesis.
Che, Jinxin;Chen, Xiumei;Ouyang, Qiuli;Tao, Nengguo
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제30권6호
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pp.878-884
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2020
Penicillium digitatum and P. italicum are the two important postharvest pathogens in citrus, causing about 90% of the total loss of citrus fruit during storage and transportation. Natural fungicides such as essential oils have been widely used instead of chemical fungicides for preventing and controlling postharvest diseases. In this research, p-anisaldehyde exhibited a strong inhibitory effect on P. digitatum and P. italicum, with the minimum inhibitory concentration and minimum fungicidal concentration values of both being 2.00 μl/ml. Additionally, p-anisaldehyde visibly inhibited both the green mold and blue mold development of citrus fruits inoculated with P. digitatum and P. italicum. The mycelia morphologies of these pathogens were greatly altered, and the membrane permeability and cell wall integrity of mycelia were severely disrupted under p-anisaldehyde treatment. These results suggest that the antifungal activity of p-anisaldehyde against P. digitatum and P. italicum can be attributed to the disruption of the cell wall integrity.
Kim, Yun-Jung;Lee, Sang-Hee;Jung, Soo-Jung;Park, Choon-Keun
Journal of Magnetics
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제19권3호
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pp.241-247
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2014
The objective of this study was to study the effect of magnetized water on porcine cumulus cell-oocyte complexes (COCs). Oocytes obtained from female pig were cultured in a medium magnetized at 0, 2000, 4000, and 6000 Gauss (G) for 5 minutes using the neodymium magnet. Subsequently, intracellular hydrogen peroxide ($H_2O_2$) concentration, glutathione (GSH) activity, oocyte membrane integrity, anti-apoptosis factor Bcl-xL expression, and nuclear maturation were analyzed. The intracellular $H_2O_2$ levels in COCs cultured for 44 hours were not significantly different among the variously magnetized samples. However, GSH activity were significantly higher in the magnetized samples compared to the 0 G sample. The Bcl-xL mRNA expression in COCs cultured for 44 hours was higher in the 4000 G sample than other treatment groups. Membrane damage in COCs cultured for 22 and 44 hours was significantly lower in 4000 G group than control group. On the other hand, nuclear stages as maturation indicator significantly increased in 2000, 4000, and 6000 G groups compared to 0 G group. These results indicate that incubation of porcine oocytes and cumulus cells in magnetized medium improves intracellular GSH levels, membrane integrity and nuclear maturation, and inhibits apoptosis in vitro.
The present work describes experiments undertaken to evaluate the usefulness of selected physicochemical indices of semen, cell membrane integrity and sperm chromatin structure for the assessment of boar semen sensitivity to processes connected with pre-insemination procedures. The experiments were carried out on 30 boars: including 15 regarded as providers of sensitive semen and 15 regarded as providers of semen that is little sensitive to laboratory processing. The selection of boars for both groups was based on sperm morphology analyses, assuming secondary morphological change incidence in spermatozoa as the criterion. Two ejaculates were manually collected from each boar at an interval of 3 to 4 months. The following analyses were carried out for each ejaculate: sperm motility assessment, sperm pH measurement, sperm morphology assessment, sperm chromatin structure evaluation and cell membrane integrity assessment. The analyses were performed three times. Semen storage did not cause an increase in the incidence of secondary morphological changes in the group of boars considered to provide sperm of low sensitivity. On the other hand, with continued storage there was a marked increase in the incidence of spermatozoa with secondary morphological changes in the group of boars regarded as producing more sensitive semen. Ejaculates of group I boars evaluated directly after collection had an approximately 6% smaller share of spermatozoa with undamaged cell membranes than the ejaculates of boars in group II ($p{\leq}0.05$). In the process of time the percentage of spermatozoa with undamaged cell membranes decreased. The sperm of group I boars was characterised with a lower sperm motility than the semen of group II boars. After 1 hour of storing diluted semen, the sperm motility of boars producing highly sensitive semen was already 4% lower ($p{\leq}0.05$), and after 24 hours of storage it was 6.33% lower than that of the boars that produced semen with a low sensitivity. Factors that confirm the accuracy of insemination male selection can include a low rate of sperm motility decrease during the storage of diluted semen, low and contained incidence of secondary morphological changes in spermatozoa during semen storage and a high frequency of spermatozoa with undamaged cell membranes.
Fungal cell walls and cell membranes are the main targets of antifungals. In this study, we report on the antifungal activity of an ethanol extract from Paeonia lactiflora against Candida albicans, showing that the antifungal activity is associated with the synergistic actions of preventing cell wall synthesis, enabling membrane depolarization, and compromising permeability. First, it was shown that the ethanol extract from P. lactiflora was involved in damaging the integrity of cell walls in C. albicans. In isotonic media, cell bursts of C. albicans by the P. lactiflora ethanol extract could be restored, and the minimum inhibitory concentration (MIC) of the P. lactiflora ethanol extract against C. albicans cells increased 4-fold. In addition, synthesis of $(1,3)-{\beta}-{\small{D}}-glucan$ polymer was inhibited by 87% and 83% following treatment of C. albicans microsomes with the P. lactiflora ethanol extract at their $1{\times}MIC$ and $2{\times}MIC$, respectively. Second, the ethanol extract from P. lactiflora influenced the function of C. albicans cell membranes. C. albicans cells treated with the P. lactiflora ethanol extract formed red aggregates by staining with a membrane-impermeable dye, propidium iodide. Membrane depolarization manifested as increased fluorescence intensity by staining P. lactiflora-treated C. albicans cells with a membrane-potential marker, $DiBAC_4(3)$ ((bis-1,3-dibutylbarbituric acid) trimethine oxonol). Membrane permeability was assessed by crystal violet assay, and C. albicans cells treated with the P. lactiflora ethanol extract exhibited significant uptake of crystal violet in a concentration-dependent manner. The findings suggest that P. lactiflora ethanol extract is a viable and effective candidate for the development of new antifungal agents to treat Candida-associated diseases.
In an attempt to explore the effect of Ginseng on the permeability of the biological membrane to cations we have investigated the effect of Ginseng-alcohol extract on the transport of $Na^+$ human red blood cell preprations. The $Na^+$ influx was measured in intact red cells using $^{22}Na$ as a tracer and the efflux in reseated red cells using $^{24}Na$ as a tracer. 1. The influx of $Na^+$ was not apparently changed by the Ginseng-alcohol extract of 20mg% in the incubation medium. 2. Similarly, 20mg% Ginseng-alcohol extract in the cellular space did not alter the efflux of $Na^+$ from the cell. However, 50mg% of Ginseng-alcohol extract in the cell resulted in a significant increase in the $Na^+$ efflux and this effect was magnified when the cell was suspended in the medium containing the Ginseng-alcohol extract in a concentration of 20mg %. The results suggest that Ginseng-alcohol extract over 50mg% increase permeability of red blood cell membrane to $Na^+$ by altering the membrane integrity.
This study was undertaken to elucidate the underlying mechanisms of ATP depletion-induced membrane transport dysfunction and cell death in renal proximal tubular cells. ATP depletion was induced by incubating cells with 2.5 mM potassium cyanide(KCN)/0.1 mM iodoacetic acid(IAA), and membrane transport function and cell viability were evaluated by measuring $Na^+$-dependent phosphate uptake and trypan blue exclusion, respectively. ATP depletion resulted in a decrease in $Na^+$-dependent phosphate uptake and cell viability in a time-dependent manner. ATP depletion inhibited $Na^+$-dependent phosphate uptake in cells, when treated with 2 mM ouabain, a $Na^+$ pump-specific inhibitor, suggesting that ATP depletion impairs membrane transport functional integrity. Alterations in $Na^+$-dependent phosphate uptake and cell viability induced by ATP depletion were prevented by the hydrogen peroxide scavenger such as catalase and the hydroxyl radical scavengers(dimethylthiourea and thiourea), and amino acids(glycine and alanine). ATP depletion caused arachidonic acid release and increased mRNA levels of cytosolic phospholipase $A_2(cPLA_2)$. The ATP depletion-dependent arachidonic acid release was inhibited by $cPLA_2$ specific inhibitor $AACOCF_3$. ATP depletion-induced alterations in $Na^+$-dependent phosphate uptake and cell viability were prevented by $AACOCF_3$. Inhibition of $Na^+$-dependent phosphate uptake by ATP depletion was prevented by antipain and leupetin, serine/cysteine protease inhibitors, whereas ATP depletion-induced cell death was not altered by these agents. These results indicate that ATP depletion-induced alterations in membrane transport function and cell viability are due to reactive oxygen species generation and $cPLA_2$ activation in renal proximal tubular cells. In addition, the present data suggest that serine/cysteine proteases play an important role in membrane transport dysfunction, but not cell death, induced by ATP depletion.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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