The present study was designed to investigate the effects of Stachys Sieboldii MIQ as a new natural antitumor agent or immunomodulator. To obtain the above objectives, Stachys sieboldii MIQ was extracted with ethanol. Stachys sieboldii MIQ accelerated mouse spleen cell growth, but inhibited FM3A/S°-cell growth. However, no significant difference was found for CD4+ / CD8+ cells. The growth rates of CD4+ and CD8+ T cells were accelerated more than those normal mouse group. Stachys sieboldii MIQ fed mice showed a significant enhancement of IL-2 receptor expression, increased numbers of CD4+ T cells, and CD8+ T cells. Stachys sieboldii MIQ also stimulated the production of NO by peritoneal macrophages and the production of NO by and the growth of mouse spleen cells. On the other hand, lung localization of Bl6Fl0 melanoma cells was inhibited by ethanol extract of Stachys sieboldii MIQ. These results show that Stachys sieboldii MIQ is a useful new functional antitumor agent or immunomodulator.
We fed high trypotophan diet(3.5% tryptophan/diet(w/w) to mice for 7 days and treated then with 3 hour immobilization(IMMB) stress to investigate tryptophan metabolism and immunomodulation. The levels of serum tryptophan, brain tryptophan, serotonin(5HT) and 5-hydroxyindoleacetic acid(5HIAA) in the tryptophan diet fed animals were higher than those of the normal diet fed animals. Feeding tryptophan supplemented diet to stressed animal significantly decreased the levels of serum and brain tryptophan and 5HT levels. However, the amount of 5HIAA which is the metabolite of serotonin was increased in brain. Plasma corticosterone level was increased by the stress in both groups but the degree of this increase was smaller in high tryptophan fed animals. The relative numbers of CD8+ T cells, CD4+ T cells and B cells in spleen were decreased in high tryptophan diet fed and stressed animals compared to control diet fed and no stressed animals. CD8+ T cells decreased more than CD4+ T cells. The decrease of CD8+ T cells in high tryptophan fed and stressed animals was similar to that in high tryptophan fed animals or normal diet fed and stressed animals. Stress and tryptophan supplement acted synergistically to decrease the number of B cells. This study suggests that stress and tryptophan supplement could modify the number of lymphocyte cells, and indicates that the interaction of stress and tryptophan supplement on immune fuction depends on the types of immune cells.
Background: CD30 is a member of TNF receptor family and expressed on lymphocytes and other hematopoietic cells following activation as well as Hodgkin and Reed-Sternberg cells in Hodgkin's lymphoma. In this study, CD30-mediated regulation of cell adhesion molecule expression on normal activated mouse T cells was investigated. Methods: Mouse T cells were activated with anti-CD3 antibody for induction of CD30, which was cross-linked by immobilized anti-CD30 antibody. Results: High level of CD30 expression on T cells was observed on day 5, but only little on day 3 even under culture condition resulting in an identical T cell proliferation, indicating that CD30 expression requires a prolonged stimulation up to 5 days. Cross-linking of CD30 alone altered neither proliferation nor apoptosis of normal activated T cells. Instead, CD30 appeared to promote cell adherence to culture substrate, and considerably upregulated ICAM-1 and, to a lesser extent, ICAM-2 expression on activated T cells, whereas CD2 and CD18 (LFA-1) expression was not affected. None of cytokines known as main regulators of ICAM-1 expression on tissue cells (IL 4, $IFN{\gamma}$ and $IFN{\alpha}$) enhanced ICAM-1 expression in the absence of CD30 signals. On the other hand, addition of $NF-{\kappa}B$ inhibitor, PDTC (0.1 mM) completely abrogated the CD30-mediated upregulation of ICAM-1 expression, but not CD2 and ICAM-2 expression. Conclusion: This results support that CD30 upregulates ICAM-1 expression of T cell and such regulation is not mediated by higher cytokine production but $NF-{\kappa}B$ activation. Therefore, CD30 may play important roles in T-T or T-B cell interaction through regulation of ICAM-1, and -2 expression.
Han, Young-Woo;Aleyas, Abi G.;George, Junu A.;Yoon, Hyun-A;Lee, John-Hwa;Kim, Byung-Sam;Eo, Seong-Kug
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제17권12호
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pp.1955-1964
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2007
A recent report showed that analysis of CD154 expression in the presence of the secretion inhibitor Brefeldin A (Bref A) could be used to assess the entire repertoire of antigen-specific $CD4^+\;T$ helper cells. However, the capacity of intracellular CD154 expression to identify antigen-specific $CD8^+\;T$ cells has yet to be investigated. In this study, we compared the ability of intracellular CD154 expression to assess antigen-specific $CD8^+\;T$ cells with that of accepted standard assays, namely intracellular cytokine IFN-${\gamma}$ staining (ICS) and MHC class I tetramer staining. The detection of intracellular CD154 molecules in the presence of Bref A reflected the kinetic trend of antigen-specific $CD8^+\;T$ cell number, but unfortunately showed less sensitivity than ICS and tetramer staining. However, ICS levels peaked and saturated 8 h after antigenic stimulation in the presence of Bref A and then declined, whereas intracellular CD154 expression peaked by 8 h and maintained the saturated level up to 24 h post-stimulation. Moreover, intracellular CD154 expression in antigen-specific $CD8^+\;T$ cells developed in the absence of $CD4^+\;T$ cells changed little, whereas the number of IFN-${\gamma}$-producing $CD8^+\;T$ cells decreased abruptly. These results suggest that intracellular CD154 could aid the assessment of antigen-specific $CD8^+\;T$ cells, but does not have as much ability to identify heterogeneous $CD4^+\;T$ helper cells. Therefore, the combined analytical techniques of ICS and tetramer staining together with intracellular CD154 assays may be able to provide useful information on the accurate phenotype and functionality of antigen-specific $CD8^+\;T$ cells.
Aim: Brain tumors almost universally have fatal outcomes; new therapeutics are desperately needed and will only come from improved understandins of glioma biology. Methods: Exosomes are endosomally derived 30~100 nm membranous vesicles released from many cell types. Examples from GL26 cells were here purified using density gradient ultracentrifugation and monitored for effects on GL26 tumor growth in C57BL/6j mice (H-2b). Lactate dehydrogenase release assays were used to detect the cytotoxic activity of CD8+T and NK cells. Percentages of immune cells producing intracellular cytokines were analyzed by FACS. Results: In this study, exosomes from murine-derived GL26 cells significantly promoted in vivo tumor growth in GL26-bearing B6 mice. Then we further analyzed the effects of the GL26 cells-derived exosomes on immune cells including CD8+T, CD4+T and NK cells. Inhibition of CD8+T cell cytotoxic activity was demonstrated by CD8+T cell depletion assays in vivo and LDH release assays in vitro. The treatment of mice with exosomes also led to a reduction in the percentages of CD8+T cells in splenocytes as determined by FACS analysis. Key features of CD8+T cell activity were inhibited, including release of IFN-gamma and granzyme B. There were no effects of exosomes on CD4+T cells and NK cells. Conclusion: Based on our data, for the first time we demonstrated that exosomes from murine derived GL26 cells promote the tumor growth by inhibition of CD8+T cells in vivo and thus may be a potential therapeutic target.
Background: $CD4^+Fop3^+$ regulatory T cells (Tregs) are needed to maintain peripheral tolerance, but their role in the development of autoimmune arthritis is still debated. The present study was undertaken to investigate the mechanism by which Tregs influence autoimmune arthritis, using a mouse model entitled K/BxN. Methods: We generated Treg-deficient K/BxNsf mice by congenically crossing K/BxN mice with Foxp3 mutant scurfy mice. The arthritic symptoms of the mice were clinically and histopathologically examined. The proportions and activation of $CD4^+$ T cells and/or dendritic cells were assessed in the spleens, draining lymph nodes and synovial tissue of these mice. Results: K/BxNsf mice exhibited earlier onset and more aggressive progression of arthritis than their K/BxN littermates. In particular, bone destruction associated with the influx of numerous RANKL+ cells into synovia was very prominent. They also contained more memory phenotype $CD4^+$ T cells, more Th1 and Th2 cells, and fewer Th17 cells than their control counterparts. Plasmacytoid dendritic cells expressing high levels of CD86 and CD40 were elevated in the K/BxNsf synovia. Conclusion: We conclude that Tregs oppose the progression of arthritis by inhibiting the development of $RANKL^+$ cells, homeostatically proliferating $CD4^+$ T cells, Th1, Th2 and mature plasmacytoid dendritic cells, and by inhibiting their influx into joints.
Background: Cancer-associated fibroblasts (CAFs) are key components of the tumor microenvironment and significantly contribute to immune evasion. We investigated the effects of CAFs on the immune function of CD4+ and CD8+ T cells in non-small cell lung cancer (NSCLC). Methods: We isolated CAFs and normal fibroblasts (NFs) from tumors and normal lung tissues of NSCLC patients, respectively. CAFs were co-cultured with activated T cells to evaluate their immune regulatory function. We investigated the effect of CAF conditioned medium (CAF-CM) on the cytotoxicity of T cells. CAFs were also co-cultured with activated peripheral blood mononuclear cells and further incubated with cyclooxygenase-2 (COX2) inhibitors to investigate the potential role of COX2 in immune evasion. Results: CAFs and NFs were isolated from the lung tissues (n=8) and lymph nodes (n=3) of NSCLC patients. Immune suppressive markers, such as COX2 and programmed death-ligand 1 (PD-L1), were increased in CAFs after co-culture with activated T cells. Interestingly, CAFs promoted the expression of programmed death-1 in CD4+ and CD8+ T cells, and strongly inhibited T cell proliferation in allogenic and autologous pairs of CAFs and T cells. CAF-CM decreased the cytotoxicity of T cells. COX2 inhibitors partially restored the proliferation of CD4+ and CD8+ T cells, and downregulated the expression of COX2, prostaglandin E synthase, prostaglandin E2, and PD-L1 in CAFs. Conclusion: CAFs promote immune evasion by suppressing the function of CD4+ and CD8+ T cells via their effects on COX2 and PD-L1 in NSCLC. The immunosuppressive function of CAFs could be alleviated by COX2 inhibitors.
The unrestricted population of $CD4^+Foxp3^+$ regulatory T (Treg) cells, which have been known to control the expression of autoimmune diseases and protective immunity to inflammatory reactions, has led to greater appreciation of functional plasticity. Detecting and/or isolating Ag-specific $CD4^+Foxp3^+$ Tregs at the single cell level are required to study their function and plasticity. In this study, we established and compared both MHC class II tetramer and intracellular CD154 staining, in order to detect $CD4^+Foxp3^+$ Treg specific for foreign Ag in acute and chronic infections with lymphocytic choriomeningitis virus (LCMV). Our results revealed that MHC class II tetramer staining showed a lower detection rate of LCMV $GP_{66-77}$-specific $CD4^+$ T cells because most of MHC class II tetramers were unbound and unstable when combined staining was performed with intracellular cytokines. In contrast, intracellular CD154 staining was revealed to be easier and simple for detecting LCMV $GP_{66-77}$-specific $CD4^+$ T cells, compared to MHC class II tetramer staining. Subsequently, we employed intracellular CD154 staining to detect LCMV $GP_{66-77}$-specific $CD4^+Foxp3^+$ Tregs using $Foxp3^{GFP}$ knock-in mouse, and found that LCMV $GP_{66-77}$-specific $CD4^+Foxp3^+$ Tregs and polyclonal $CD4^+Foxp3^+$ Tregs showed differential expansion in mice infected with LCMV Arms or Cl13 at acute (8 and 13 days pi) and chronic phases (35 days pi). Therefore, our results provide insight into the valuable use of intracellular CD154 staining to detect and characterize foreign Ag-specific $CD4^+Foxp3^+$ Treg in various models.
4-1BB (CD137), a member of the tumor necrosis factor receptor superfamily, is expressed on activated T-cells, and 4-1BB signaling due to interaction with 4-1BB ligand or ligation with anti-4-1BB monoclonal antibody (mAb) costimulates T cells. It has been shown that administration of anti-4-1BB mAb induces anti-tumor immunity in mice, but the nature of the cellular subsets responsible for this immunity is uncertain. In this study we found that anti-4-1BB mAb administration to B16F10 melanoma-bearing mice induced marked expansion of $CD11c^+CD8^+$ T-cells in parallel with suppression of pulmonary tumors. The mAb-treated mice produced higher levels of $IFN-{\gamma}$ in their tumor tissues, spleen and lymph nodes than mice exposed to control antibody. When the $CD11c^+CD8^+$ T-cells were purified and re-stimulated in vitro, they produced high levels of the Th1 cytokines, $IFN-{\gamma}$ and IL-2, but low levels of the Th2 cytokines, IL-4 and IL-10. Furthermore, they expressed high levels of 4-1BB and CD107a, a marker of activated cytotoxic T-lymphocytes. Our results suggest that $CD11c^+CD8^+$ T-cells play a role in the anti-tumor immunity induced by anti-4-1BB mAb.
Background: Identification of antigen-specific T cells has yielded valuable information on pathologic process and the disease state. Assays for quantification of inflammatory cytokines or lytic-granule molecules have been generally used to evaluate antigen specific T cell response, however their applicability have been hampered due to the limited source of autologous antigen-presenting target cells (APC). Methods: K562, a leukemic cell line deficient of human leukocyte antigen (HLA), was transfected with a gene encoding HLA-A*02 (K562/ A*02) and its function as stimulator cells in inducing activation of HLA-matched T cells was evaluated by IFN-${\gamma}$ enzyme linked immunospot (ELISPOT) assay. Results: The stable transfectant K562/ A*02 pulsed with HLA- A*02 restricted peptide could specifically induce IFN-${\gamma}$ secretion by CD8+ T cells compared to no detectable secretion by CD4+ T cells. However, CD56+ NK cells secreted IFN-${\gamma}$ in both K562/ A*02 with peptide and without peptide. The number of IFN-${\gamma}$ secreted CD8+ T cells was increased according to the ratio of T cells to K562 and peptide concentration. Formalin-fixed K562/ A*02 showed similar antigen presenting function to live K562/ A*02. Moreover, K562/ A*02 could present antigenicpeptide to not only A*0201 restricted CD8+ T cells but also CD8+ T cells from A*0206 donor. Conclusion: These results suggest that K562/ A*02 could be generally used as target having specificity and negligible background for measuring CD8+ T cell responses and selective use of K562 with responsder matched HLA molecules on its surface as APC may circumvent the limitation of providing HLA-matched autologous target cells.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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