Homologous recombination occurs between homologous chromosomes and is significantly involved in programmed double-strand break (DSB) repair. Activation of two recombinases, Rad51 and Dmc1, is essential for an interhomolog bias during meiosis. Rad51 participates in both mitotic and meiotic recombination, and its strand exchange activity is regulated by an inhibitory factor during meiosis. Thus, activities of Rad51 and Dmc1 are coordinated to promote homolog bias. It has been reported that Hed1, a meiosis-specific protein in budding yeast, regulates Rad51-dependent recombination activity. Here, we investigated the role of Hed1 in meiotic recombination by ectopic expression of the protein after pre-meiotic replication in Saccharomyces cerevisiae. DNA physical analysis revealed that the overexpression of Hed1 delays the DSB-to-joint molecule (JM) transition and promotes interhomolog JM formation. The study indicates a possible role of Hed1 in controlling the strand exchange activity of Rad51 and, eventually, meiotic crossover formation.
As Agrobacterium tumefaciens, which has long been used to transform plants, is known to transfer T-DNA to budding yeast, Saccharomyces cerevisiae, a variety of fungi were subjected to the A. tumefaciens-mediated transformation to improve their transformation frequency and feasibility. The A. tumefaciens-mediated transformation of chestnut blight fungus, Cryphonectria parasitica, is performed in this study as the first example of transformation of a hardwood fungal pathogen. The transfer of the binary vector pBIN9-Hg, containing the bacterial hygromycin B phosphotransferase gene under the control of the Aspergillus nidulans trpC promoter and terminator, as a selectable marker, led to the selection of more than 1,000 stable, hygromycin B-resistant transformants per 1${\times}$10$\^$6/ conidia of C. parasitica. The putative transformants appeared to be mitotically stable. The transformation efficiency appears to depend on the bacterial strain, age of the bacteria cell culture and ratio of fungal spores to bacterial cells. PCR and Southern blot analysis indicated that the marker gene was inserted at different chromosomal sites. Moreover, three transformants out of ten showed more than two hybridizing bands, suggesting more than two copies of the inserted marker gene are not uncommon.
During meiosis, programmed double-strand breaks (DSBs) are repaired via recombination pathways that are required for faithful chromosomal segregation and genetic diversity. In meiotic progression, the non-homologous end joining (NHEJ) pathway is suppressed and instead meiotic recombination initiated by nucleolytic resection of DSB ends is the major pathway employed. This requires diverse recombinase proteins and regulatory factors involved in the formation of crossovers (COs) and non-crossovers (NCOs). In mitosis, spontaneous DSBs occurring at the G1 phase are predominantly repaired via NHEJ, mediating the joining of DNA ends. The Ku complex binds to these DSB ends, inhibiting additional DSB resection and mediating end joining with Dnl4, Lif1, and Nej1, which join the Ku complex and DSB ends. Here, we report the role of the Ku complex in DSB repair using a physical analysis of recombination in Saccharomyces cerevisiae during meiosis. We found that the Ku complex is not essential for meiotic progression, DSB formation, joint molecule formation, or CO/NCO formation during normal meiosis. Surprisingly, in the absence of the Ku complex and functional Mre11-Rad50-Xrs2 (MRX) complex, a large portion of meiotic DSBs was repaired via the recombination pathway to form COs and NCOs. Our data suggested that Ku complex prevents meiotic recombination in the elimination of MRX activity.
Kim, Songhee H.;Vieira, Melissa;Kim, Hye-Jin;Kesawat, Mahipal Singh;Park, Hye Yoon
Molecules and Cells
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v.42
no.4
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pp.356-362
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2019
The binding of MS2 bacteriophage coat protein (MCP) to MS2 binding site (MBS) RNA stem-loop sequences has been widely used to label mRNA for live-cell imaging at single-molecule resolution. However, concerns have been raised recently from studies with budding yeast showing aberrant mRNA metabolism following the MS2-GFP labeling. To investigate the degradation pattern of MS2-GFP-labeled mRNA in mammalian cells and tissues, we used Northern blot analysis of ${\beta}$-actin mRNA extracted from the Actb-MBS knock-in and $MBS{\times}MCP$ hybrid mouse models. In the immortalized mouse embryonic cell lines and various organ tissues derived from the mouse models, we found no noticeable accumulation of decay products of ${\beta}$-actin mRNA compared with the wild-type mice. Our results suggest that accumulation of MBS RNA decay fragments does not always happen depending on the mRNA species and the model organisms used.
Twelve unrecorded yeasts, Pseudozyma prolifica HL9-1, Trichosporon coremiiforme NS19-2, Candida cretensis SA4-1, Cryptococcus diffluens TJ4-3, Cryptococcus pinus YB17-2, Candida vartiovaarae DD2-5, Pichia galeiformis DM3-5, Candida pseudolambica JW2-3, Trichosporon xylopini NS5-1, Trichosporon moniliiforme NS5-7, Tetrapisispora iriomotensis NS14-2, and Tetrapisispora nanseiensis SA17-1, were screened among 97 yeasts from soils of Chungcheongnam-do and Daejeon metropolitan city, Korea. These yeasts were oval or ellipsoidal and had a budding system for vegetative reproduction. They grew well in yeast extract-peptone-dextrose (YPD) medium and, in particular, Tetrapisispora iriomotensis NS14-2 and Candida cretensis SA4-1 grew well in 10% NaCl-containing YPD broth. Nine strains, including Trichosporon coremiiforme NS19-2, assimilated xylose and four yeast strains, such as Candida vartiovaarae DD2-5, also assimilated lactose. Physiological functionalities of cell-free extracts and supernatants from two halophilic unrecorded yeasts, Candida cretensis SA4-1 and Tetrapisispora iriomotensis NS14-2, were investigated. Cell-free extracts from Candida cretensis SA4-1 and Tetrapisispora iriomotensis NS14-2 exhibited 71.3% and 68.4% antihypertensive angiotensin I-converting enzyme inhibitory activity.
Candida albicans infections are often problematic to treat owing to antifungal resistance, as such infections are mostly associated with biofilms. The ability of C. albicans to switch from a budding yeast to filamentous hyphae and to adhere to host cells or various surfaces supports biofilm formation. Previously, the ethanol extract from Paeonia lactiflora was reported to inhibit cell wall synthesis and cause depolarization and permeabilization of the cell membrane in C. albicans. In this study, the P. lactiflora extract was found to significantly reduce the initial stage of C. albicans biofilms from 12 clinical isolates by 38.4%. Thus, to assess the action mechanism, the effect of the P. lactiflora extract on the adhesion of C. albicans cells to polystyrene and germ tube formation was investigated using a microscopic analysis. The density of the adherent cells was diminished following incubation with the P. lactiflora extract in an acidic medium. Additionally, the P. lactiflora-treated C. albicans cells were mostly composed of less virulent pseudohyphae, and ruptured debris was found in the serum-containing medium. A quantitative real-time PCR analysis indicated that P. lactiflora downregulated the expression of C. albicans hypha-specific genes: ALS3 by 65% (p = 0.004), ECE1 by 34.9% (p = 0.001), HWP1 by 29.2% (p = 0.002), and SAP1 by 37.5% (p = 0.001), matching the microscopic analysis of the P. lactiflora action on biofilm formation. Therefore, the current findings demonstrate that the P. lactiflora ethanol extract is effective in inhibiting C. albicans biofilms in vitro, suggesting its therapeutic potential for the treatment of biofilm-associated infections.
Saccharomyces cerevisiae Hsp30 is a plasma membrane heat shock protein that is induced by various environmental stress conditions. However, the functional role of Hsp30 during diverse environmental stressors is not presently known. To gain insight into its function during thermal stress, we have constructed and characterized a ${\Delta}hsp30$ strain during heat stress. $BY4741{\Delta}hsp30$ cells were found to be more sensitive compared with BY4741 cells, when exposed to a lethal heat stress at $50^{\circ}C$. When budding yeast is exposed to either heat shock or weak organic acid, it inhibits Pma1p activity. In this study, we measured the levels of Pma1p in mutant and Wt cells both during optimal temperature and heat shock temperature. We observed that $BY4741{\Delta}hsp30$ cells showed constitutive reduction of Pma1p. To gain further insights into the role of Hsp30 during heat stress, we compared the total protein profile by 2D gel electrophoresis followed by identification of differentially expressed spots by LC-MS. We observed that contrary to that expected from thermal-stress-induced changes in gene expression, the ${\Delta}hsp30$ mutant maintained elevated levels of Pdc1p, Trx1p, and Nbp35p and reduced levels of Atp2p and Sod1p during heat shock. In conclusion, Hsp30 is necessary during lethal heat stress, for the maintenance of Pma1p and a set of thermal stress response functions.
Spindle position checkpoint monitors the orientation of mitotic spindle for proper segregation of replicated chromosomes into mother cell and the daughter, and prohibits mitotic exit when mitotic spindle is misaligned. BUB2 forms one of the key upstream element of spindle position checkpoint in budding yeast, but its functional homologues have not been identified in higher eukaryotes. Here, we analyzed the functions of two putative BUB2 homologues of C. elegans in the spindle orientation checkpoint. From the C. elegans genome database, we found that two open reading frames (ORFs), F35H12_2 and C33F10_2, showed high sequence homology with BUB2. We obtained the expressed sequence tag (EST) clones for F35H12_2 (yk221d4) and C33F10_2 (yk14e10) and verified the full cDNA for each ORF by sequencing and 5' RACE with SL1 primer. The functional complementation assays of yk221d4 and yk14e10 in ${\Delta}bub2$ of S. cerevisiae revealed that these putative BUB2 homologues of C. elegans could not replace the function of BUB2 in spindle position checkpoint and mitotic exit. Our attempt to document the component of spindle position checkpoint in metazoans using sequence homology was not successful. This suggests that structural information about its components might be required to identify functional homologues of the spindle position checkpoint in higher eukaryotes.
The budding yeast S. cerevisiae contains 10-nm filament ring that lies just inside the plasma memhrane in the region of the mother-bud neck. It is possihle that CDC3. CDCIO, CDCII. CDCI2 genes encode the filaments. Recently it has been shown that the CDC3 and CDCI2 gene products arc localized to [he vicinity of the neck lilaments by immunolluorescence. However. the role of the lilament ring is not clear. In order to find out the role of filament ring. I have tried to clone the similar gene in S. pomhe to the CDC3 in S. cerevisiae. Genomic library was constructed by use of $\lambda$gtll expression vector and screened with CDC3 antibodies. From sequencing data, there were more than two introns in the newly cloned gene. There was 62% homology between the part of the predicted amino acid sequence of cloned gene and CDC3 amino acid sequence.
In budding yeast, septin plays as a scaffold to recruits protein components and regulates crucial cellular events including bud site selection, bud morphogenesis, Cdc28 activation pathway, and cytokinesis. Phosphorylation of Bni5 isolated as a suppressor for septin defect is essential to Swe1-dependent regulation of bud morphogenesis and mitotic entry. The mechanism by which Bni5 regulates normal septin function is not completely understood. Here, we provide evidence that Bni5 phosphorylation is important for interaction with septin component Cdc11 and for timely delocalization from septin filament at late mitosis. Phosphorylation-deficient bni5-4A was synthetically lethal with $hof1{\Delta}$. bni5-4A cells had defective structure of septin ring and connected cell morphology, indicative of defects in cytokinesis. Two-hybrid analysis revealed that bni5-4A has a defect in direct interaction with Cdc11 and Cdc12. GFP-tagged bni5-4A was normally localized at mother-bud neck of budded cells before middle of mitosis. In contrast, at large-budded telophase cells, bni5-4A-GFP was defective in localization and disappeared from the neck approximately 2 min earlier than that of wild type, as evidenced by time-lapse analysis. Therefore, earlier delocalization of bni5-4A from septin filament is consistent with phosphorylation-dependent interaction with the septin component. These results suggest that timely de localization of Bni5 by phosphorylation is important for septin function and regulation of cytokinesis.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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