Park, Boryung;Yang, Yu-Mi;Choi, Byung-Jai;Kim, Min Seuk;Shin, Dong Min
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.17
no.5
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pp.427-433
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2013
Receptor activator of NF-${\kappa}B$ ligand (RANKL)-induced osteoclastogenesis is accompanied by intracellular $Ca^{2+}$ mobilization in a form of oscillations, which plays essential roles by activating sequentially $Ca^{2+}$/calmodulin-dependent protein kinase, calcineurin and NFATc1, necessary in the osteoclast differentiation. However, it is not known whether $Ca^{2+}$ mobilization which is evoked in RANKL-independent way induces to differentiate into osteoclasts. In present study, we investigated $Ca^{2+}$ mobilization induced by aluminum fluoride ($AlF_4^-$), a G-protein activator, with or without RANKL and the effects of $AlF_4^-$ on the osteoclastogenesis in primary cultured mouse bone marrow-derived macrophages (BMMs). We show here that $AlF_4^-$ induces intracellular $Ca^{2+}$ concentration ($[Ca^{2+}]_i$) oscillations, which is dependent on extracellular $Ca^{2+}$ influx. Notably, co-stimulation of $AlF_4^-$ with RANKL resulted in enhanced NFATc1 expression and formation of tartrate-resistant acid phosphatase (TRAP) positive multinucleated cells. Additionally, we confirmed that mitogen-activated protein kinase (MAPK) is also activated by $AlF_4^-$. Taken together, these results demonstrate that G-protein would be a novel modulator responsible for $[Ca^{2+}]_i$ oscillations and MAPK activation which lead to enhancement of RANKL-mediated osteoclastogenesis.
Cordycepin (3'-deoxyadenosine) is an adenosine analogue isolated from Cordyceps militaris, and it has been used as an anti-cancer and anti-inflammation ingredient in traditional Chinese medicine. We investigated the effects of cordycepin on human platelet aggregation induced by thapsigargin, and determined the cytosolic free $Ca^{2+}$ levels ($[Ca^{2+}]_i$), an aggregation-stimulating factor. Cordycepin significantly inhibited thapsigargin-induced platelet aggregation. Its inhibitory effect was continually sustained at the maximal aggregation concentration of thapsigargin. The thapsigargin-induced $[Ca^{2+}]_i$ were clearly reduced by cordycepin in the presence of exogenous $CaCl_2$ or extracellular $Ca^{2+}$-chelator (EDTA). These results suggest that cordycepin inhibited thapsigargin-induced $Ca^{2+}$-influx from extracellular domain and thapsigargin-induced $Ca^{2+}$-mobilization from intracellular $Ca^{2+}$ storage. Accordingly, our data demonstrated that cordycepin may have a beneficial effect on platelet aggregation-mediated thrombotic diseases by inhibiting a $[Ca^{2+}]_i$-elevation.
Cordycepin separated from Cordyceps militaris is a major physiologic active component in Cordyceps militaris. The platelet aggregation is stimulated by $Ca^{2+}$, which is either mobilized from intracellular endoplasmic reticulum or transported from extracellular space. cGMP antagonizes the actions of $Ca^{2+}$. Based on these facts, we have investigated the effects of cordycepin on the mobilization of $Ca^{2+}$ and the production of cGMP on collagen ($10\mu$g/ml)-induced human platelet aggregation. Cordycepin potently stimulated the human platelet aggregation induced by collagen ($10\mu$g/ml) in a dose-dependent manner. Cordycepin (500 $\mu$M) inhibited also the collagen-induced human platelet aggregation in the presence both 1 mM and 2 mM of $CaCl_2$. These are in accord with the results that cordycepin inhibited the $Ca^{2+}$- influx on collagen-induced human platelet aggregation. These results suggest that cordycepin decrease the intracellular $Ca^{2+}$ concentration to inhibit collagen-induced human platelet aggregation. Besides, cordycepin increased the level of cGMP on collagen-induced human platelet aggregation. This result is related with the decrease of intracellular $Ca^{2+}$ concentration, because cGMP inhibits the mobilization of $Ca^{2+}$. In addition, cordycepin inhibited the human platelet aggregation induced by LY -83583, inhibitor of guanylate cyclase. This result suggested that cordycepin inhibit the platelet aggregation by stimulating the activity of guanylate cyclase. In conclusion, we demonstrated that cordycepin might have the antiplatelet function by inhibiting $Ca^{2+}$-mobilization via the stimulation of the production of cGMP.
The extract of Cudrania tricuspidata is used in ethnomedicine throughout Eastern Asia in China, Korea and Japan. In Korean traditional medicine, Cudrania tricuspidata has been used to treat eczema, mumps, tuberculosis, contusions, insomnia and acute arthritis. In addition, it has been reported that root extract of Cudrania tricuspidata has anti-platelet effects. Therefore, we investigated which compound in Cudrania tricuspidata has inhibitory effect on platelet aggregation. In this study, we tried to explain the inhibitory mechanism of steppogenin from Cudrania tricuspidata on human platelet aggregation. Collagen-induced human platelet aggregation and [Ca2+]i mobilization were dose-dependently inhibited by steppogenin and we determined the inhibition by steppogenin is due to the down regulation of extracellular-signal-regulated kinase(ERK) and inositol-1,4,5-triphosphate receptor type I(IP3RI) phosphorylation. In addition, steppogenin inhibited collagen-induced fibronectin adhesion to αIIb/β3 and thromboxane A2 generation. Thus, in the present study, steppogenin showed an inhibitory effect on human platelet aggregation, suggesting its potential use for preventing platelet-induced cardiovascular disease.
Purpose: It is generally accepted that smooth muscle contraction is triggered by intracellular $Ca^{2+}$ ($[Ca^{2+}]_i$) released from intracellular $Ca^{2+}$ stores such as sarcoplasmic teticulum (SR) and from the extracellular space. The increased $[Ca^{2+}]^i$ can phosphorylate the 20,000 dalton myosin light chain $(MLC_{20})$ by activating MLC kinase (MLCK), and this initiates smooth muscle contraction. In addition to the $[Ca^{2+}]_i$MACK-tension pathway, a number of intracellular signal molecules, including mitogen-activated protein kinase (MAPK), protein kinase C (PKC) and others, play important roles in the regulation of smooth muscle contraction. However, the mechanisms regulating contraction of depletion of SR $Ca^{2+}$ in mouse gastric smooth muscle strips is not still clear. Methods: To investigate the rotes of $Ca^{2+}$ influx and SR $Ca^{2+}$ release channel on gastric motility, isometric contraction and $[Ca^{2+}]_i$ were examined in mouse gastric smooth muscle strips. Results: High KCl, ryanodine, an activator of $Ca^{2+-}$induced $Ca^{2+}$ release channel, and cyclopiazonic acid (CPA), an inhibitor of SR $Ca^{2+-}$ATPase evoked a sustained increase in muscle contraction and $[Ca^{2+}]_i$. These increases induced by high KCl, ryanodine, and CPA were partially blocked by application of verapamil ($10{\mu}M$), a L-type $Ca^{2+}$ channel inhibitor. Additionally, in $Ca^{2+-}$free solution (1 mM EGTA), ryanodine and CPA had no effect contraction and $[Ca^{2+}]_i$ in fundic muscle strips. Conclusion: These results that extracellular $Ca^{2+}$ influx and depletion of SR trigger $Ca^{2+}$ influx through verapamil-sensitive $Ca^{2+}$ channel, and extracellular and SR $Ca^{2+}$ store may functionally involve in the subcellular $Ca^{2+}$ mobilization in mouse gastric muscle.
The secretion of insulin from pancreatic ${\beta}$-cells is triggered by the influx of $Ca^{2+}$ through voltage-dependent $Ca^{2+}$ channels. The resulting elevation of intracellular calcium ($[Ca^{2+}]_i$) triggers additional $Ca^{2+}$ release from internal stores. Less well understood are the mechanisms involved in $Ca^{2+}$ mobilization from internal stores after activation of $Ca^{2+}$ influx. The mobilization process is known as calcium-induced calcium release (CICR). In this study, our goal was to investigate the existence of and the role of caffeine-sensitive ryanodine receptors (RyRs) in a rat pancreatic ${\beta}$-cell line, INS-1 cells. To measure cytosolic and stored $Ca^{2+}$, respectively, cultured INS-1 cells were loaded with fura-2/AM or furaptra/AM. $[Ca^{2+}]_i$ was repetitively increased by caffeine stimulation in normal $Ca^{2+}$ buffer. However, peak $[Ca^{2+}]_i$ was only observed after the first caffeine stimulation in $Ca^{2+}$ free buffer and this increase was markedly blocked by ruthenium red, a RyR blocker. KCl-induced elevations in $[Ca^{2+}]_i$ were reduced by pretreatment with ruthenium red, as well as by depletion of internal $Ca^{2+}$ stores using cyclopiazonic acid (CPA) or caffeine. Caffeine-induced $Ca^{2+}$ mobilization ceased after the internal stores were depleted by carbamylcholine (CCh) or CPA. In permeabilized INS-1 cells,$Ca^{2+}$ release from internal stores was activated by caffeine, $Ca^{2+}$, or ryanodine. Furthermore, ruthenium red completely blocked the CICR response in perrneabilized cells. RyRs were widely distributed throughout the intracellular compartment of INS-1 cells. These results suggest that caffeine-sensitive RyRs exist and modulate the CICR response from internal stores in INS-1 pancreatic ${\beta}$-cells.
Short-chain fatty acids (SCFAs) such as acetate, propionate, and butyrate are secondary metabolites produced by anaerobic fermentation of dietary fibers in the intestine. Intestinal SCFAs exert various beneficial effects on intestinal homeostasis, including energy metabolism, autophagy, cell proliferation, immune reaction, and inflammation, whereas contradictory roles of SCFAs in the oral cavity have been reported. Herein, we found that low and high concentrations of SCFAs induce differential regulation of intracellular Ca2+ mobilization and expression of pro-inflammatory cytokines, such as interleukin (IL)-6 and IL-8, respectively, in gingival fibroblast cells. Additionally, cell viability was found to be differentially regulated in response to low and high concentrations of SCFAs. These findings demonstrate that the physiological functions of SCFAs in various cellular responses are more likely dependent on their local concentration.
Proceedings of the Korean Society of Applied Pharmacology
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1996.04a
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pp.207-207
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1996
Through molecular cloning, five muscarinic receptors have been identified. The muscarinic receptors can be generally grouped according to their coupling to either stimulation of phospholipase C (m1, m3, and m5) or the inhibition of adenylate cyclase (m2 and m4). Each m1, m3, and m5 receptors has the additional potential to couple to the activation of phospholipase A$_2$, C, and D, tyrosine kinase, and the mobilization of Ca$\^$2+/. However, the differences in coupling efficiencies to different second messenger systems between these receptors have not been studied well. Ectopic expression of each of these receptors in mammalian cells has provided the opportunity to evaluate the signal transduction of each in some detail. In this work we compared the coupling efficiencies of the m1, m3 and m5 muscarinic receptors expressed in chinese hamster ovary (CHO) cells to the Ca$\^$2+/ mobilization and the stimulation of neuronal nitric oxide synthase (nNOS). Because G protein/PLC/PI turnover/[(Ca$\^$2+/])i/NOS pathway was supposed as a main pathway for the production of nitric oxide via muscarinic receptors, we studied on ml, m3 and m5 receptors. Stimulation of guanylate cyclase activity in detector neuroblastoma cells was used as an index of generation nitric oxide (NO) in CHO cells. The agonist carbachol increased the cGMP formation and the intracellular [Ca$\^$2+/] in concentration dependent manner in three types of receptors and the increased cGMP formation was significantly attenuated by scavenger of NO or inhibitor of NOS. m5 receptors was most efficiently coupled to stimulation of nNOS, And, the coupling efficiencies to the stimulation of neuronal nitric oxide synthase in three types of receptors were parallel with them to the Ca$\^$2+/ mobilization.
Platelet aggregation is essential for hemostatic process in case of blood vessels damages. However, excessive platelet aggregation can cause cardiovascular disorders including atherosclerosis, thrombosis and myocardial infarction. Scopoletin is usually found in the roots of genus Scopolia or Artemisia, and is known to have anticoagulant and anti-malarial effects. This study investigated the effect of scopoletin on human platelet aggregation induced by U46619, an analogue of thromboxane $A_2(TXA_2)$. Scopoletin had anti-platelet effects by down-regulating $TXA_2$ and intracellular $Ca^{2+}$ mobilization ($[Ca^{2+}]_i$), the aggregation-inducing molecules generated in activated platelets. On the other hand, scopoletin increased the levels of cyclic adenosine monophosphate (cAMP) and cyclic guanosine monophosphate (cGMP), which are known to be intracellular $Ca^{2+}$ antagonists. This resulted in inhibition of fibrinogen binding to ${\alpha}IIb/{\beta}_3$ in U46619-induced human platelet aggregation. In addition, scopoletin inhibited the release of adenosine trisphosphate (ATP) in dose-dependent manner. This result means that the aggregation amplification activity through the granule secretion in platelets was suppressed by scopoletin. Therefore, we demonstrated that scopoletin has a potent antiplatelet effect and is highly likely to prevent platelet-derived vascular disease.
Platelet activation is essential at the sites of vascular injury, which leads to hemostasis through adhesion, aggregation, and secretion process. However, potent and continuous platelet activation may be an important reason of circulatory disorders. Therefore, proper regulation of platelet activation may be an effective treatment for vascular diseases. In this research, inhibitory effects of cordycepin (3'-deoxyadenosine) on platelet activation were determined. As the results, cordycepin increased cAMP and cGMP, which are intracellular $Ca^{2+}$-antagonists. In addition, cordycepin reduced collagen-elevated $[Ca^{2+}]_i$ mobilization, which was increased by a cAMP-dependent protein kinase (PKA) inhibitor (Rp-8-Br-cAMPS), but not a cGMP-protein kinase (PKG) inhibitor (Rp-8-Br-cGMPS). Furthermore, cordycepin increased $IP_3RI$ ($Ser^{1756}$) phosphorylation, indicating inhibition of $IP_3$-mediated $Ca^{2+}$ release from internal store via the $IP_3RI$, which was strongly inhibited by Rp-8-Br-cAMPS, but was not so much inhibited by Rp-8-Br-cGMPS. These results suggest that the reduction of $[Ca^{2+}]_i$ mobilization is caused by the cAMP/A-kinase-dependent $IP_3RI$ ($Ser^{1756}$) phosphorylation. In addition, cordycepin increased the phosphorylation of VASP ($Ser^{157}$) known as PKA substrate, but not VASP ($Ser^{239}$) known as PKG substrate. Cordycepin-induced VASP ($Ser^{157}$) phosphorylation was inhibited by Rp-8-Br-cAMPS, but was not inhibited by Rp-8-Br-cGMPS, and cordycepin inhibited collagen-induced fibrinogen binding to ${\alpha}IIb/{\beta}_3$, which was increased by Rp-8-Br-cAMPS, but was not inhibited by Rp-8-Br-cGMPS. These results suggest that the inhibition of ${\alpha}IIb/{\beta}_3$ activation is caused by the cAMP/A-kinase-dependent VASP ($Ser^{157}$) phosphorylation. In conclusion, these results demonstrate that inhibitory effects of cordycepin on platelet activation were due to inhibition of $[Ca^{2+}]_i$ mobilization through cAMP-dependent $IP_3RI$ ($Ser^{1756}$) phosphorylation and suppression of ${\alpha}IIb/{\beta}_3$ activation through cAMP-dependent VASP ($Ser^{157}$) phosphorylation. These results strongly indicated that cordycepin might have therapeutic or preventive potential for platelet activation-mediated disorders including thrombosis, atherosclerosis, myocardial infarction, or cardiovascular disease.
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