Sanaullah Sajid;Sajjad ur Rahman;Mashkoor Mohsin;Zia ud Din Sindhu
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.50
no.3
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pp.430-435
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2022
The infectious bursal disease (IBD) is a highly contagious and acute poultry disease caused by Birnavirus. However, the vaccination is the only disease prevention, but several factors impeded vaccine development. Thus, a need for time to develop a novel technique for managing and treating respiratory diseases in poultry birds. Passive immunization is a hope and a possible alternative used in birds to meet this need. The current research attempted to produce egg yolk-based polyclonal antibodies against the IBD virus. The benefits of IgY include ease of extraction, lack of reaction with mammalian Fc receptors, and low production cost. Commercial layers were immunized with inactivated IBD virus subcutaneously according to the treatment regimen. The eggs were gathered daily, and yolk antibodies were extracted with the ammonium sulfate precipitation technique. The use of an indirect hemagglutination test demonstrated that IgY was IBD-specific. Until the end of the experiment, the specific IgY immunoglobulins did not lose activity when stored at 4℃. The specific immunoglobulin (IgY) treated challenged birds were demonstrated 92% recovery in comparison to the control group. The study implies that the IBDV specific IgY is an easily prepared and rich source of antibodies and offers an alternative therapeutic agent to cure IBD-infected birds.
We developed and subsequently characterized mouse antibodies (MAbs) against viral hemorrhagic septicemia virus (VHSV, genotype IVa), the causative agent of VHS. Five hybridoma clones secreting MAbs against VHSV were established. The MAbs recognized the glycoprotein (MAbs 2C10, 18H4, 23H6, and 30B7) and nucleocapsid protein (15E10) of VHSV by western blot analysis. All five MAbs reacted with VHSV-infected cells and tissue homogenates of VHSV-infected olive flounder (Paralichthys olivaceus) by western blot analysis. Whereas, no reactivity was observed in normal cells and tissue homogenates of normal olive flounder. Moreover, these MAbs reacted with VHSV, but did not react with other fish viruses (infectious hematopoietic necrosis virus, hirame rhabdovirus, spring viraemia of carp virus, infectious pancreatic necrosis virus, marine birnavirus, and nervous necrosis virus) by enzyme linked immunosorbent assay (ELISA). These results indicate that the MAbs are specific to VHSV and can be of value in VHSV detection.
Kim, Kwang Il;Byun, Soon-Gyu;Kang, Hee Woong;Nam, Myung-Mo;Choi, Jin;Yoo, Hae-Kyun;Lee, Chu
Korean Journal of Ichthyology
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v.29
no.1
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pp.62-68
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2017
The Alaska pollock (Gadus chalcogrammus) belongs to the family Gadidae; it is a cold water fish, and has been developed as a novel aquaculture species in Korea. In this study, we describe ongoing surveillance for aquatic animal pathogens based on growth stages. We investigated bacterial flora in rearing water, and monitored pathogens; we also analyzed histopathological traits of abnormal fish. In rearing water, the total bacterial counts were $2.1{\times}10^3cfu/mL$ and Vibrio spp. (52%) were predominant in the larvae stage. In the juvenile and adult stages, the total bacterial counts were $3.4{\times}10^3$ and $3.2{\times}10^2cfu/mL$, respectively (with Pseudomonas sp. as the predominant species; 90% and 52%). This result revealed that the bacterial flora in rearing water changed depending on the feeding types. No virulent-bacteria or problematic viruses (VHSV, viral hemorrhagic septicemia virus; NNV, nervous necrosis virus; MBV, marine birnavirus) were detected from outwardly healthy fish using either culture or PCR assay. Some juveniles (less than 5%) had gas bubbles on the gill lamellae, degeneration of the corneal epithelium, and choroid gland degeneration, suggesting that these symptoms were caused by external injury and secondary infection by opportunistic bacteria. Disease management is important to cope with disease emergence in the novel aquaculture species Alaska pollock.
Disease monitoring in wild aquatic animals is necessary to obtain information about disease occurrence, disease agents, and the transmission of diseases between wild and cultured species. In this study, we monitored viral diseases in wild marine fish and crustacea caught by trawl in Korea in April and October 2018. We monitored the viral diseases in 977 fish from 39 different species and 287 crustacea from 14 different species. In fish, we collected kidney and spleen to detect viral hemorrhagic septicemia virus (VHSV), red sea bream iridovirus (RSIV), marine birnavirus (MABV), hirame rhabdovirus (HRV), and lymphocystis disease virus (LCDV). In crustacea, we monitored white spot syndrome virus (WSSV), infectious hypodermal and hematopoietic necrosis virus (IHHNV), taura syndrome virus (TSV), infectious myonecrosis virus (IMNV), yellowhead disease virus (YHDV), and white tail disease virus (WTDV) using pleopods, pereiopods, gills, muscle, and hepatopancreases. Although none of the viral diseases tested in this study were detected in the samples, these results will help disease control between aquaculture species and wild aquatic animals.
This study surveyed for the prevalence of parasites, bacteria and viruses in four fish species, olive flounder (Paralichthys olivaceus), red sea bream (Pagrus major), black sea bream (Acathopagrus schlegeli) and black rockfish (Sebastes schlegeli) in 2010. The survey was aimed to compare the pathogens detected from wild and cultured fish for an epidemiological study. Anisakis sp. was predominantly detected from wild olive flounder and red sea bream (58.6% and 41.7% respectively), but not from the cultured fishes, suggesting anisakid infection is rare in cultured fish. The wild fish get in contact with the anisakids through their prey such as small fishes or crustaceans which carry the anisakids; whereas the cultured fish are fed with formulated feed, free of anisakids. Bacterial detection rates from the wild fishes examined in the study were lower than those of cultured fishes. Vibrio sp. dominated among detected bacterial population in cultured olive flounder (18%). Since vibriosis is known as a secondary infection caused by other stressful factors such as parasitic infections, handling and chemical treatment, it seems that cultured olive flounder are exposed to stressful environment. Viruses diagnosed in the study showed difference in distribution between wild and cultured fishes; hirame rhabdovirus (HRV) (0.1%) and lymphocystis disease virus (LCDV) (3.9%) were detected in the cultured olive flounder, but not in the wild fish, and marine birnavirus (MBV) (1.7%) and red sea bream iridovirus (RSIV) (3.2%) were detected from the wild and cultured red sea bream, respectively. From the survey conducted, it can be concluded that even though some pathogens (Trichodina sp., Microcotyle sp., etc.) are detected from both the wild and cultured fish, pathogens such as Anisakis sp., Vibrio sp. and LCDV showed difference in distribution in the wild and cultured host of same fish species and this can be attributed to their environmental condition and feeding.
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