An isolate of Cucumber mosaic virus (CMV), called as Lag-CMV, was identified from Lagenaria leucantha var. gourda showing mosaic symptom, and its properties was compared to Fny-CMV (subgroup IA) and As-CMV (subgroup IB) by host reaction in several indicator plants, dsRNA analysis, RT-PCR analysis, restriction enzyme profile of the PCR products and nucleotide sequence of coat protein gene. Lag-CMV was similar to As-CMV used as a control CMV by the induced chlorotic spot on inoculated leaves and mosaic symptoms on upper leaves of N. tabacum. cv. Xanthi nc. In the cucumber and zucchini squash, Lag-CMV and As-CMV induced a mild mosaic symptoms than that of Fny-CMV. Size and shapes of local lesions on Chenophodium amaranticolor and Vigna unguiculata induced by Lag-CMV was similar those by Fny-CMV or As-CMV. In experiments of dsRNA profiles and RT-PCR analysis of coat protein gene, Lag-CMV was come within subgroup I CMV. Moreover, restriction enzyme analysis using EcoRI, SalI, MspI, XhoI, and HindIII of the RTPCR products and nucleotide sequence analysis of the coat protein gene showed that Lag-CMV belong to a member of CMV subgroup IB of the same to As-CMV.
Two attenuated Cucumber mosaic virus (CMV) isolates, Paf-CMV and Rs2-CMV that had been selected from CMV isolates associated with satellite RNA (satRNA) were tested for cross-protection effect in pepper plants. The viruses selected as attenuated strains appeared to be identical serologically and physically to the challenge virus (Mf-CMV), but they were lower in the dilution end-point of infectivity of crude sap than Mf-CMV When symptoms were observed in several indicator plants after inoculation, Paf-CMV and Rs2-CMV were symptomless or showed mild mosaic symptoms while another satRNA isolate Ap-CMV developed severe mosaic symptoms on the leaves as Mf-CMV. The nucleotide sequences of the satRNAs were determined by sequencing full-length cDNA clones. Paf-, Rs2- and Ap-satRNAs were 386, 335, and 347 nucleotides long, respectively, The sequences were then compared with the other known Y-satRNA, revealing that nucleotide sequences of the satRNAs consisted of 5'- and 3'-terminal conserved regions. However variations occurred on the middle regions of the sequences, especially those related to symptom interference, showing significant differences between Paf-satRNA and other isolates. Infectious transcripts of Paf-satRNA and Rs2-satRNA induced mild mosaic symptoms in pepper plants when supported by genomic RNAs of Mf-CMV. Under greenhouse conditions, Paf-CMV and Rs2-CMV were tested for cross-protection effect in pepper and tobacco (Nicotiana tabacum cv, Xanthi nc) plants against Mf-CMV. No symptoms were developed on the plants vaccinated with Paf-CMV until 3 weeks after inoculation with the virulent strain; however another attenuated isolate, Rs2-CMV, showed less effectiveness in cross-protection. Depending on the concentration of the challenged virus, symptoms sometimes appeared later in the upper leaves. However, in plants challenged with low concentrations (below 0.2 mg/ml) of the challenge inoculum, symptoms caused by the virulent strain did not develop on the plants vaccinated with Paf-CMV. In the field experiments, the number of pepper plants with severe mosaic symptoms in the control plots was progressively increased after transplanting and reached approximately 50% after 50 days. On the other hand, the incidence of mosaic disease appeared very low on the plants that had received the protective inoculation with Paf-CMV.
An isolate of Cucumber mosaic cucumovirus(CMV) was isolated from Hydrangea macrophylla for. otaksa(Sieb. et Zucc. ) Wils. showing mosaic symptoms, and designated as Hm-CMV. Hm-CMV was characterized by the tests of host range, physical properties, serological properties, RNA and coat protein compositions, and reverse transcription and polymerase chain reaction (RT-PCR) analysis. Twelve species in 4 families were used in the host range test of Hm-CMV and could be differentiated from Y-CMV used as a control CMV by the ringspot and line pattern on inoculated leaves of several tobacco plants. Thevirus produced local lesions on inoculated leaves of Chenopodium amarticolor, C. quinoa and Vigna unguiculata. The physical properties of the virus were as follows; thermal inactivation point(TIP) was 60$\^{C}$, dilution end point (DEP) was 10$\^$-3/, and longevity in vitro (LIP) was 3∼4 days. Hm-CMV was serologically identical to Y-CMV. SDS-polyaciylamide gel electrophoresis(SDS-PAGE) showed one major protein band of about 28 kDa. In RNA or dsRNA analysis, Hm-CMV consisted of four RNA or dsRNA species, but satellite RNA was not detected. In RT-PCR using CMV-common primer and CMV subgroup I-specific primer, bothe amplified expected size of about 490 bp and 200 bp DNA fragments from Hm-CMV, respectively. Restriction enzyme analysis of the 490 bp RT-PCR products using EcoR I and Msp I showed that Hm-CMV belonged to CMV subgroup I. However, Hm-CMV could be differentiated from other CMV subgroup I isolates by RNA fingerprinting by arbitrarily primed polymerase chain reaction (RAP-PCR).
Cucumber mosaic virus (CMV) is one of the most destructive viruses in chilli pepper. An isolate of CMV was obtained from the chilli pepper cv. Chungyang showing top necrosis symptom in 2013 and designated as CMV-GTN. CMV-GTN was compared with the well-characterized isolate, CMV-Ca-P1, by investigating their amino acid sequences of the coat protein (CP) and biological reactions in several host plants. The CP of CMV-Ca-P1 composed of 217 amino acids but that of CMV-GTN composed of 218 amino acids by including additional valine in the $57^{th}$ amino acid position. Amino acid sequence similarity of the CP gene among CMV-GTN and other CMV isolates recorded in the GeneBank database ranged from 96% to 99%. CMV-GTN was selected as a representative isolate to screen the resistance pepper cultivars to CMV because it was highly pathogenic to tomatoes and peppers upon biological assays. The virulence of CMV-GTN was tested on 135 pepper cultivars which has been bred in Korea and compared with that of CMV-Ca-P1. Only the cv. Premium was resistant and three cvs. Hot star, Kaiser, and Good choice were moderately resistant to CMV-GTN, whereas two cvs. Baerotta and Kaiser were resistant to CMV-Ca-P1.
An isolate of Cucumber mosaic virus (CMV), PaFMl-CMV causing malformation on the fruit of paprika (Capsicum annuum var, grossum) was characterized based on biological reactions, serological relationships, and partial nucleotide sequence analyses. PaFMl-CMV was distinguishable from other isolates of CMYI Mf-(subgroup I) and LS-CMV (subgroup II), in terms of its reactions to some host plants. Polyclonal antibody against PaFMl-CMV showed homologous antigenic relationship with LS-CMV, however, the antibody formed a spur between PaFMl- and Mf-CMV, In the comparison of molecular size of dsRNAs of PaFMl-CMV with Mf- and LS-CMV, PaFMl-CMV had a slightly smaller RNAl and larger RNA2, RNA3, and RNA4. When the CDNA product of PaFMl-CMV coat protein (CP) gene was digested with some restriction enzymes, the fragment pattern was identical with that of LS-CMV The nucleotide and amino acid sequences of PaFMl-CMV CP gene were 99.5% and 98.6% identical with LS-CMV respectively. The data indicate that PaFMl-CMV belongs to subgroup II of CMV, which is the first report in Korea.
Reverse transcription and polymerase chain reaction (RT-PCR) techiniques were used to identification and differentiation of cucumber mosaic virus isolated from Forsythia koreana (CMV-Fk). RT-PCT used by two set of 20-mer primers one was CMV-common primers and another was CMV subgroup I-specific primers designed in a conserved region of the 3' end of CMV RNA3, amplified about 490 bp and 200 bp DNA fragments from CMV-Fk, respectively. CMV could be detected by RT-PCR at a dilution as low as 10-4 in forsythia crude sap extracts. Restriction enzyme analysis of RT-PCR products using EcoRI and MspI showed that CMV-Fk belonged to CMV subgroup I. But, analysis of RNA fingerprinting by arbitrarily primed polymerase chain reaction (RAP-PCR) showed heterogeneity of RNA3 between CMV-Fk and CMV-Y as a member of subgroup I.
Proceedings of the Korean Society of Plant Pathology Conference
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2003.10a
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pp.149.1-149
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2003
A lily strain of Cucumber mosaic virus (LK-CMV) was not able to systemically infect zucchini squash (Cucurbita pepo), while Fny strain of CMV (Fny-CMV) caused systemic mosaic and stunting symptom at 4 days post-inoculation on the same host species. The pathogenicity of LK-CMV in zucchini squash was investigated by reassortments of genomic RNAs of LK-CMV and Fny-CMV for infection, as well as by pseudorecombinants generated from biologically active transcripts of CDNA clones of LK-CMV and Fny-CMV, respectively. The assessments of pathogenicity for LK-CMV indicated that RNA2 of LK-CMV was responsible for systemic infection in zucchini squash. In the protoplast of zucchini squash, the RNA accumulations of all constructed pseudorecombinants were indistinguishable and LK-CMV replication was slightly lower than that of Fny-CMV, suggesting that the inability of LK-CMV to infect squash plants was responsible for the poor efficiency of virus movement, rather than the reduction of replication function.
Three isolates of Cucumber mosaic virus isolated from Commelina communis plants showing chlorosis and mosaic were collected in Chungju and Chuncheon, Korea. To confirm genetic variation of these three isolates (CMV-Co, CMV-Co2, and CMV-Co3), we performed PCR-RFLP and sequence analysis. Sequences of coat protein genes of CMV-C0, -Co2 and -Co3 were compared with CMV-Fny and showed 96.3%, 96.3%, and 95.9% similarities, respectively. In host reactions, three CMV-Co isolates induced systemic necrosis in Cucurbita pepo unlike CMV-Fny and CMV-Co, CMV-Co2 and CMV-Co3 observed differential symptoms responses in Physalis angulata and Nicotiana rustica. These results indicated that three isolates of CMV isolated from C. communis have genetic and biological variation.
An isolate of Cucumber mosaic virus (CMV), designated as Cas-CMV, was isolated from Chinese aster (Callistephus chinensis) showing severe mosaic symptom, and its properties was compared to the well-characterized Fny-CMV (subgroup IA) and As-CMV (subgroup IB) by host reaction in several indicator plants, dsRNA analysis, RT-PCR analysis, and restriction enzyme profile of the PCR products. Cas-CMV differed markedly in their host reaction to Fny-CMV or As-CMV in Cucurbita pepo cv. Black beauty. In the zucchini squash, all strains induced chlorotic spot on inoculated leaves and mosaic symptoms on upper leaves. However, symptoms induced by Cas-CMV were developed lethal necrosis on the young plants 15 to 20 days after inoculation. In experiments of dsRNA analysis and RT-PCR analysis, properties of Cas-CMV was come within subgroup I CMV. Moreover, restriction enzyme analysis using HindIII of the RT-PCR products showed that Cas-CMV belong to a member of CMV subgroup IA.
An isolate of Cucumber mosaic virus(CMV), called as Can-CMV, was originally isolated from Canna generalis showing typical streak mosaic foliar symptoms, and its properties were investigated in this study. Whereas all known isolates of CMV could induce symptoms on their systemic hosts(four kinds of Nicotiana spp and a zucchini squash), Can-CMV induced no symptoms on its systemic hosts tested. Replication and movement of the virus on upper leaves as well as inoculated leaves-were confirmed by RT-PCR suggesting that Can-CMV could only infect systemically on N. benthamiana and N. glutinosa. Size of local lesions on the Can-CMV-inoculated leaves of Chenopodium amaranticolor was much smaller than that of Fny-CMV. Whereas Fny-CMV and LS-CMV could induce distinct necrotic local lesions on Vigna unguiculata 2 to 3 days postinoculation(dpi), chlorotic spots symptom was expressed by Can-CMV 4 to 5 dpi. Virus-specific 4 kinds of dsRNAs were isolated from leaves of N. benthamiana infected with Can-CMV, and these dsRNAs corresponded to the viral genomic RNAs and subgenomic RNAs and their patterns were indistinguishable to those of Fny-CMV and LS-CMV. By restriction mapping analysis of 950 bp of RT-PCR amplified products of coat protein gene of the virus as well as by serological analysis of gel diffusion test, Can-CMV belongs to a typical member of CMV subgroup IA. These results suggest that the Can-CMV isolated from C. generalis possesses unique pathological properties to understand further insight into the various interactions between virus and host.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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