Successful techniques of in vitro fertilization(IVF) are valuable for studying the process of fertilization and for developing economical procedures for gene and nuclear transfer in farm animals. To date, bovine IVF system has been developed with oocytes in vitro or vitro, but the resulting zygotes exhibit limited embryonic development after in vitro culture. Even though in vitro matured oocytes achieved high fertilization and cleavage rates, these embryos appear extremly low rate of pregnancies when transferred to synchronized recipients. Development of early bovine embryos in vitro is generally arrested at the 8-to 16-cell stage. However, recent use of somatic cells such as trophoblastic vesicle, granulosa and oviduct epithelial cell for co-culture with early bovine embryos has proven effective for development of embryos, matured and fertilized in vitro, past the in vitro cell blocks. These factors clearly indicate the value of the co-culture system in promoting development of bovine oocytes matured and fertilized in vitro to morula or blastocyst stage in vitro. In addition, co-culture system may beome a tool for evaluation of viability of ova that have been manipulated by procedures such as splitting, microinjection and nuclear transfer.
Bovine follicular oocytes were matured in two different conditions, TCM 199+10% FBS with or without hormones (0.01 unit/ml ovine follicle stimulating hormone, 0.01 unit/ml ovine luteinizing hormone and 1$\mu\textrm{g}$/ml $\beta$-estradiol). There was no significant difference in maturation and fertilization rates of the oocytes between two groups. The result indicates that hormonal treatment does not have beneficial effect on in vitro maturation and fertilization of follicular oocytes. IVF-derived cone-cell bovine embryos were injected with foreign DNA (CChcLf) by microinjection method and then co-cultrued with bovine oviductal epithelial cells. Developmental rate of microinjected embryos to blastocyst stage (21%) was similar to that of non-injected embryos(29%). This result represents that microinjected bovine embryos produced in vitro have a potential of development to normal blastocysts.
This study was conducted to investigate the effects of in vitro fertilization, culture and embryo development according to in vitro maturation rate, protectant composition and equilibrium time after frozen /thawing of bovine immature oocytes. This results obtained in studies on the effect of different cryoprotectants on the viability, maturation and development of in vitro bovine oocytes were as follow: 1.The post-thawing of immature oocytes matured to metaphase II during culture time for 0 to 26 h, and those group (62~3%) were low than control group (76.7%). The optimal maturation time of frozen-thawed immature oocytes was at 24 h. 2.The viability of cryopreserved immature oocytes was not affected by sort of cryoprotectants. The developmental competence of frozen4hawed oocytes was not affected by cryoprotectants. These results indicate that an optimal maturation time of frozen /thawed immature oocytes was at 24h. Furthermore the viability of cryopreserved immature oocytes was not affected by sort of cryoprotectants and developmental competence of frozen /thawed oocytes.
Ryu, C. S.;K. S. Kil;Kim, N-H;D. H. Ko;Lee, H. T.;K. S. Chung
한국가축번식학회지
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제23권3호
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pp.221-227
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1999
미성숙한 소 난자 동결보존 기술의 개발은 체외수정, 복제동물 및 형질전환동물 생산에 필요로 하는 난자를 시간과 공간의 제약 없이 공급이 가능해지기 때문에 그 효용가치가 많으나 아직까지 성공 보고례가 없다. 본 연구에서는 전자현미경용 grid를 이용한 초급속 동결 방법에 의해 미성숙한 소 난자를 동결 보존한 후, 이 난자를 융해하여 체외성숙, 체외수정 및 배발달을 유도하였다. 동해제는 PBS에 40% ethylene glycol, 0.5M sucrose, 18%과 10% fetal bovine serum이 들어 있는 EFS40을 사용하였다 . 동결ㆍ융해 후의 난자의 생존율은 48% 정도로 대조군에 비해 현저히 낮았으나 metaphase-II까지의 성숙율은 78%로, 정상 자웅전핵 형성율 75%로 대조군에 비해 차이가 없었다. 또한 배반포까지의 배발달율은 대조군23%와 동결군은 5%로 동결 융해한 것이 낮았으며 수정후 108~120시간 째 배반포를 염색하여 세포수률 알아본 결과는 각각 128$\pm$5와 98$\pm$8이었다. 항동해제내 $Na^{+}$ 이온의 농도에 따른 미성숙된 난자의 생존율, 성숙, 수정 및 배발달율을 조사하였으나 유의차가 없었다. 이상의 결과는 동결 보존된 미성숙 소 난자가 융해후 체외성숙 및 수정에 의해 배반포까지의 발달이 가능하다는 것을 시사하고 있다.
This study was carried out to investigate On in vitro fertilization, survival rate and developmental rate of rapidly frozen bovine immature oocytes. Immature oocytes cultured for 1, 12, 24, 48 hours in 20% FCS + TCM-199 medium and thereafter rapidly freezing-thawed oocytes inseminated with capacitated sperm. The immature oocytes following dehydration by 1.5M DMSO + 2.0M glycerol + 0.25M sucrose + TCM 199 media + 20% FGS were directly plunged into liquid nitrogen and thawes in 3$0^{\circ}C$ water. Rapid freezing embryos co-cultured in 20% FCS + TCM-199 media containing hormones(21U/mL PMSG, 21U /mL hGG and 1 $\mu$g /mL 17$\beta$-estradiol) and cumulus cells(1 x 105-6 cells). Survival rate was defined as development rate on in vitro culture or FDA-test. The results are summarized as follows ; 1. The in vitro maturation and fertilization rate of immature bovine oocytes on in vitro maturation period(1, 12, 24, 48 hrs) before rapid freezing4hawed were 57.1%, 45.7%, 37.1%, 25.7% and 40.0%, 31.4%, 20.0%, 11.4%, respectively. 2. The survival rate of immature bovine oocytes on in vitro maturation period(1, 12, 24, 48 hrs) before rapid freezing-thawed were 33.3%, 26.7%, 20.0%, and 10.0%, respectively. The survival rate of rapid freezing4hawed immature oocytes was significantly lower than that of non-freezing oocytes. 3. The survival rate of rapid freezing4hawed excellent and good bovine embryos co-cultured in 20% FCS + TCM-199 media containing hormones(PMSG, hCG, 17$\beta$-estradiol) and cumulus cells 4 to 5 hrs and 20 to 24 hrs were 35.0%, 15.0% and 25.0%, 15.0% and 40.0%, 20.0% and 30.0%, 15.0%, respectively. The survival rate of embryos co-cultured in TCM-199 media containing hormones and cumulus cells was significantly higher than that of non co-culture.
This study was carried out to investigate the factors affecting development in vitro of follicular oocytes fertilized in vitro in Korean Native Cattle. The bovine ovaries were obtained at a slaughter house and the follicular oocytes were recovered by aspirating the follicular fluid from the visible follciles of 3~6mm. The bovine oocytes were matured in vitro for 20~24 hours in TCM0-199 containing 10% FCS and hormones (0.02AU/ml FSH, 10$\mu\textrm{g}$/ml LH, 1$\mu\textrm{g}$/ml estradiol-17$\beta$). The matured oocytes were fertilized in vitro using Percoll-separated frozen-thawed spermatozoa in BO solution containing caffeine(5mM) and heparin(10$\mu\textrm{g}$/ml). Twenty-four hours after insemination, the oocytes were cultured in vitro and then the effects of cumulus cell layer, co-culture with cumulus cells, bovine oviduct epithelial cells from ampulla or isthmus on development of ova, were studied. The results obtained are summarized as follows : 1. The in vitro development degree of oocytes attached with compact and dense layered cumulus cells was higher than that with 3~4 layered cumulus cells to be 9~16cells(P<0.01). 2. When the in vitro fertilized oocytes were co-cultured with bovine oviduct epithelial cells or cumulus cells, the development rate to be morula was 20.2% and 12.7%, respectively and the rates were higher than that of control, 2.1%(P<0.05). 3. The development rate to be morula was 15.8% and 23.8%, respectively when the in vitro fertilized oocytes were co-cultured with bovine oviduct epithelial cells from ampulla or isthmus, and the rates were higher than that of control, 0%(P<0.05%).
These mxperiments were carried out to investigate the effect of rabbit anti-bovine cumulus cell antibodies on in vitro fertilization and following development of bovine follicular oocytes matured in vitro. The bovine ovaries were obtained at a slaughter house and the follicular oocytes surrounded by cumulus cells were collected by puncturing follicles with 2~6mm of diameter. Bovine oocytes were matured in vitro for 24~26hrs in a CO2 incubator with 5% CO2 in air at 39$^{\circ}C$ and subsequently cultured in medium containing cumulus cell antibody for 1 hour. The medium used for maturation was TCM-199 supplemented with hormones, pyruvate, FCS and antibiotics. Epididymal spermatozoa were capacitated by in vitro culture for 2~3 hrs in BO solution 10~15 matured oocytes into the suspension of capacitated spermatozoa. Six hour after insemination the eggs were transferred to TCM-199 supplemented with FCS(10%) and then cultured for 7 days. The results obtained in these experiments were summarized as follows : 1. When the follicular oocytes matured in vitro were treated with antibody to intact cumulus cells, the fertilization rate of cumulus intact and removed oocytes was ranged to 45.0 to 53.7%. These value is slightly lower than that(64.3%) of follicular oocytes not treated with the antibody, and increased frequency of both male and female pronuclear formation was found in cumulus intact oocytes cultred in medium without the antibody(p<0.05). 2. The fertilization rate of cumulus intact and removed oocytes treated with antibody to solubilized cumulus cells was ranged 45.0 to 52.5%, significantly lowre than that(62.8%) of oocytes cultured in antibody free medium, and increased frequency of ova with male and female pronuclei was found when cumulus cells were present(p<0.05). 3. The rates of cumulus cell intact and removed oocytes developed to 8-, 16-cell and morula or blastocyst after treatment of intact and solubilized cumulus cell antibody were ranged 7.1 to 14.5, 2.9 to 5.9 and 1.5 to 2.9%, respectively, slightly lower than 18.6, 10.0 and 8.6% of cumulus intact oocytes cultured in medium without the antibody. The results of this stduy indicate that cumulus cells promote not only normal fertilization with proper pronuclear formation, but embryo development and that the beneficial effect of cumulus cell to the pronuclear formation and embryo development is blocked by the action of antibody to cumulus cell.
A modified Tris-buffered medium (mTBM) has been widely used as an insemination medium for porcine in vitro fertilization (IVF). We examined whether mTBM could be used for bovine IVF. Bovine cumulus-oocyte complexes (COCs) were cultured in a serum-free medium containing 30 ng/ml EGF for 22 h. After culture, COCs were inseminated with spermatozoa for 12 h in mTBM containing 5 mM caffeine and 10 g/ml heparin. The penetration of oocytes increased significantly (p<0.05) as the sperm concentration increased from 0.1 (30%) to 1-10 $(87-100%){\times}10^6$ cells/ml. This was significantly different from values obtained at 1 (87%) and 10 $(100%){\times}10^6$ cells/ml. However, when COCs were inseminated with spermatozoa from different bulls, the proportions (62-100%) of oocytes penetrated varied according to the bull. The proportion (18%) of oocytes penetrated was significantly (p<0.05) lower in a fertilization medium without caffeine and heparin but increased with the addition of caffeine and/or heparin to the medium, and the proportion (93-96%) of oocytes penetrated increased significantly (p<0.05) when the medium was supplemented with heparin and caffeine. In this medium, sperm penetration was first observed at 3 h after insemination. Irrespective of the presence of glucose in the fertilization medium, the proportion (93-97%) of oocytes penetrated and the proportion (83-84%) of embryos at the ${\geq}2$-cell stage cultured in a chemically defined medium were not significantly different. However, the proportion of embryos developing to the blastocyst stage was significantly (p<0.05) higher in the presence (11%) of glucose in the fertilization medium than in its absence (2%). In conclusion, the present study demonstrated that bovine oocytes penetrated in vitro in mTBM can develop to the blastocyst stage and mTBM may be used for the in vitro production of bovine embryos.
This study was carried out to verify the incidence of oocytes when vitrified at various maturation stages. Bovine cumulus-oocyte complexes were recovered from ovaries at a slaughter and then divided into five groups: control group(unvitrified oocytes), 0 hr. group(composed of oocytes vitrified before the onset of maturation) and 10, 14, and 20 hrs groups (vitrified respectively at 10, 14 and 20 hrs after the onset of maturation). (omitted)
The objectives of the study were to establish sperm separation method and duration of insemination for bovine IVF. Oocytes from slaughterhouse ovaries were matured and fertilized using general protocol. After 18 or 42 h of insemination, six to ten embryos were placed into a 30${mu}ell$ drop of each medium, and the embryos were examined 7~10d post in semination without medium renewal. First, we compared Percoll gradient will swim-up technique for sperm separation. There was no difference in cleavage rates between them, but the development rates over morula stage of oocytes fertilized with sperm separated by Percoll gradient was significantly higher than that sperm selected by swim-up technique (p<0.05). Second, we evaluated development of bovine embryos derived from the IVF procedure with different durations(18 vs 42 h) of fertilization. There was also no difference in cleavage rates, but the development to blastocyst stage of oocytes exposed in cleavage rates, but the development to blastocyst stage of oocytes exposed to sperm for 42 h was significantly higher than that exposed for 18 h (p<0.05). In conclusion, Percoll gradient can be used for sperm selecton, improving of embryonic development. Also, 42h of IVF may improve the development of bovine embryos.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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