This study examined for the investigation the effect of honey on antibacterial activity. The experimental honey were used the domestics, or chestnut honey, multiflower honey, acassia honey, native honey and the foreign, or manuka honey, clover honey, canola honey, and the artificial honey, made with the diluted solution of each 12.5%, 25.0%, 50.0%. The result of compared the occasion of added-catalase with not added-catalase about the honey's antibacterial activity on Staphylococcus aureus by agar well diffusion assay were as follows. When the catalase was not added, manuka honey antibacterial activity was superior to chestnut honey's in the diluted honey of 12.5% and on the occasion of the diluted honey of 25.0%, it was approved in the order of manuka honey > chestnut honey > multiflower honey 〉 native honey > clover honey > acassia honey and the occasion of the diluted honey of 50.0%, it was approved in the order of manuka honey > chestnut honey > canola honey > native honey > multiflower honey > clover honey > acassia honey(p > 0.01). The clear zone representing inhibition of growth in diluted honey of 12.5, 25.0, 50.0 % with non-treat catalase ranged from 5.85 to 6.60, 4.26 to 8.27, 5.24 to 11.49 mm, respectively. When the catalase was added, antibacterial activity only showed in the manuka honey of 12.5% and on the occasion of the diluted honey of 25.0%, manuka honey's antibacterial activity was superior to chestnut honey (p > 0.01). On the occasion of the diluted honey of 50.0%, antibacterial activity was high in the order of manuka honey > chestnut honey > clover honey > canola honey > native honey(p > 0.01). The correlation was approved significantly among the manuka honey, chestnut honey, clover honey, canola honey and native honey.
Background: Paraquat, a widely used herbicide, is extremely toxic, causing multiple organ failure in humans. Paraquat especially leads to irreversible progressive pulmonary fibrosis, which is related to oxygen free radicals. However, its biochemical mechanism is not clear. Natural mechanisms that prevent damage from oxygen free radicals include changes in glutathione level, G6PDH, superoxide dismutase(SOD), catalase, and glutathione peroxidase. The authors think catalase is closely related to paraquat toxicity in the lungs Method: The effects of 3-amino-1,2,4-triazole(aminotriazole), a catalase inhibitor, on mice administered with paraquat were investigated. We studied the effects of aminotriazole on the survival of mice administered with paraquat, by comparing life spans between the group to which paraquat had been administered and the group to which a combination of paraquat and aminotriazole had been administered. We measured glutathion level, glucose 6-phosphate dehydrogenase(G6PDH), superoxide dismutase(SOD), catalase, and glutathione peroxidase(GPx) in the lung tissue of 4 groups of mice: the control group, group A(aminotriazole injected), group B(paraquat administered), group C(paraquat and aminotriazole administered). Results: The mortality of mice administered with paraquat which were treated with aminotriazole was significantly increased compared with those of mice not treated with aminotriazole. Glutathione level in group B was decreased by 20%, a significant decrease compared with the control group. However, this level was not changed by the administration of aminotriazole(group C). The activity of G6PDH in all groups was not significantly changed compared with the control group. The activities of SOD, catalase, and glutathione peroxidase(GPx) in the lung tissue were significantly decreased by paraquat administration(group B); catalase showed the largest decrease. Catalase and GPX were significantly decreased by aminotriazole treatment in mice administered with paraquat but change in SOD activity was not significant(group C). Conclusion: Decrease in catalase activity by paraquat suggests that paraquat toxicity in the lungs is closely related to catalase activity. Paraquat toxicity in mice is enhanced by aminotriazole administration, and its result is related to the decrease of catalase activity rather than glutathione level in the lungs. Production of hydroxyl radicals, the most reactive oxygen metabolite, is accelerated due to increased hydrogen peroxide by catalase inhibition and the lung damage probably results from nonspecific tissue injury of hydroxyl radicals.
Catalase from Aspergillus niger KUF-04 was purified by five steps including gel filtration. The overall purification gave 64-fold purified preparation, a yield of about nine percent. The enzyme showed its maximum absorption at 406 nm. The optimum pH and temperature for the enzyme activity were around pH 7.0 and 6$0^{\circ}C$, respectively. The catalase was found to be stable in the range of pH 4.0 to pH 8.3 and temperature 2$0^{\circ}C$ to 6$0^{\circ}C$. However, it lost nearly all of the activity by heating at 8$0^{\circ}C$ for 20 min. The activity was markedly inhibited by hydroxylamine, potassium cyanide and sodium azide.
$Cu_2O$ nano cubes with high catalase activity were synthesized by reduction of freshly prepared Cu in distilled water at $40^{\circC}$ and their catalase activities of $H_2O_2$ were studied. Transmission electron microscopy (TEM) observation showed that most of these nanocubes were uniform in size, with the average edge length of 30 nm. Selected area electron diffraction of TEM revealed that the nanocube consisted of single crystalline $Cu_2O$, but it changed to CuO phase. The catalase activity depends on the amount of both cuprite phase and surface area.
Kim, Hee-Jung;Moon, Ja-Young;Lee, John-Hwa;Park, Kie-In
Korean Journal of Veterinary Service
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v.30
no.3
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pp.291-304
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2007
Mutants of an obligate aerobic bacterium, Vitreoscilla, that have deficiency in heat-labile catalase-peroxidase hydroperoxidase I (HPI) were created by EMS treatment. The catalase-peroxidase HPI-deficient mutant showed substantially lower peroxidase activity in exponential and mid-stationary phase compared with the wild type strain. In late stationary phase, the mutant exhibited no peroxidase activity. Peroxidase deficiency in the mutant was revealed by polyacrylamide gels stained for peroxidase activity. Characteristically, catalase levels in the mutant increased about 14- and 8-fold during growth in the exponential and stationary phases, respectively, compared to those in the wild type, suggesting a compensatory effect for protection from $H_2O_2$ toxicity. The mutant showed differences in physiology from the wild type: retardation in growth rate and decrease in oxygen consumption. Both the wild type and the catalase-peroxidase HPI-deficient mutant of Vitreoscilla had lower growth rates in media containing increasing $H_2O_2$ concentrations. However, the mutant exhibited an additionally decreased growth rate after 6 to 8 h of growth compared to the wild type. The wild type was resistent up to 20 mM $H_2O_2$, whereas the mutant was very sensitive to high concentrations of exogenous $H_2O_2$. Although elevated catalase levels would provide protection of the bacteria from the deleterious effect of $H_2O_2$, it did not appear to be complete. Cell-free extracts of the mutant showed decreased NADH oxidation rates and higher accumulation of $H_2O_2$ during this oxidation. These results may account for the impaired growth and earlier onset of death phase by the catalase-peroxidase HPI-deficient mutant of Vitreoscilla.
Five different types of catalases from photosynthetic bacterium Rhodospirillum rubrum S1 grown aerobically in the dark were found in this study, and designated Catl (350 kDa), Cat2 (323 kDa), Cat3 (266 kDa), Cat4 (246 kDa), and Cat5 (238 kDa). Analysis of native PAGE revealed that Cat2, Cat3, and Cat4 were also produced in the cells anaerobically grown in the light. It is notable that only Cat2 was expressed much more strongly in response to the anaerobic condition. Enzyme activity staining demonstrated that Cat3 and Cat4 had bifunctional catalase-peroxidase activities, while Catl, Cat2, and Cat5 were typical monofunctional catalases. S1 cells grown aerobically in the presence of malate as the sole source of carbon exhibited an apparent catalase Km value of 10 mM and a Vmax of about 705 U/mg protein at late stationary growth phase. The catalase activity of Sl cells grown in the anaerobic environment exhibited a much lower Vmax of about 109 U/mg protein at late logarithmic growth phase. The catalytic activity was stable in the broad range of temperatures (30$\^{C}$-60$\^{C}$), and pH (6.0-10.0). R. rubrum S1 was much more resistant to H$_2$O$_2$in the stationary growth phase than in the exponential growth phase regardless of growth conditions. Cells of stationary growth phase treated with 15 mM H$_2$O$_2$for 1 h showed 3-fold higher catalase activities than the untreated cells. In addition, L-glutamate induced an 80-fold increase in total catalase activity of R. rubrum S1 compared with magic acid. Through fraction analyses of S1 cells, Cat2, Cat3, Cat4 and Cat5 were found in both cytoplasm and periplasm, while Catl was localized only in the cytoplasm.
The logarithmically growing Schizosaccharomyces pombe cells were subjected to high heat ($40^{\circ}C$), hydrogen peroxide, and heavy metals such as mercuric chloride and cadmium chloride. Then, the stress responses of catalase, glutathione S-transferase and thioltransferase were investigated. The high heat and cadmium chloride enhanced the catalase activity. The glutathione S-transferase activity of S. pombe cells was increased after treatments with heavy metals. The thioltransferase activity of S. pombe cells was completely abolished by mercuric chloride. Hydrogen peroxide caused no effect on the activities of glutathione S-transferase and thioltransferase. These results suggest that the response of S. pombe cells against oxidative stress is very complicated.
Pulsed electric field (PEF) of 1Hz, 1.5 kV, and 1ms increased the activities of catalase and inulinase over the whole range of applied Se concentrations compared with the non-treated cultures. A significant effect of selenium concentration (in the range of 5-14 ${\mu}g/ml$) on both intra- and extracellular enzyme activities was noted. At a Se concentration of 10 ${\mu}g/ml$, the activities of intra- and extracellular inulinases and extracellular catalase in the PEF-treated cultures reached the maximum of 71 U/g d.m., 46 U/g d.m., and approx. 8 U/ml, respectively. The maximum activity of intracellular catalase of approx. 6 U/ml (with and without PEF) was recorded at 5 ${\mu}g$ Se/ml. Further increasing of selenium concentration caused a decrease in the activity of the enzymes.
To show the effects of metallothionein (MT) on the activity of enzymes involved in the removal of reactive oxygen species, MT has been added to the assay systems of superoxide dismutase (SOD), catalase and peroxidase. We have used assay systems of SOD based on NADPH oxidation and nitrite formation from hydroxylammonium chloride as an assay of superoxide breakdown rate. The two assay systems showed different results at the high concentration of MT. MT showed the scavenging of superoxide in the SOD assay system in the presence and absence of SOD. MT added to the SOD assay system behaved as an activator of SOD, but apo-MT behaved as an inhibitor. When MT was added to the assay system in the presence of a fixed amount of SOD, the breakdown rate of superoxide increased. The effects of MT on the decomposition of hydrogen peroxide and the activity of catalase and peroxidase decomposing hydrogen peroxide were evaluated. MT decreased the activities of catalase and peroxidase. We have concluded that the function of MT as an antioxidant might effect the level of superoxide scavenging and not the level of hydrogen peroxide.
In this study, an approx. 2.5-kb gene fragment including the catalase gene from Rhodospirillum rubrum S1 was cloned and characterized. The determination of the complete nucleotide sequence revealed that the cloned DNA fragment was organized into three open reading frames, designated as ORF1, catalase, and ORF3 in that order. The catalase gene consisted of 1,455 nucleotides and 484 amino acids, including the initiation and stop codons, and was located 326 bp upstream in the opposite direction of ORF1. The catalase was overproduced in Escherichia coli UM255, a catalase-deficient mutant, and then purified for the biochemical characterization of the enzyme. The purified catalase had an estimated molecular mass of 189 kDa, consisting of four identical subunits of 61 kDa. The enzyme exhibited activity over a broad pH range from pH 5.0 to pH 11.0 and temperature range from $20^{\circ}C$ to $60^{\circ}C$C. The catalase activity was inhibited by 3-amino-1,2,4-triazole, cyanide, azide, and hydroxylamine. The enzyme's $K_m$ value and $V_{max}$ of the catalase for $H_2O_2$ were 21.8 mM and 39,960 U/mg, respectively. Spectrophotometric analysis revealed that the ratio of $A_{406}$ to $A_{280}$ for the catalase was 0.97, indicating the presence of a ferric component. The absorption spectrum of catalase-4 exhibited a Soret band at 406 nm, which is typical of a heme-containing catalase. Treatment of the enzyme with dithionite did not alter the spectral shape and revealed no peroxidase activity. The combined results of the gene sequence and biochemical characterization proved that the catalase cloned from strain S1 in this study was a typical monofunctional catalase, which differed from the other types of catalases found in strain S1.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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