To develop cellulase and xylanase-producing strain by protoplast fusion, alkalophilic Bacillus sp. F204 and K17 were treated with NTG(N-methyl-N'-nitro-N-nitrosoguanidine) and isolated anti-biotics resistant strains of S20 (Km$^r$ , Cm$^r$) and G70 (Str$^r$). The frequency of protoplast formation was about 95% when cells of mid-log phase were treated with 200$\mu\textrm{g}$/ml Iysozyme at 37$^{\circ}C$ for 30-45 minutes. Under addition of 0.4-0.5M sodium succinate, 0.5% casamino acid, 1.5% polyvinylpyrrolidone, 25mM MgC1$_2$ and 50mM CaC1$_2$ to the regeneration medium, the regeneration frequency of Bacillus sp. F204 and K17 was 24.9% and 26.2%, respectively. The fusion frequency was 6.6$\times$10$^{-6}$ in the presence of 30% polyethylene glycol 6000 containing 50mM $Ca^{++}$ at 45$^{\circ}C$ for 5 minutes. Cellulase complex and xylanase activities of fusant were compared with parental strains.
We present microfluidic method to rapidly analyze the effect of temperature on the change of morphologies of Antarctic bacteria (Pseudoalteromonas sp., Shewanella vesiculosa, Shewanella sp., and Cellulophaga sp.). The microfluidic device is able to generate stable temperature gradient from 7 to$40^{\circ}C$ and dramatically reduce the number of experiments, experimental cost and labor, and amount of sample. Based on this approach, we found that specific bacteria transforming morphology into filament or elongated body strongly depends on cultivation temperature. Interestingly, we found that the morphologies of Pseudoalteromonas sp., Shewanella vesiculosa, Shewanella sp., and Cellulophaga sp. are elongated at below $25^{\circ}C$, above $20^{\circ}C$, above $15^{\circ}C$ and above $35^{\circ}C$, respectively. We envision the microfluidic device is a useful approach to analyze biological events with a high throughput manner.
A bacterial strain, which showed the high protease activity at low temperature and the high tolerance for the surfactant, was isolated from soil and identified as Xanthomonas sp. YL-37. The optimal temperature, initial pH, and cultivation time for the production of the alkaline protease by Xanthomonas sp. YL-37 were 20$\circC , 11.0, and 84 hours, respectively. In the jar fermenter culture of Xanthomonas sp. YL-37, the alkaline protease activity was about 15,000 DU/ml/-broth after cultivating for 108 hours. The optimal pH and temperature for the protease activity were 70$\circC and 11.0, respectively. The protease was relatively stable at the pH range of 7.0~12.0 and at the temperatures below 50$\circC . The protease activity at 20$\circC was about the level of 40% of its activity at 70$\circC . The enzyme was suggested as a serine protease because the enzyme activity was inhibited by phenylmethane sulfonyl fluoride, a serine modifier.
Microbial organisms including yeast, Acinetobacter sp. AG-3, Chlorococcum sp., Chlorella sp. and some of their combinations were tested to evaluate growth efficiency of Tigriopus japonicus. Body length and weight of the copepoda were measured during four days experiment. Acinetobacter sp. AG-3, dried yeast(produced Wago), Chlorella sp., Chlorococcum sp. and mixed culture were used as food sources. Yeast(Y.) was the most effective food for the growth during nauplius stage and efficiencies of bacteria(Bact.)+chlorococcum sp.(RA), Chlorococcum sp.(RA), Bact.+chlorella sp.(Ch.), Bact. and Ch. decreased in odor, while for the growth of copepodite and adult, Bact.+RA was the most effective food with decreased efficiency of Y., RA, Bact. + Ch., Bact., Ch. in order. The ratio of weight gain to the food uptaken, after the weight and food units were converted to carbon, was between 21.6 and $68.7\%$, This result suggests that some kinds of bacteria, algae and mixed cultural microorganisms could be good food sources for the growth of copepoda.
The characteristics of enzyme and gene for mannanase B had been reported from Cellulosimicrobium sp. YB-43 producing some kind of mannanase. A gene coding for the enzyme, named mannanase C (ManC), was expected to be located downstream of the manB gene. The manC gene was cloned by polymerase chain reaction and sequenced completely. From this nucleotide sequence, ManC was identified to consist of 448 amino residues and contain a carbohydrate binding domain CBM2 besides a catalytic domain, which was homologous to mannanase belonging to the glycosyl hydrolase family 5. The catalytic domain of ManC showed the highest amino acid sequence similarity of 55% with the mannanases from Streptomyces sp. SirexAA-E (55.8%; 4FK9_A) and S. thermoluteus (57.6%; BAM62868). The His-tagged ManC (HtManC) lacking N-terminal signal peptide with hexahistidine at C-terminus was produced and purified from cell extract of recombinant Escherichia coli. The purified HtManC showed maximal activity at $65^{\circ}C$ and pH 7.5, with no significant change in its activity at pH range from 7.5 to 10. HtManC showed more active on konjac and locust bean gum (LBG) than guar gum and ivory nut mannan (ivory nut). Vmax and Km values of the HtManC for LBG were 68 U/mg and 0.45 mg/ml on the optimal condition, respectively. Mannobiose and mannotriose were observed on TLC as major products resulting from the HtManC hydrolysis of mannooligosacharides. In addition, mannobiose and mannose were commonly detected as the hydrolyzed products of LBG, konjac and ivory nut.
Microorganisms producing bioemulslfiler were isolated from the sea water In Pusan coastal area. The isolated strain which had the highest emulsification activity and stability was identified as the genus Achetobacter from the results of morphological. cultural and biochemical tests and named Achetobacter sp. EL-C6 for convenience. The compositions of optimum medium for emulsification of crude oil by Acinetobacter sp. EL-C6 were crude oil 2.0%, NH4NO3 0.2%, $K_2HPO_4$ 0.01%, $MgSO_4$.$7H_2O$ 1.o%, $CaCl_2$.$2H_2O$ 0.1% and NaCl 3.0% at initial pH 7.5 and 3$0^{\circ}C$, respectively. The cultivation for emulsification of crude ell was carried out in 500m1 shaking flask containing 100m1 of the optimum medium at 3$0^{\circ}C$. The highest emulsification was observed after 5 days. The utilization on the various hydrocarbon of the Achetobacter sp. EL-C6 showed that utilization of n-alkane compounds were better than that of aromatic compounds. Among the petroleum compounds, crude ell was best utilized by the Achetobacter sp. EL-C6.
Mycobacterium sp. strain JCl DSM 3803 grown in methanol showed no methanol dehydrogenase or oxidase activities found in mast methylotrophic bacteria and yeasts, respectively. Even though the methanol-grown cells exhibited a little methanol-dependent oxidation by cytochrome c-dependent methanol dehydrogenase and alcohol dehydrogenase, they were not the key enzymes responsible for the methanol oxidation of the cells, in that the cells contained no c-type cytochrome and the methanol oxidizing activity from the partially purified alcohol dehydrogenase was too low, respectively. In substrate switching experiments, we found that only a catalase-peroxidase among the three types of catalase found in glucose-grown cells was highly expressed, in the methanol-grown cells and that its activity was relatively high during the exponential growth phase in Mycobacterium sp. JCl. Therefore, we propose that catalase-peroxidase is an essential enzyme responsible for the methanol metabolism directly Of indirectly in Mycobacterium sp. JCl.
A strain of alkalophilic Bacillus sp. C-21 has been Isolated from sold. The strain was capable of producing large amount of cyclodextrin glycosyltransferase (CGTase) in the high alkaline pH medium. The preferable medium composition was determined to be as follows : 1.0% soluble starch, 1.0% peptone, 0.5% yeast extract, 0.1% K2HP04, 0.02% MgSO4.7H2O and 1.0% Na2CO3(pH 10.0) The highest enzyme production was observed after 30hours of cultivation at 33$^{\circ}C$. The optimum temperature and pH for the activity of crude enzyme were 6$0^{\circ}C$ and 6.0, respectively. The enzyme was stable between pH 6.0 and 9.6, and up to 55$^{\circ}C$.
The cytotoxic metabolites, against the KB cell line, halenaquinone, epispongiatriol and aldisin were isolated from the sponge Spongia sp. collected in September 1992, Manado Bay, Sulawesi in Indonesia. Their structures were elucidated by 1H, 13C NMR, 1H 13C(1 bond) Heteronuclear Multiple Quantum Coherence Spectroscopy (HMQC), 1H 13C(2 and 3 bond) Heteronuclear Multiple Bond Correlation Spectroscopy (HMBC), Electron Impact Mass Spectroscopy (EI ms) and Infrared Spectroscopy (IR).
Seo, Dong-In;Lim, Jai-Yun;Kim, Young-Chang;Min, Kyung-Hee;Kim, Chi-Kyung
Journal of Microbiology
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v.35
no.3
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pp.188-192
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1997
The strain of S-47 degrading 4-chlorobenzoic acid (4CBA) was isolated from Ulsan chemical industrial complex by enrichment cultivation with 1 mM 4CBA. The strain was Gram-negative rod and grew optimally at 30.deg.C and pH 7 under aerobic condition, so that the organism was identified as a species of Pseudomonas. Pseudomonas sp. S-47 degraded 4-chlorobenzoic acid to produce a yellow-colored meta-cleavage product, which was confirmed to be 5-chloro-2-hydroxymuconic semialdehyde (5C-2HMS) by UV-visible spectrophotometry. 5C-3HMS was proved trometry. This means that Pseudomonas sp. S-47 degraded 4CBA via 4-chlorocatechol to 5C-2HMS by meta-cleavage reaction and then to 5C-2HMA by 5C-2HMS dehydrogenase.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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