Background: Ca2+ signaling plays a vital role in neuronal signaling and altered Ca2+ homeostasis in Parkinson's disease (PD). Overexpression of αSYN significantly promote the Ca2+-Calmodulin (CaM) activity and subsequent nuclear translocation of nuclear factor of activated T cells (NFAT) transcription factor in dopaminergic neurons of midbrain. However, the exact role of Ca2+-CaM and NFAT in PD pathology is yet to be elucidated. Methods: We designed the CaM-NFAT-oligodeoxynucleotide (ODN), a synthetic short DNA containing complementary sequence for NFAT transcription factor and CaM mRNA. Then, the effect of CaM-NFAT-ODN on 1-methyl-4-phenylpyridinium (MPP+)-mediated neurotoxicity was investigated in mimic PD model in vitro. Results: First, the expression of αSYN and CaM was strongly increased in substantia nigra (SN) of PD and the expression of tyrosine hydroxylase (TH) was strongly increased in control SN. Additionally, the expression of apoptosis marker proteins was strongly increased in SN of PD. Transfection of CaM-NFAT-ODN repressed CaM and pNFAT, the target genes of this ODN in rat embryo primary mesencephalic neurons. It also reduced ERK phosphorylation, a downstream target of these genes. These results demonstrated that CaM-NFAT-ODN operated successfully in rat embryo primary mesencephalic neurons. Transfection of CaM-NFAT-ODN repressed TH reduction, αSYN accumulation, and apoptosis by MPP+-induced neurotoxicity response through Ca2+ signaling and mitogen-activated protein kinases (MAPK) signaling. Conclusion: Synthetic CaM-NFAT-ODN has substantial therapeutic feasibility for the treatment of neurodegenerative diseases.
This study was designed to investigate the relationships of cations to the polar regeneration of adventitious buds on midvein segments of poplar leaves. Basal regeneration was disturbed by adding $Ca^{2+}$. When higher concentration of exogeneous $Ca^{2+}$ was added to the WPM (Woody Plant Medium), the more adventitious buds were formed on midvein segments, and polar regeneration was inhibited. Added $Ca^{2+}$ from 0 to 9.70 mM with 0.5 mM of EGT A to WPM decreased the calcium effect. The treatment of $La^{3+$ with 7.05 mM of $Ca^{2+}$ ovecame the effect of $Ca^{2+}$. The cations $Mg^{2+}\;and\;K^{+}$ also caused regeneration on both basal and distal site. However, polar regeneration was maintained in the medium containing $Ca^{2+}$ without $Mg^{2+}$. The above result suggests that exogenous $Ca^{2+}$ or cations inhibit polar regeneration of poplar.poplar.
Excessive influx and the subsequent rapid cytosolic elevation of $Ca^{2+}$ in neurons is the major cause to induce hyperexcitability and irreversible cell damage although it is an essential ion for cellular signalings. Therefore, most neurons exhibit several cellular mechanisms to homeostatically regulate cytosolic $Ca^{2+}$ level in normal as well as pathological conditions. Delayed rectifier $K^+$ channels ($I_{DR}$ channels) play a role to suppress membrane excitability by inducing $K^+$ outflow in various conditions, indicating their potential role in preventing pathogenic conditions and cell damage under $Ca^{2+}$-mediated excitotoxic conditions. In the present study, we electrophysiologically evaluated the response of $I_{DR}$ channels to hyperexcitable conditions induced by high $Ca^{2+}$ pretreatment (3.6 mM, for 24 hours) in cultured hippocampal neurons. In results, high $Ca^{2+}$-treatment significantly increased the amplitude of $I_{DR}$ without changes of gating kinetics. Nimodipine but not APV blocked $Ca^{2+}$-induced $I_{DR}$ enhancement, confirming that the change of $I_{DR}$ might be targeted by $Ca^{2+}$ influx through voltage-dependent $Ca^{2+}$ channels (VDCCs) rather than NMDA receptors (NMDARs). The VDCC-mediated $I_{DR}$ enhancement was not affected by either $Ca^{2+}$-induced $Ca^{2+}$ release (CICR) or small conductance $Ca^{2+}$-activated $K^+$ channels (SK channels). Furthermore, PP2 but not H89 completely abolished $I_{DR}$ enhancement under high $Ca^{2+}$ condition, indicating that the activation of Src family tyrosine kinases (SFKs) is required for $Ca^{2+}$-mediated $I_{DR}$ enhancement. Thus, SFKs may be sensitive to excessive $Ca^{2+}$ influx through VDCCs and enhance $I_{DR}$ to activate a neuroprotective mechanism against $Ca^{2+}$-mediated hyperexcitability in neurons.
Objectives: This study was performed to assess the protective effect of Polygonum multiflorum(PM) on UVB-irradiated HaCaT Keratinocytes damage. Methods: The protective effects of Polygonum multiflorum(PM) were determined by UVB-irradiated HaCaT assay. We assessed protective effects of Polygonum multiflorum(PM) on LDH release and nitrite production from HaCaT. COX-2, Bcl-2, Bax, $TNF{\alpha}$, c-jun, c-fos, NF-${\kappa}B$, iNOS, Bcl-xL gene expression were determined in HaCaT using real-time PCR method. Results: 1. PM inhibited LDH Release in UVB-irradiated HaCaT Keratinocytes. 2. PM inhibited Nitrite Production in UVB-irradiated HaCaT Keratinocytes. 3. PM suppressed the Gene Expression of COX-2 in UVB-irradiated HaCaT Keratinocytes. 4. PM increased the Gene Expression of Bcl-2 in UVB-irradiated HaCaT Keratinocytes. 5. PM didn't increase the Gene Expression of Bax in UVB-irradiated HaCaT Keratinocytes. 6. PM suppressed the Gene Expression of $TNF{\alpha}$ in UVB-irradiated HaCaT Keratinocytes. 7. PM suppressed the Gene Expression of c-jun in UVB-irradiated HaCaT Keratinocytes. 8. PM suppressed the Gene Expression of c-fos in UVB-irradiated HaCaT Keratinocytes. 9. PM suppressed the Gene Expression of NF-${\kappa}B$ in UVB-irradiated HaCaT Keratinocytes. 10. PM suppressed the Gene Expression of i-NOS in UVB-irradiated HaCaT Keratinocytes. 11. PM didn't increase the Gene Expression of Bcl-xL in UVB-irradiated HaCaT Keratinocytes Conclusions: In conclusion, these results suggest that PM inhibited the cell damage in UVB-irradiated HaCaT.
For making a high degree of efficiency, this study attempts to gather each arisen-sludge from experiments and examine into its characteristics, in order to compare the biological reason of removing phosphorus with sintered body using calcite and the artificial reason of removing with a chemical reagent. First, it can be seen that sludge, which is identified CaCO$_3$, of 0.1∼0.2$\mu$m is regularly formed when using sintered body, calcite. And it is one of the results of the chemical methods in order to remove phosphorus that can be seen that sludges of 100∼50 $\mu$m are formed and that the forms of Ca$_2$P$_2$O$\_$7/, Ca$_3$(PO$_4$)$_2$$.$nH$_2$O, $\beta$-Ca$_2$P$_2$O$\_$7/ are shown when using a reagent, CaO dissolved water. The other of the results of the chemical methods can be seen that a lumpof sludge is formed when using wastewater and a reagent Ca$^2$$\^$+/ are used, and that the lump consists of Ca$_3$(PO$_4$)$_2$$.$nH$_2$O와 Ca$_2$H$_2$P$_4$O$\_$14/.
Mammalian gastric smooth muscles generate spontaneous rhythmic contractions which are associated with slow oscillatory potentials (slow waves) and spike potentials. Spike potentials are blocked by organic $Ca^{2+}-antagonists,$ indicating that these result from the activation of L-type $Ca^{2+}-channel.$ However, the cellular mechanisms underlying the generation of slow wave remain unclear. Slow waves are insensitive to $Ca^{2+}-antagonists$ but are blocked by metabolic inhibitors or low temperature. Recently it has been suggested that Interstitial Cells of Cajal (ICC) serve as pacemaker cells and a slow wave reflects the coordinated behavior of both ICC and smooth muscle cells. Small segments of circular smooth muscle isolated from antrum of the guinea-pig stomach generated two types of electrical events; irregular small amplitude (1 to 7 mV) of transient depolarization and larger amplitude (20 to 30 mV) of slow depolarization (regenerative potential). Transient depolarization occurred irregularly and membrane depolarization increased their frequency. Regenerative potentials were generated rhythmically and appeared to result from summed transient depolarizations. Spike potentials, sensitive to nifedipine, were generated on the peaks of regenerative potentials. Depolarization of the membrane evoked regenerative potentials with long latencies (1 to 2 s). These potentials had long partial refractory periods (15 to 20 s). They were inhibited by low concentrations of caffeine, perhaps reflecting either depletion of $Ca^{2+}$ from SR or inhibition of InsP3 receptors, by buffering $Ca^{2+}$ to low levels with BAPTA or by depleting $Ca^{2+}$ from SR with CPA. They persisted in the presence of $Ca^{2+}-sensitive$$Cl^--channel$ blockers, niflumic acid and DIDS or $Co^{2+},$ a non selective $Ca^{2+}-channel$ blocker. These results suggest that spontaneous activity of gastric smooth muscle results from $Ca^{2+}$ release from SR, followed by activation of $Ca^{2+}-dependent$ ion channels other than $Cl^-$ channels, with the release of $Ca^{2+}$ from SR being triggered by membrane depolarization.
Regulators of G-protein signaling (RGS) proteins are regulators of $Ca^{2+}$ signaling that accelerate the GTPase activity of the G-protein ${\alpha}$ -subunit. RGS1, RGS2, RGS4, and RGS16 are expressed in the pancreas, and RGS2 regulates G-protein coupled receptor (GPCR)-induced $Ca^{2+}$ oscillations. However, the role of RGS4 in $Ca^{2+}$ signaling in pancreatic acinar cells is unknown. In this study, we investigated the mechanism of GPCR-induced $Ca^{2+}$ signaling in pancreatic acinar cells derived from $RGS4^{-/-}$ mice. $RGS4^{-/-}$ acinar cells showed an enhanced stimulus intensity response to a muscarinic receptor agonist in pancreatic acinar cells. Moreover, deletion of RGS4 increased the frequency of $Ca^{2+}$ oscillations. $RGS4^{-/-}$ cells also showed increased expression of sarco/endoplasmic reticulum $Ca^{2+}$ ATPase type 2. However, there were no significant alterations, such as $Ca^{2+}$ signaling in treated high dose of agonist and its related amylase secretion activity, in acinar cells from $RGS4^{-/-}$ mice. These results indicate that RGS4 protein regulates $Ca^{2+}$ signaling in mouse pancreatic acinar cells.
The effect of Ca2+ on auxin-induced ehtylene production in etiolated mungbean (Vigna radiata W.) hypocotyls was studied. Auxin-induced ethylene production by mungbean seedlings which had been germinated in the presence of 5-10mM Ca2+ (High Ca2+ ; HC) is greater than that by seedlings which had been germinated in distilled water (Low Ca2+ ; LC). The effect of Ca2+ on auxin-induced ethylene production was greatly increased after 12hr of incubation period. The stimulation of auxin-induced ethylene production by Ca2+ was specific, since divalent cations, such as Mg2+ and Mn2+ did not enhance auxin-induced ethylene production. Calcium also promoted ethylene evoluation induced by methionine and 1-Aminocyclopropane-1-carboxylic acid(ACC). The effect of Ca2+ on auxin-induced ethylene production was not caused by increase in free IAA or ACC contents of hypocotyl tissue. Dimethyl sulfoxide and Triton X-100, that disrupts the emembranes, inhibited ethylene production to a greater extent in LC segments than in HC segments. Addition of Ca2+ to the incubation medium for LC segments resulted in enchancement of ethylene production probalby because the membrane integrity is supported under these conditions. Comparison of activity of Ethylene Forming Enzyme(EFE) in LC and HC hypocotyl segments indicated that the enzyme activity of HC was about 2 times higher than that of L.C. It is suggested that Ca2+ increases the activity of plasma membrane-bound EFE through its stabilizing effect onn the membrane, which in turn brings about promotion of ethylene production.
To investigate the effects of protein kinases on endothelin-1-induced phospholipase C activation and $Ca^{2+}$ mobilization in Rat-2 fibroblast, we measured the formation of inositol phosphates and intracellular $Ca^{2+}$ concentration with [$^3$H]inositol and Fura-2/AM, respectively. Endothelin-1 dose-dependently activated phospholipase C and increased intracellular $Ca^{2+}$ concentration. Protein kinase C activator PMA, significantly inhibited both phospholipase C activity and $Ca^{2+}$ mobilization induced by endothelin-1. Tyrosine kinase inhibitor, genistein, inhibited both. On the other hand, cyclic nucleotide (cAMP and cGMP) did not have any influence on the signaling pathway of phospholipase C-Ca$^{2+}$ mobilization induced by endothelin-1. These results suggest that protein kinase C and tyrosine kinase counteract on the signaling pathway of phospholipase C-Ca$^{2+}$ mobilization induced by endothelin-1 in Rat-2 fibroblast. fibroblast.
In the present study, we observed change in intracellular $Ca^{2+}$$([Ca^{2+}]_i)$ as measured with the fluorescent $Ca^{2+}-indicator$ fura-2 in association with force development of the rat basilar arteries during activation by$K^+$ depolarizing solution and U46619, a thromboxane analogue, in the absence and the presence of calcitonin-gent related peptide (CGRP). CGRP (30 and 100 nM) caused a concentration-dependent inhibition of U46619-induced contraction with decrease in $[Ca^{2+}]_i$, whereas it did not exert any effect on the $K^+$ (90 mM)-induced contraction and increase in $[Ca^{2+}]_i$, Further, $[Ca^{2+}]_i-force$ relationships were determined by plotting the ratio of $F_{340}/F_{380}$$([Ca^{2+}]_i)$ as a function of the force induced by U46619, and the results were compared with those obtained in the presence of CGRP. The curves obtained in the presence of CGRP (30 and 100 nM) were significantly moved to downward without right shift of the curves suggesting that CGRP inhibited the U46619-induced contraction only by mediation of reduction in $[Ca^{2+}]_i$ with out any change in the sensitivity of contractile apparatus to $Ca^{2+}$. The CGRP-induced attenuation of $[Ca^{2+}]_i$ and force development was significantly inhibited under pretreatment with CGRP $(8{\sim}37)$ fragment (100 nM), a CGRP1 receptor antagonist. Both the reduced contraction and reduction in $[Ca^{2+}]_i$ caused by CGRP were fully reversed by pretreatment with charybdotoxin (100 nM) and iberiotoxin (100 nM), large conductance $Ca^{2+}-activated$$K^+$ channel blockers, but not by apamin (300 nM), a small conductance $Ca^{2+}-activated$$K^+$ channel blocker, and glibenclamide ( 1 ${\mu}M$), an ATP-sensitive $K^+$ channel blocker. In conclusion, it is suggested that the CGRP1 receptor, upon activation by CGRP, are coupled to opening of $Ca^{2+}-activated$$K^+$ channel and cause to decrease in $[Ca^{2+}]_i$, thereby leading to vasodilation of the rat basilar artery. However, it is not defined that the mechanism underlying vasodilation whether the $K^+$ channel blockers, charybdotoxin and iberiotoxin directly block the CGRP receptors and that CGRP-evoked relaxation is dependent on the cyclic AMP or $K^+$ channel opening or both actions.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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