The present study was attempted to investigate the effect of vasoactive intestinal polypeptide (VIP) on secretion of catecholamines (CA) and to establish whether there is the existence of a noncholinergic mechanism in adrenomedullary CA secretion from the isolated perfused rat adrenal gland. The perfusion into an adrenal vein of VIP $(3{\times}10^{-6}\;M)$ for 5 min or the injection of acetylcholine (ACh, $5.32{\times}10^{-3}\;M$) resulted in great increases in CA secretion. Tachyphylaxis to releasing effect of CA evoked by VIP was not observed by the repeated perfusion. The net increase in adrenal CA secretion evoked by VIP still remained unaffected in the presence of atropine or chlorisondamine. However, the CA release in response to ACh was greatly inhibited by the pretreatment with atropine or chlorisondamine. The releasing effects of CA evoked by either VIP or ACh were depressed by pretreatment with nicardipine, TMB-8, and the perfusion of $Ca^{2+}$-free medium. Moreover, VIP- as well as ACh-evoked CA secretory responses were markedly inhibited under the presence of $(Lys^1,\;Pro^{2.5},\;Arg^{3.4},\;Tyr^6)-VIP$ or naloxone. CA secretory responses induced by ACh and high $K^+\;(5.6{\times}10^{-2}\;M)$ were potentiated by infusion of VIP $(3{\times}10^{-6}M\;for\;5\;min)$. Taken together, these experimental results indicate that VIP causes CA release in a fashion of calcium ion -dependence, suggesting strongly that there exists a noncholinergic mechanism that may be involved in the regulation of adrenomedullary CA secretion through VIP receptors in the rat adrenal gland, and that VIP may be the noncholinergic excitatory secretagogue present in the chromaffin cells.
The present study was undertaken to examine the influence of glucocorticoids on the secretory responses of catecholamines (CA) evoked by acetylcholine (ACh), DMPP, McN-A-343, excess K^+$ and Bay-K-8644 from the isolated perfused rat adrenal gland and to clarify the mechanism of its action. The perfusion of the synthetic glucocorticoid dexamethasone (10-100\;{\mu}M$) into an adrenal vein for 20 min produced a dose-dependent inhibition in CA secretion evoked by ACh (5.32 mM), excess K^+$ (a membrane-depolarizor 56 mM), DMPP (a selective nicotinic receptor agonist, 100\;{\mu}M$ for 2 min), McN-A-343 (a muscarinic receptor agonist, 100\;{\mu}M$ for 4 min), Bay-K-8644 (a calcium channel activator, 10\;{\mu}M$ for 4 min) and cyclopiazonic acid (a releaser of intracellular $Ca^{2+}$, 10\;{\mu}M$ for 4 min). Similarly, the preperfusion of hydrocortisone (30\;{\mu}M$) for 20 min also attenuated significantly the secretory responses of CA evoked by nicotinic and muscarinic receptor stimulation as well as membrane-depolarization, $Ca^{2+}$ channel activation and the release of intracellular $Ca^{2+}$. Furthermore, even in the presence of betamethasone (30{\mu}M$), CA secretion evoked by ACh, excess K^+$, DMPP and McN-A-343 was also markedly inhibited. Taken together, the present results suggest that glucocorticoids cause the marked inhibition of CA secretion evoked by both cholinergic nicotinic and muscarinic receptor stimulation from the isolated perfused rat adrenal gland, indicating strongly that this inhibitory effect may be mediated by inhibiting influx of extracellular calcium as well as the release of intracellular calcium in the rat adrenomedullary chromaffin cells.
The aim of the present study was to investigate the effect of glibenclamide, a hypoglycemic sulfonylurea, which selectively blocks ATP-sensitive K$^+$ channels, on secretion of catecholamines (CA) evoked by cholinergic stimulation and membrane depolarization from the isolated perfused rat adrenal glands. The perfusion of glibenclamide (1.0 mM) into an adrenal vein for 90 min produced time-dependently enhanced the CA secretory responses evoked by ACh (5.32 mM), high K$^+$ (a direct membrane depolarizer, 56 mM), DMPP (a selective neuronal nicotinic receptor agonist, 100 ${\mu}$M for 2 min), McN-A-343 (a selective muscarinic M1 receptor agonist, 100 ${\mu}$M for 2 min), Bay-K-8644 (an activator of L-type dihydropyridine Ca$^{2+}$ channels, 10 ${\mu}$M for 4 min) and cyclopiazonic acid (an activator of cytoplasmic Ca$^{2+}$-ATPase, 10 ${\mu}$M for 4 min). In adrenal glands simultaneously preloaded with glibenclamide (1.0 mM) and nicorandil (a selective opener of ATP-sensitive K$^+$ channels, 1.0 mM), the CA secretory responses evoked by ACh, high potassium, DMPP, McN-A-343, Bay-K-8644 and cyclopiazonic acid were recovered to the considerable extent of the control release in comparison with that of glibenclamide-treatment only. Taken together, the present study demonstrates that glibenclamide enhances the adrenal CA secretion in response to stimulation of cholinergic (both nicotinic and muscarinic) receptors as well as by membrane depolarization from the isolated perfused rat adrenal glands. It seems that this facilitatory effect of glibenclamide may be mediated by enhancement of both Ca$^{2+}$ influx and the Ca$^{2+}$ release from intracellular store through the blockade of K$_{ATP}$ channels in the rat adrenomedullary chromaffin cells. These results suggest that glibenclamide-sensitive K$_{ATP}$ channels may play a regulatory role in the rat adrenomedullary CA secretion.
The present study was designed to clarify whether tacrine affects the release of catecholamines (CA) from the isolated perfused model of rat adrenal gland or not and to elucidate the mechanism of its action. Tacrine $(3{\times}10^{-5}{\sim}3{\times}10^{-4}\;M)$ perfused into an adrenal vein for 60 min inhibited CA secretory responses evoked by ACh $(5.32{\times}10^{-3}\;M),$ DMPP (a selective neuronal nicotinic agonist, $10^{-4}$ M for 2 min) and McN-A-343 (a selective muscarinic M1-agonist, $10^{-4}$ M for 2 min) in relatively dose- and time- dependent manners. However, tacrine failed to affect CA secretion by high $K^+\;(5.6{\times}10^{-2}\;M).$ Tacrine itself at concentrations used in the present experiments did not also affect spontaneous CA output. Furthermore, in the presence of tacrine $(10^{-4}\;M),$ CA secretory responses evoked by Bay-K-8644 (an activator of L-type $Ca^{2+}$ channels, $10^{-4}\;M),$ but not by cyclopiazonic acid (an inhibitor of cytoplasmic $Ca^{2+}-ATPase,\;10^{-4}\;M),$ was relatively time-dependently attenuated. Also, physostigmine $10^{-4}\;M),$ given into the adrenal gland for 60 min, depressed CA secretory responses evoked by ACh, McN-A-343 and DMPP while did not affect that evoked by high $K^+.$ Collectively, these results obtained from the present study demonstrate that tacrine greatly inhibits CA secretion from the perfused rat adrenal gland evoked by stimulation of cholinergic (both nicotinic and muscarinic) receptors, but does fail to affect that by direct membrane-depolarization. It is suggested that this inhibitory effect of tacrine may be exerted by blocking both the calcium influx into the rat adrenal medullary chromaffin cells without $Ca^{2+}$ release from the cytoplasmic calcium store, that is relevant to the cholinergic blockade. Also, the mode of action between tacrine and physostigmine in rat adrenomedullary CA secretion seems to be similar.
The aim of the present study was to examine the effect of leptin on CA release from the isolated perfused model of the rat adrenal gland, and to establish its mechanism of action. Leptin $(1{\sim}100\;ng/ml)$, when perfused into an adrenal vein of the rat adrenal gland for 60 min, enhanced a dose-dependently the secretory responses of CA evoked by ACh $(5.32{\times}10^{-3}\;M)$, DMPP $(10^{-4}\;M)$ and McN-A-343 $(10^{-4}\;M)$, although it alone has weak effect on CA secretion. However, it did not affect the CA secretion evoked by excess $K^+\;(5.6{\times}10^{-2}\;M)$. Leptin alone produced a weak secretory response of the CA. Moreover, leptin (10 ng/ml) in to an adrenal vein for 60 min also augmented the CA release evoked by BAY-K-8644, an activator of the dihydropyridine L-type $Ca^{2+}$ channels, and cyclopiazonic acid, an inhibitor of cytoplasmic $Ca^{2+}$ ATPase. However, in the presence of U0126 $(1\;{\mu}M)$, an inhibitor of mitogen-activated protein kinase (MAPK), leptin no longer enhanced the CA secretion evoked by ACh and DMPP. Furthermore, in the presence of anti-leptin (10 ng/ml), an antagonist of Ob receptor, leptin (10 ng/ml) also no longer potentiated the CA secretory responses evoked by DMPP and Bay-K-8644. Collectively, these experimental results suggest that leptin enhances the CA secretion from the rat adrenal medulla evoked by cholinergic stimulation (both nicotininc and muscarinic receptors), but does not that by membrane depolarization. It seems that this enhanced effect of leptin may be mediated by activation of U0126-sensitive MAPK through the leptin receptors, which is probably relevant to the activation of the dihydropyridine L-type $Ca^{2+}$ channels located on the rat adrenomedullary chromaffin cells.
한국응용약물학회 1998년도 Proceedings of UNESCO-internetwork Cooperative Regional Seminar and Workshop on Bioassay Guided Isolation of Bioactive Substances from Natural Products and Microbial Products
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pp.148-149
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1998
It has been known that potassium channel openers are a new class of molecules that have attracted general interest because of their potent antihypertensive activity in vivo and vasorelaxant activity in vitro (Hamilton and Weston, 1989). In the present study, it was attempted to examine the effect of the potassium channel opener on catecholamine (CA) secretion evoked by cholinergic stimulation, membrane depolarization and calcium mobilization from the isolated perfused rat adrenal gland. The perfusion of pinacidil (30-300 uM) into an adrenal vein for 20 min produced relatively dose-dependent inhibition in CA secretion evoked by ACh (5.32 mM), high $K^{+}$ (56 mM), DMPP (100 uM for 2 min), McN-A-343 (100 uM for 2 min), cyclopiazonic acid (10 uM for 4 min) and Bay-K-8644 (10 uM for 4 min). Also, under the presence of minoxidil (100 uM), which is also known to be a potassium channel activator, CA secretory responses evoked by ACh, high potassium, DMPP, McN-A-343, Bay-K-8644 and cyclopiazonic acid were also significantly depressed. However, in adrenal glands preloaded with pinacidil (100 uM) under the presence of glibenclamide (1 uM), an antidiabetic sulfonylurea that has been shown to be a specific blocker of ATP-regulated potassium channels (for 20 min), CA secretory responses evoked by ACh, high potassium, DMPP, McN-A-343, Bay-K-8644 and cyclopiazonic acid were considerably recovered to a considerable extent of the normal release as compared to that of pinacidil only. These results, taken together, suggest that pinacidil cause the marked inhibition of CA secretion evoked by stimulation of cholinergic (both nicotinic and muscarinic) receptors as well as by membrane depolarization, indicating strongly that this effect may be mediated by inhibiting influx of extracellular calcium and release in intracellular calcium in the rat adrenomedullary chromaffin cells. Furthermore, these findings suggest strongly that these potassium channel openers-sensitive membrane potassium channels also play an important role in regulating CA secretion.
The present study was attempted to investigate the effect of quinine on secretion of catecholamines (CA) etroked by cholinergic stimulation and membrane depolarization from the isolated perfused rat adrenal gland. The perfusion of quinine (15-150${\mu}$M) into an adrenal vein for 60 min produced dose- and time-dependent inhibition in CA secretion evoked by ACh ($5.32{\times}10^{-3}M$), high $K^{+}5.6{\times}10^{-2}M$, DMPP ($10^{-4}M$ for 2 min), McN-A-343 ($10^{-4}M$ for 2 min), cyclopiazonic acid ($10^{-5}$ for 4 min) and Bay-K-8644 ($10^{-5}$ M for 4 min). Also, under the presence of pinacidil ($10^{-4}$ M), which is also known to be a selective potassium channel activator, CA secretory responses evoked by ACh, high potassium, DMPP McN-A-343, Bay-K-8644 and cyclopiazonic acid were also greatly reduced. When preloaded along with quinine ($5{\times}10^{-5}M$) and glibenclamide ($10^{-6}$ M), a specific blocker of ATP-regulated potassium channels, CA secretory responses evoked by ACh, high potassium, DMPP McN-A-343, Bay-K-8644 and cyclopiazonic acid were recovered as compared to those of quinine-treatment only. taken together, these results demonstrate that quinine inhibits CA secretion evoked by stimulation of cholinergic (both nicotinic and muscarinic) receptors as well as by membrane depolarization through inhibiting influx of extracellular calcium and release in intracellular calcium in the rat adrenmodullary chromaffin cells. These findings suggest that activation of potassium channels may be involved at least in inhibitory action of quinine on CA secretion from the rat adrenal gland.
The term of stress was used by many scientists, but there were several difinitions about stress, and this term are using in societies frequently. Generally stress is defined as equilibrium, harmony, and adaptation to external stimulations, in 1930 s Hans Selye was the first scientist who used the term of stress and he pointed out the stress mean the function of force in body. When we get stress the stimulation go to the sympathetic-adrenomedulla system and epinephrine and norepinnephrine are secreted from adrenal medulla. Author tried to investigate the change of catecholamine secretion from rat urine which were exposed to 80 dB noise environment. The control rat urine released 0.03 $\pm$ 0.01 ng/ml of epinephrine and 0.18 $\pm$ 0.04 ng/ml, but in noise exposed group the epinephrine was 0.42 $\pm$ 0.07 ng/ml and norepinephrine was 2.16 $\pm$ 0.48 ng/ml.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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