We investigated biotinylation of nitrocellulose membrane for immuno-filtration capture assay. In order to enhance the efficiency of biotinylation, nitrocellulose membranes were pretreated with several chemicals for the purpose of suitable protein absorption through surface modification. As a signal generating enzyme, urease was used and the concentration of avidin was optimized for the efficient binding kinetics between urease-biotin in liquid phase and biotinylated membrane in solid phase. For effective biotinylation, bovine serum albumin-biotin complexes could be immobilized at a concentration of $370\;{\mu}g$/stick ($4.4\;cm^2$). Among tested chemicals, polylysine (0.25%) showed a significant effect in biotinylation. Polylysine is thought to enhance surface area by extending unbound residues into solution. Time of treatment over 30 min and higher molecular weight of polylysines (58,100 dalton) showed positive effect on the enhancement of biotinylation. The result from this study may be useful for developing a new biosensor and other biofunctional membranes for examining molecular recognition.
BirA ligase is a prokaryotic ortholog of holocarboxylase synthetase (HCS) that can biotinylate proteins. This study tested the hypothesis that BirA ligase catalyzes the biotinylation of eukaryotic histones. If so, this would mean that recombinant BirA ligase is a useful surrogate for HCS in studies of histone biotinylation. The biological activity of recombinant BirA ligase was confirmed by enzymatic biotinylation of p67. In particular, it was found that BirA ligase biotinylated both calf thymus histone H1 and human bulk histone extracts. Incubation of recombinant BirA ligase with H3-based synthetic peptides showed that lysines 4, 9, 18, and 23 in histone H3 are the targets for the biotinylation by BirA ligase. Modification of the peptides (e.g., serine phosphorylation) affected the subsequent biotinylation by BirA ligase, suggesting crosstalk between modifications. In conclusion, this study suggests that prokaryotic BirA ligase is a promiscuous enzyme and biotinylates eukaryotic histones. Moreover the biotinylation of histones by BirA ligase is consistent with the proposed role of human HCS in chromatin.
Biotinylation of recombinant proteins is a powerful tool for the detection and analysis of proteins of interest in a large variety of assay systems. The recent development of in vivo biotinylation techniques in E. coli has opened new possibilities for the production of site-specifically biotinylated proteins without the need for further manipulation after the isolation of the recombinantly expressed proteins. In the present study, a novel vector set was generated which allows the convenient cloning and expression of proteins of interest fused with an N-terminal in vivo biotinylated thioredoxin (TRX) protein. These vectors were derived from the previously reported pBIOTRX vector into which was incorporated part of the pBluescript II+phagemid multiple cloning site (MCS), amplified by PCR using a pair of sophisticated oligonucleotide primers. The functionality of these novel vectors was examined in this system by recombinant expression of rat transforming growth factor-$\beta$. Western-blot analysis using TRX-specific antibodies or peroxidase-conjugated streptavidin confirmed the successful induction of the fusion protein and the in vivo conjugation of biotin molecules, respectively. The convenience of molecular subcloning provided by the MCS and the effective in vivo biotinylation of proteins of interest makes this novel vector set an interesting alternative for the production of biotinylated proteins.
To better understand the effects of PEGylation and biotinylation on the delivery efficiency of proteins, the cationic protein lysozyme (LZ) and anionic protein bovine serum albumin (BSA) were chemically conjugated with poly(ethylene glycol) (PEG) and biotin-PEG to primary amine groups of proteins using N-hydroxysuccinimide reactions. Four types of protein conjugates were successfully prepared: PEGylated LZ (PEG-LZ), PEGylated BSA (PEG-BSA), biotin-PEG-conjugated LZ (Bio-PEG-LZ), and biotin-PEG-conjugated BSA (Bio-PEG-BSA). PEG-LZ and Bio-PEG-LZ exhibited a lower intracellular uptake than that of LZ in A549 human lung cancer cells (in a two-dimensional culture). However, Bio-PEG-BSA showed significantly improved intracellular delivery as compared to that of PEG-BSA and BSA, probably because of favorable interactions with cells via biotin receptors. For A549/fibroblast coculture spheroids, PEG-LZ and PEG-BSA exhibited significantly decreased tissue penetration as compared with that of unmodified proteins. However, Bio-PEG-BSA showed tissue penetration comparable to that of unmodified BSA. In addition, citraconlyated LZ (Cit-LZ) showed reduced spheroid penetration as compared to that of LZ, probably owing to a decrease in protein charge. Taken together, chemical conjugation of targeting ligands-PEG to anionic proteins could be a promising strategy to improve intracellular delivery and in vivo activity, whereas modifications of cationic proteins should be more delicately designed.
Zeins, maize storage proteins, are retained in the endoplasmic reticulum (ER) during the subcellular targeting process without the ER retention signal. Circumstantial data indicate that the 27K zein is an ER transmembrane protein. The potential transmembrane domain may permit the 27K zein to remain in the ER. This study investigated the potential transmembrane feature by employing alkaline extraction, proteinase K digestion, and surface biotinylation on isolated intact protein bodies. These assays consistently support the possibility of the 27K zein as a transmembrane protein. The 27K zein polypeptide was shown to be associated with alkali-stripped membranes. The polypeptide was digested by proteinase K to a smaller fragment. According to surface biotinylation, the 27K zeins was labeled to the exclusion of other classes of zeins. This study, therefore, concludes that the 27K zein has an ER transmembrane domain, which may serve as an anchor for zeins' ER retention.
질트리코모나스(Trichomonasvqqin is)의 항원성 변이를 관찰하기 위해 원충의 표면 항원 (surface antigen)을 N-hydmwsuccinlmide-biotin(N반5-biotin)으로 표지 하고 표지된 표면 단백질과 토끼의 항혈청으로 면역침전(Immunoprecipitation; IP)시켰으며 sodium dodec낀 sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE)와 전기영동이적법을 시 행하였다. 살아있는 원충을 NHS-biotin으로 표지하여 표면 단백질을 분리하고 이를 질트리코모나스에 면역된 토끼 항혈청과 면역침전 시켰던 바 46, 60, 68, 90, 130 그리고 220 kDa에서 6개의 단백질이 항원성을 나타내었으며 질토리코모나스의 분리주인 HY-1, HV-15 및 ATCC 50148 주간에 차이는 없어 이들 6개 분획이 표면 항원성 발현에 중요한 역할을 할 것으로 생각된다.
The main function of adipocytes in various species is to store nutrient energy in the form of triglycerides, and this function may he closely related with hormonal signaling through the plasma membrane of adipocytes. Using SDS-PAGE, two-dimensional gel electrophoresis, and a membrane biotinylation technique, we have identified a 55KDa protein (55K protein) from the plasma membrane fraction of adipocytes, with an isoelectric point (pI) of 8.1-8.3. However, this 55K protein was not observed with a two-dimensional gel electrophoresis carried out on plasma membrane fractions prepared from the liver, heart, and kidney tissues. An analysis of the 12 amino acids sequence at the N-terminal of the 55K protein showed that it has a similar sequence to that of bovine serum albumin.
A well-characterized sperm specific protein of the Member of immunoglobulin superfamily, IZUMO1, has crucial role in fertilization by mediating sperm binding to the egg plasma membrane in the mouse. However little is known about IZUMO1 in bovine. Here, we describe the molecular cloning and expression analysis of bovine IZUMO1 (bIZUMO1). RT-PCR and Western blot analysis of the bovine tissues indicated that bIZUMO1 was specifically expressed in the testis and sperm, Furthermore, the result of our biotinylation assay from ejaculated bovine sperm strongly suggest the assumption that bIZUMO1 is localized on the cell surface. These data imply the potential role of bovine IZUMO1 in mammalian fertilization.
Acetyl-CoA carboxylase (ACC) catalyzes the first step in fatty acid biosynthesis: the synthesis of malonyl-CoA from acetyl-CoA. As essential regulators of fatty acid biosynthesis and metabolism, ACCs are regarded as therapeutic targets for the treatment of metabolic diseases such as obesity, In ACC, the biotinoyl domain performs a critical function by transferring an activated carboxyl group from the biotin carboxylase domain to the carboxyl transferase domain, followed by carboxyl transfer to malonyl-CoA. Despite the intensive research on this enzyme, only the bacterial and yeast ACC structures are currently available, To explore the mechanism of ACC holoenzyme function, we determined the structure of the biotinoyl domain of human ACC2 and analyze its characteristics using NMR spectroscopy. The 3D structure of the hACC2 biotinoyl domain has a similar folding topology to the previously determined domains from E. coli and P. Shermanii, however, the 'thumb' structure is absent in the hACC2 biotinoyl domain. Observations of the NMR signals upon the biotinylation indicate that the biotin group of hACC2 does not affect the structure of the biotinoyl domain, while the biotin group for E. coli ACC interacts directly with the thumb residues that are not present in the hACC2 structure. These results imply that, in the E. coli ACC reaction, the biotin moiety carrying the carboxyl group from BC to CT can pause at the thumb of the BCCP domain. The human biotinoyl domain, however, lacks the thumb structure and does not have additional non-covalent interactions with the biotin moiety; thus, the flexible motion of the biotinylated lysine residue must underlie the "swinging arm" motion. This study provides insight into the mechanism of ACC holoenzyme function and supports the "swinging arm" model in human ACCs.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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