Although extracellular $Ca^{2+}$ entry through the voltage-dependent $Ca^{2+}$ channels plays an important role in the spontaneous phasic contractions of the pregnant rat myometrium, the role of the T-type $Ca^{2+}$ channels has yet to be fully identified. The aim of this study was to investigate the role of the T-type $Ca^{2+}$ channel in the spontaneous phasic contractions of the rat myometrium. Spontaneous phasic contractions and $[Ca^{2+}]_i$ were measured simultaneously in the longitudinal strips of female Sprague-Dawley rats late in their pregnancy (on day 18 ${\sim}$ 20 of gestation: term=22 days). The expression of T-type $Ca^{2+}$ channel mRNAs or protein levels was measured. Cumulative addition of low concentrations (< 1 ${\mu}M$) of nifedipine, a L-type $Ca^{2+}$ channel blocker, produced a decrease in the amplitude of the spontaneous $Ca^{2+}$ transients and contractions with no significant change in frequency. The mRNAs and proteins encoding two subunits (${\alpha}$ 1G, ${\alpha}$ 1H) of the T-type $Ca^{2+}$ channels were expressed in longitudinal muscle layer of rat myometrium. Cumulative addition of mibefradil, NNC 55-0396 or nickel induced a concentration-dependent inhibition of the amplitude and frequency of the spontaneous $Ca^{2+}$ transients and contractions. Mibefradil, NNC 55-0396 or nickel also attenuated the slope of rising phase of spontaneous $Ca^{2+}$ transients consistent with the reduction of the frequency. It is concluded that T-type $Ca^{2+}$ channels are expressed in the pregnant rat myometrium and may play a key role for the regulation of the frequency of spontaneous phasic contractions.
Human cytomegalovirus (HCMV) replication and $Ca^{2+}$ response in human cell lines of neuronal origin were investigated. SK-N-SH (neuroblastoma cells) and A172 cells (glioblastoma cells) were used. SK-N-SH cells were permissive for HCMV multiplication with a delay of one day compared to virus multiplication in human embryo lung (HEL) cells. The delay of HCMV multiplication in SK-N-SH cells appeared to be correlated with a delay in the $Ca^{2+}$ response. The cytoplasmic free $Ca^{2+}$ concentration ($[Ca^{2+}]_i$) began to increase at 12 h p.i. in HCMV-infected SK-N-SH cells, while $[Ca^{2+}]_i$ increase in HCMV-infected HEL cells was observed as early as 3 h p.i. On the whole, the level of the increase in $[Ca^{2+}]_i$ in SK-N-SH cells was about 30% of that in HEL cells. On the other hand, in A172 cells infected with HCMV, neither production of infectious virus nor detectable increase in $[Ca^{2+}]_i$ was observed. Treatment with TPA of HCMV-infected SK-N-SH cells resulted in $[Ca^{2+}]_i$ increase at 6 h p.i. The stimulatory effect of TPA on HCMV- induced $[Ca^{2+}]_i$ increase continued until 12 h p.i., but TPA failed to stimulate the $Ca^{2+}$ response in SK-N-SH cells at 24 h p.i., suggesting that the effect of TPA had disappeared in SK-N-SH cells at that time point. In conclusion, SK-N-SH cells are permissive for HCMV replication and the delay in $Ca^{2+}$ response may be a consequence of the lower responsiveness of SK-N-SH cells than HEL cells to HCMV infection.
Although mammalian sperms are cryopreserved for in vitro fertilization a process of cryopreservation decreases the fertility. Acrosome reaction requires depolarization-induced Ca$^{2+}$ influx and Ca$^{2+}$ releases from the Ca$^{2+}$ stores. To examine whether the cellular Ca$^{2+}$ mobilization is altered by a sperm cryopreservation we compared cytosolic Ca$^{2+}$ signals between fresh and cryopreserved pig sperms using confocal Ca$^{2+}$ imaging. The magnitudes of depolarization induced Ca$^{2+}$ increases were significantly smaller in cryopreserved sperms. Exposures to 10 mM caffeine or 5 ${\mu}$M thapsigargin elicited less Ca$^{2+}$ increases in the cryopreserved sperms compared to fresh sperms. In addition, progesterone-trig-gered Ca$^{2+}$ rises, that are thought to enhance acrosome reaction, were completely abolished in the cryopreserved sperms. These results suggest that storage and(/or) release of Ca$^{2+}$ from the intracellular Ca$^{2+}$ stores in pig sperms are significantly impaired by the process of cryopreservation.
We have previously shown that, in circular muscle cells of the lower esophageal sphincter (LES) isolated by enzymatic digestion, contraction in response to maximally effective doses of acetylcholine (ACh) or Inositol Triphosphate ($IP_3$) depends on the release of $Ca^{2+}$ from intracellular stores and activation of a $Ca6{2+}$-calmodulin (CaM)-dependent pathway. On the contrary, maintenance of LES tone, and response to low doses of ACh or $IP_3$ depend on a protein kinase C (PKC) mediated pathway. In the present investigation, we have examined requirements for $Ca6{2+}$ regulation of the interaction between CaM- and PKC-dependent pathways in LES contraction. Thapsigargin (TG) treatment for 30 min dose dependently reduced ACh-induced contraction of permeable LES cells in free $Ca6{2+}$ medium. ACh-induced contraction following the low level of reduction of $Ca6{2+}$ stores by a low dose of TG ($10^{-9}{\;}M$) was blocked by the CaM antagonist, CCS9343B but not by the PKC antagonists chelerythrine or H7, indicating that the contraction is CaM-dependent. After maximal reduction in intracellular $Ca{2+}$ from $Ca6{2+}$stores by TG ($10^{-6}{\;}M$), ACh-induced contraction was blocked by chelerythrine or H7, but not by CCS9343B, indicating that it is PKC-dependent. In normal $Ca^{2+}$medium, the contraction by ACh after TG ($10^{-9}{\;}M$) treatment was also CaM-dependent, whereas the contraction by ACh after TG ($10^{-9}{\;}M$) treatment was PKC-dependent. We examined whether PKC activation was inhibited by activated CaM. CCS 7343B Inhibited the CaM-induced contraction, but did not inhibit the DAC-induced contraction. CaM inhibited the DAC-induced contraction in the presence of CCS 9343B. This inhibition by CaM was $Ca{2+}$dependent. These data are consistent with the view that the switch from a PKC-dependent pathway to a CaM dependent pathway can occur and can be regulated by cytosolic $Ca{2+}$ in the LES.
Human cardiac fibroblasts (HCFs) have various voltage-dependent $K^+$ channels (VDKCs) that can induce apoptosis. Hydrogen peroxide ($H_2O_2$) modulates VDKCs and induces oxidative stress, which is the main contributor to cardiac injury and cardiac remodeling. We investigated whether $H_2O_2$ could modulate VDKCs in HCFs and induce cell injury through this process. In whole-cell mode patch-clamp recordings, application of $H_2O_2$ stimulated $Ca^{2+}-activated$$K^+$ ($K_{Ca}$) currents but not delayed rectifier $K^+$ or transient outward $K^+$ currents, all of which are VDKCs. $H_2O_2-stimulated$$K_{Ca}$ currents were blocked by iberiotoxin (IbTX, a large conductance $K_{Ca}$ blocker). The $H_2O_2-stimulating$ effect on large-conductance $K_{Ca}$ ($BK_{Ca}$) currents was also blocked by KT5823 (a protein kinase G inhibitor) and 1 H-[1, 2, 4] oxadiazolo-[4, 3-a] quinoxalin-1-one (ODQ, a soluble guanylate cyclase inhibitor). In addition, 8-bromo-cyclic guanosine 3', 5'-monophosphate (8-Br-cGMP) stimulated $BK_{Ca}$ currents. In contrast, KT5720 and H-89 (protein kinase A inhibitors) did not block the $H_2O_2-stimulating$ effect on $BK_{Ca}$ currents. Using RT-PCR and western blot analysis, three subtypes of $K_{Ca}$ channels were detected in HCFs: $BK_{Ca}$ channels, small-conductance $K_{Ca}$ ($SK_{Ca}$) channels, and intermediate-conductance $K_{Ca}$ ($IK_{Ca}$) channels. In the annexin V/propidium iodide assay, apoptotic changes in HCFs increased in response to $H_2O_2$, but IbTX decreased $H_2O_2$-induced apoptosis. These data suggest that among the VDKCs of HCFs, $H_2O_2$ only enhances $BK_{Ca}$ currents through the protein kinase G pathway but not the protein kinase A pathway, and is involved in cell injury through $BK_{Ca}$ channels.
Pathophysiological elevation of intracellular calcium concentration ($[Ca^{2+}]_1$) in the neuron has been considered as an important responsible factor in the neuronal cell damages. However the mechanism of increase of $[Ca^{2+}]_1$ and the relationship between $[Ca^{2+}]_1$ level and cytotocixity have not been fully demonstrated. In the present study, real-time alteration of $[Ca^{2+}]_1$and cellular response (cell damages) in the pheochromocytoma cells (PC12) stimulated by glutamate were investigated. Glutamate dose dependently decreased cell viability determined propidium iodide fluorescence method and morphology change. Conversely related with cell damages, glutamate dose dependently increased the level of[Ca$^{2+}$]$_{i}$ . To investigate the mechanism of glutamate-induced increase of $[Ca^{2+}]_1$,$[Ca^{2+}]_1$, was first measured in the cell cultured in calcium free media and in the presence of dantrolene, an inhibitor of calcium release from ryanodine receptor located in endoplasmic reticulum (ER). Similar to the increase$[Ca^{2+}]_1$ in the calcium-containing media, glutamate dose dependently increased $[Ca^{2+}]_1$ in the cell cultured in free calcium media. However pretreatment (2 hr) with 20~50 $\mu\textrm{M}$ dantrolene substantial lowered glutamate-induced increase of $[Ca^{2+}]_1$, suggesting that release of calcium from ER may be major sourse of increase of $[Ca^{2+}]_1$ in PC12 cells. Dantrolene-induced inhibition of $[Ca^{2+}]_1$ resulted in recovery of cytotoxicity by glutamate. Relevance of N-methy-D-aspartate (NMDA) receptor, a type of glutamte receptor on glutamate-induced incense of $[Ca^{2+}]_1$,$[Ca^{2+}]_1$ was also determined in the cells pretreated (2 hr) with NMDA receptor antagonist MK-80l. Glutamate-induced increase of $[Ca^{2+}]_1$ was reduced by MK-801 dose dependently. Furthermore, glutamate-induced cytotoxicity was also prevented by MK-80l. These results demonstrate that glutamte increase $[Ca^{2+}]_1$ dose dependently and thereby cause cytotoxicity. The increase of $[Ca^{2+}]_1$ may release from ER, especially through ryanodine receptor and/or through NMDA receptor Alteration of calcium homeostasis through disturbance of ER system and/or calcium influx through NMDA receptor could contribute glutamate-induced cell damages.s.
We investigated the role of $Ca^{2+}$ and protein kinases/phosphatases in the stimulatory effect of insulin on glucose transport. In isolated rat adipocytes, the simple omission of $CaCl_2$ from the incubation medium significantly reduced, but did not abolish, insulin-stimulated 2-deoxy glucose (2-DG) uptake. Pre-loading adipocytes with intracellular $Ca^{2+}$ chelator, 5,5'-dimethyl bis (o-aminophenoxy)ethane-N,N,N'N' tetraacetic acetoxymethyl ester (5,5'-dimethyl BAPTA/AM) completely blocked the stimulation. Insulin raised intracellular $Ca^{2+}$ concentration $([Ca^{2+}]_i)$ about 1.7 times the basal level of $72{\pm}5$ nM, and 5,5'-dimethyl BAPTA/AM kept it constant at the basal level. This correlation between insulin-induced increases in 2-DG uptake and $[Ca^{2+}]_i$ indicates that the elevation of $[Ca^{2+}]_i$ may be prerequisite for the stimulation of glucose transport. Studies with inhibitors (ML-9, KN-62, cyclosporin A) of $Ca^{2+}-calmodulin$ dependent protein kinases/phosphatases also indicate an involvement of intracellular $Ca^{2+}.$ Additional studies with okadaic acid and calyculin A, protein phosphatase-1 (PP-1) and 2A (PP-2A) inhibitors, indicate an involvement of PP-1 in insulin action on 2-DG uptake. These results indicate an involvement of $Ca^{2+}-dependent$ signaling pathway in insulin action on glucose transport.
Store-operated Ca2+ entry (SOCE) represents one of the major Ca2+ entry routes in non-excitable cells. It is involved in a variety of fundamental biological processes and the maintenance of Ca2+ homeostasis. The Ca2+ release-activated Ca2+ (CRAC) channel consists of stromal interaction molecule and Orai; however, the role and action of Homer proteins as an adaptor protein to SOCE-mediated Ca2+ signaling through the activation of CRAC channels in non-excitable cells still remain unknown. In the present study, we investigated the role of Homer2 in the process of Ca2+ signaling induced by the interaction between CRACs and Homer2 proteins in non-excitable cells. The response to Ca2+ entry by thapsigargin-mediated Ca2+ store depletion remarkably decreased in pancreatic acinar cells of Homer2-/- mice, as compared to wild-type cells. It also showed critical differences in regulated patterns by the specific blockers of SOCE in pancreatic acinar cells of Homer2-/- mice. The response to Ca2+ entry by the depletion in Ca2+ store markedly increased in the cellular overexpression of Orai1 and STIM1 as compared to the overexpression of Homer2 in cells; however, this response was remarkably inhibited by the overexpression of Orai1, STIM1, and Homer2. These results suggest that Homer2 has a critical role in the regulatory action of SOCE activity and the interactions between CRAC channels.
To get a better insight into the exxistence and the role of a Na-Ca exchange mechanism in smooth muscle, the effect of Na substitution with sucrose on tension development, cellular Ca uptake and $^{45}Ca$ efflux was investigated using isolated cat ileal longitudinal muscle strips. Experimental results were summarized as follows;1) Exposure of the cat ileal longitudinal muscle to Na-free solution induced a contraction, and the magnitude of the contraction increased after incubation of the muscle strips with ouabain ($2{\times10^{-}5}$M) for 1hr. 2) Cellular Ca uptake in Na-free solution increased with an increase in Na content of the Na-loading media, and a linear relationship existed between tissue Na content and cellular Ca uptake for 10 min 3) After tissues were equilibrated in PSS containing $^{45}Ca$ for 2hr, cellular Ca uptake decreased with rising the external Na concentration. 4)Removal of medium Na or inhibition of the Na-K pump decreased the rate of $^{45}Ca$ efflux. These results strongly suggested that Na substitution increases cellular Ca uptake and decreases the rate of $^{45}Ca$ efflux via a Na-Ca exchange mechanism.
R-type $Ca_v2.3$ high voltage-activated $Ca^{2+}$ channels in peripheral sensory neurons contribute to pain transmission. Recently we have demonstrated that, among the six $Ca_v2.3$ isoforms ($Ca_v2.3a{\sim}Ca_v2.3e$), the $Ca_v2.3e$ isoform is primarily expressed in trigeminal ganglion (TG) nociceptive neurons. In the present study, we further investigated expression patterns of $Ca_v2.3$ isoforms in the dorsal root ganglion (DRG) neurons. As in TG neurons, whole tissue RT-PCR analyses revealed the presence of two isoforms, $Ca_v2.3a$ and $Ca_v2.3e$, in DRG neurons. Single-cell RT-PCR detected the expression of $Ca_v2.3e$ mRNA in 20% (n=14/70) of DRG neurons, relative to $Ca_v2.3a$ expression in 2.8% (n=2/70) of DRG neurons. $Ca_v2.3e$ mRNA was mainly detected in small-sized neurons (n=12/14), but in only a few medium-sized neurons (n=2/14) and not in large-sized neurons, indicating the prominence of $Ca_v2.3e$ in nociceptive DRG neurons. Moreover, $Ca_v2.3e$ was preferentially expressed in tyrosine-kinase A (trkA)-positive, isolectin B4 (IB4)-negative and transient receptor potential vanilloid 1 (TRPV1)-positive neurons. These results suggest that $Ca_v2.3e$ may be the main R-type $Ca^{2+}$ channel isoform in nociceptive DRG neurons and thereby a potential target for pain treatment, not only in the trigeminal system but also in the spinal system.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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