The Journal of the Korean Society for Microbiology
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v.15
no.1
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pp.63-69
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1980
The effects of intravenous administration of of C. parvum on immune cells in mice were investigated. Significant delayed type hypersensitivity parvum was given intravenously before antigen sensitization. The depressed effect of C. parvum was completely abolished by treatment of cyclophosphamide. However, delayed type hypersensitivity was not depressed when C. parvum given after antigen. This depression is considered to be attributable to the generation of suppressor cells which were either suppressor T cell or C. parvum activated macrophage, because C. parvum inhibited the proliferation of S. typhimurium in vivo and also induced splenomegaly and hepatomegaly, known as manifestation of macrophage activation. Serum antibody titers were not significantly affected by C. parvum regardless of time of C. parvum administration.
The Journal of the Korean Society for Microbiology
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v.18
no.1
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pp.91-98
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1983
The effect of subcutanecus injection of Corynebacterium parvum($700{\mu}g$) on cellular and humoral immune responses when given at various time relative to sheep red blood cell(SRBC) sensitization were studied by the evaluation of Arthus, delayed-type hypersensitivity(DTH), rosette forming cell, hemagglutinin and hemolysin reactions. Arthus reactivity(3 hours) developed in control mice and test mice pretreated with C. parvum 8 days prior to intravenous sensitization with SRBC were similar. However, there was slight depression of reactivity when C. parvum was given subcutaneoutly(s.c.) 4 or 2 days prior to SRBC sensitization. Arthus reactivity was significantly depressed when C. parvum was given s.c. either at the same time as, or 2 days later than, antigen. DTH reaction was net depressed significantly when C. parvum was injected 8 or 2 days prior to SRBC sensitization or at the same time as antigen. In contrast DTH was significantly augmented when C. parvum given s.c. 4 days prier to SRBC sensitization. DTH was depressed when C. parvum was given s.c. 2 days after antigen. No significant change occurred in rosette forming percetages of spleen cell when C. parvum was given s.c. 8, 4 or 2 days before SRBC sensitization. In contrast, a significant reduction in percentages of rosette forming cell occurred when C. parvum was given s.c. either at the same time as, or 2 days later than, antigen. Serum hemaggulutinin and hemolysin titers were not significantly affected by subcutaneous injection of C. parvum regardless of time relative to SRBC sensitization. However, mercaptoethanol-resistant hemaggulutinin and hemolysin(IgG) titers were somewhat augmented when C. parvum was given 2 days after antigen. It is concluded from these results that depending on the time and route of inoculation, C. parvum can enhance or depress immune responses in mice, suggesting the time and route of C. parvum inoculation is an important point of concern about clinical use of C. parvum for the treatment of cancer.
Eighty of Sarcoma 180 bearing mice, averaging 30 gm of body weight, were divided into eight groups of animals receiving Saline as the control, Corynebacterium parvum, Tubercin-3 and Cyclophosphamide alone and Cyclophosphamide combined with C. parvum, with Tubercin-3 and with both C. parvum and Tubercin-3 and Tubercin-3 combined with C. parvum respectively. Treatment was initiated 4.8 hours after tumor implantation and repeated three times once a day. Doses were suspended or dissolved in 0.2 ml of Saline: 1.4 mg of C. parvum: 0.5 micrograms of Tubercin-3; and 2.7 mg of Cyclophosphamide either in alone or in combination. All the agents given were administered subcutaneously but Cyclophosphamide was given intraperitoneally. The observation on the general conditions of animal took place twice a day following the treatment until the time of death after tumor implantation was determined. Average survival days in each group were as follows: In Control, Saline (11.2 days), C. parvum (14.8 days), Tubercin-3 (16.7 days), Cyclophosphamide(18.7 days). In combination therapy, Cyclophosphamide with C. parvum(22.8 days) with Tubercin-3 (26.9 days). Cyclophosphamide with both C. parvum an Tubercin-3, however, was somewhat longer than in Cyclophosphamide alone but shorter than in combined with either one of C. parvum or Tubercin-3. Finally, in combination with immunotherapeutic agents, Tubercin-3 and C. parvum each other it (8.2 days) was shorter even than Control. Life span of host is, in generally, inversely related to the number of malignant cells and conclusively, the therapeutic potentiation was reflected to be extended survival in combined treatment of a chemotherapeutic Cyclophosphamide with either one of immunotherapeutics, Tubercin-3 or C. parvum. Tubercin-3 and C. parvum in combination, however, appeared to be antagonistic each other.
Seungmin, Ha;Seogjin, Kang;Kwang-Man, Park;Ji-Yeong, Ku;Kyoung-Seong, Choi;Jinho, Park
Journal of Veterinary Science
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v.23
no.6
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pp.85.1-85.11
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2022
Background: Neonatal calf diarrhea is a major problem in the cattle industry worldwide. Rotavirus and Cryptosporidium parvum are the primary causative agents, especially during the first three weeks of the calf's life. Objectives: This study investigated the differences in acid-base, electrolytes, and biochemical parameters of diarrheic calves with infection of either rotavirus or C. parvum. Methods: A total of 61 Korean native calves (≤ 20 days old) were divided into two groups based on rotavirus or C. parvum infections: rotavirus infection (n = 44) and C. parvum infection (n = 17). The calves with at a specific blood pH range (pH 6.92-7.25) were chosen for comparison. The acid-base, electrolyte, chemistry, and serum proteins were analyzed, Further, fecal examinations were performed. Results: Compared to C. parvum-infected calves, the rotavirus-infected calves showed lower levels of total carbon dioxide, bicarbonate (HCO3-), anion gap, total protein, and albumin/globulin ratio, and significantly lower levels of potassium, globulin, and α2-globulin (p < 0.05). The C. parvum-infected calves (r = 0.749) had stronger correlations between pH and HCO3- than the rotavirus-infected calves (r = 0.598). Compared to rotavirus-infected calves, strong correlations between globulin and α2-globulin, α2-globulin and haptoglobin were identified in C. parvum-infected calves. Conclusions: This study is the first to investigate acid-base, electrolyte, and biochemical parameters in calves in response to infections of rotavirus and C. parvum. Although rotavirus and C. parvum cause malabsorptive and secretory diarrhea in similar-aged calves, blood parameters were different. This would help establish the diagnostic and treatment strategies.
We investigate the resistance of Cryptosporidium (C.) parvum oocysts to commercial bleach treatment. The viability and infectivity of C. parvum oocysts suspended in 100, 50, 25, 12.5, 6.3 or 3.2% aqueous commercial bleach for 10, 30, 60, 120 or 180 min at room temperature were assessed by nucleic acid Syto-9 staining, histologic examination of ileum and infectivity to immunosuppressed neonatal C57BL/6N mice. Although the viability was decreased compared with normal oocysts, all oocysts in contact with serially diluted commercial bleach for 180 min were alive by nucleic acid dye Syto-9 staining. And, microscopic examination of ileum sections revealed developmental stages of C. parvum in all mice. The oocyst shedding patterns between mice infected with oocysts contacted with commercial bleach and normal control mice were not significantly different each other. Although commercial bleach is widely used as a bacterial and viral disinfectant, the present findings indicate that it is not an effective disinfectant for C. parvum oocysts under practical conditions. Authors conclude that, therefore, it is undesirable to recommend commercial bleach as a disinfectant for C. parvum oocysts.
We observed the time gap between oocyst shedding and antibody responses in mice (3-week-old C57BL/6J females) infected with Cryptosporidium parvum. Oocyst shedding was verified by modified acid-fast staining. The individually collected mouse sera were assessed for C. parvum IgM and IgG antibodies by enzyme-linked immunosorbent assay from 5 to 25 weeks after infection. The results showed that C. parvum oocysts were shed from day 5 to 51 post-infection (PI). The IgM antibody titers to C. parvum peaked at week 5 PI, whereas the IgG antibody titers achieved maximum levels at week 25 PI. The results revealed that IgM responses to C. parvum infection occurred during the early stage of infection and overlapped with the oocyst shedding period, whereas IgG responses occurred during the late stage and was not correlated with oocyst shedding. Hence, IgM antibody detection may prove helpful for the diagnosis of acute cryptosporidiosis, and IgG antibody detection may prove effective for the detection of past infection and endemicity.
The purpose of the present study was to understand the pathogenesis of infections in piglets inoculated with C parvum isolated from mice alone and combined with porcine rotavirus (S-80). Thirteen 10-day piglets were divided in four groups; Three, A group, were only given by C parvum. Four, B group, were orally administrated with firstly porcine rotavirus and then C patvum. Three, C group, were orally inoculated with porcine rotavirus alone. The rest, D group, were used as controls. During the experiment, there were daily recorded clinical signs including diarrhea to each pig. According to the periodic intervals for necropsy, all pigs were sacrificed from 4 to 12 days after the final inoculation of C parvum. Location and distribution of two pathogens, C parvum and rotavirus, in the intestinal mucosa of piglets tested were examined by pathological and immunohistological means. In addition, parasitological test using the feces of piglets was applied for the detection of cryptosporidial oocysts as well. A group showed diarrhea from 4 to 6 days post-inoculation(PI) and also discharged C parvum oocysts in feces during the day 4 to 7 PI. In tissue sections of jejunum and ileum, cryptosporidial oocysts were observed a few on the top of villi with slightly fusion. B group represented sign of diarrhea and discharge of oocysts from 2 to 11 days PI. There were some cryptosporidial oocysts both in the jejunal lumen and in the lumen of mucosal glands. As progressed, oocysts were most commonly distributed on the tip of villi of jejunum. Histopathologically there were also mild to moderately fused, attenuated focal desquamated, congested villi and mononuclear cell infiltration of varying degrees in the lamina propria of small intestine and colon at the day 4 and 7 PI. C group showed slightly to mildly attenuated and fused top of villi and mildly mucosal congestion. D group as controls was grossly and histopathologically normal in all parts of intestine. The present results indicate that the piglets inoculated with C parvum only are certainly milder in pathogenesis including duration of clinical course and severity of lesion than those in piglets concurrently infected with porcine rotavirus and C parvum. Also the strain (VRI-CN91) of C parvum used in the study has very low pathogenicity to occur enteritis of piglets.
This study was performed to investigate experimental transmission of Cryptosporidium parvum in a calf. A 25-day-old Korean native calf was inoculated per os with $1{\times}10^6$ C. parvum oocysts isolated from a Korean mouse. The calf commenced oocyst discharge in feces on post-inoculation day 4, and continued until the aah 11. The number of discharged oocysts Peaked($4.9{\times}10^5$) on post-inoculation day 6. However, the calf did not show signs of diarrhea. The present results indicate that C. parvum is cross-transmissible between the calf and the mouse.
To investigate the infection status of pigs with Cryptosporidium parvum, 589 fecal samples were collected from pigs raised at farm in Chungcheongbuk-do and Chungcheongnam-do. Of the 589 pig fecal samples, 62 (10.5%) were positive for C. parvum. The area showing the highest positive rate was Dangjin-gun, Chungcheongnam-do (14.0%), and the lowest (0%) Salmi-myon, Chungcheongbuk-do. The positive rate of C. parvum in Judok-eup increased from 12.7% in the winter to 22.1 % in the summer. The results of this study suggest that the pigs may be a source of human C. parvum infection.
In the genus Cryptosporidium, there are more than 14 species with different sizes and habitats, as well as different hosts. Among these, C. parvum and C. hominis are known to be human pathogens. As C. parvum can survive exposure to harsh environmental conditions, including various disinfectants or high doses of radiation, it is considered to be an important environmental pathogen that may be a threat to human health. However, the resistance of other Cryptosporidium species to various environmental conditions is unknown. In this study, resistance against ${\gamma}$-irradiation was compared between C. parvum and C. muris using in vivo infection in mice. The capability of C. muris to infect mice could be eliminated with 1,000 Gy of ${\gamma}$-irradiation, while C. parvum remained infective in mice after up to 1,000 Gy of ${\gamma}$-irradiation, although the peak number of oocysts per gram of feces decreased to 16% that of non-irradiated oocysts. The difference in radioresistance between these 2 Cryptosporidium species should be investigated by further studies.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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