To analyze the effects of surfactants on the biosynthesis of galactolipid and the composition of fatty acids, the chloroplast envelope and thylakoid membrane were cultivated in medium treated with anionic surfactants, such as linear alkylbenzene sulfonate (0.002%, LAS), a-olefin sulfonate (O.01%, AOS), and sodium lauryl ether sulfate (0.08%, SLES), respectively. During the cultivation, the chloroplast envelope and thylakoid membrane were isolated from the cells collected at the early and middle phase of the culture and the contents of their fatty acid composition were compared with the control. When treated with surfactants, the contents of total lipid MDGD methylesters, and DGDG methylesters decreased significantly when compared with the control. It was also confirmed that more unsaturated fatty acids were involved in the biosynthesis of galactolipid. The fatty acids utilized in the biosynthesis of MGDG were in the chloroplast envelope and in the control, and linoleic acid in LAS, linolenic acid and oleic acid in AOS, and linolenic acid and oleic acid in SLES. The fatty acids in the biosynthesis of DGDG were linolenic acid and oleic acid in the control linolenic acid and stearic acid in LAS, oleic acid and linolenic acid in AOS, oleic acid and linolenic acid in SLES. In the thylakoid membrane, the major fatty acids in the biosynthesis of MGDG were linolenic acid and oleic acid in the control, oleic acid and linolenic acid in LAS, linolenic acid and linoleic acid in AOS, linolenic acid and palmitoleic acid in SLES. The fatty acids in the biosynthesis of DGDG were linolenic acid and oleic acid in the control, oleic acid and linolenic acid in LAS, linolenic acid and linoleic acid in AOS, palmitoleic acid and oleic acid in SLES.
The current research was focused on the extracellular biosynthesis of bactericidal silver nanoparticles (AgNPs) using cell-free supernatant of a local isolate previously identified as a novel Streptomyces aegyptia NEAE 102. The biosynthesis of silver nanoparticles by Streptomyces aegyptia NEAE 102 was quite fast and required far less time than previously published strains. The produced particles showed a single surface plasmon resonance peak at 400 nm by UV-Vis spectroscopy, which confirmed the presence of AgNPs. Response surface methodology was chosen to evaluate the effects of four process variables ($AgNO_3$ concentration, incubation period, pH levels, and inoculum size) on the biosynthesis of silver nanoparticles by Streptomyces aegyptia NEAE 102. Statistical analysis of the results showed that the linear and quadratic effects of incubation period, initial pH, and inoculum size had a significant effect (p < 0.05) on the biosynthesis of silver nanoparticles by Streptomyces aegyptia NEAE 102. The maximum silver nanoparticles biosynthesis (2.5 OD, at 400 nm ) was achieved in runs number 5 and 14 under the conditions of 1 mM $AgNO_3$ (1-1.5% (v/v)), incubation period (72-96 h), initial pH (9-10), and inoculum size (2-4% (v/v)). An overall 4-fold increase in AgNPs biosynthesis was obtained as compared with that of unoptimized conditions. The biosynthesized silver nanoparticles were characterized using UV-VIS spectrophotometer and Fourier transform infrared spectroscopy analysis, in addition to antimicrobial properties. The biosynthesized AgNPs significantly inhibited the growth of medically important pathogenic gram-positive (Staphylococcus aureus) and gram-negative bacteria (Pseudomonas aeruginosa) and yeast (Candida albicans).
Park, Si-Hyung;Oh, Sei-Ryang;Jung, Keun-Young;Lee, Im-Seon;Ahn, Kyung-Seop;Kim, Jae-Gil;Lee, Jung-Joon;Lee, Hyeong-Kyu
Archives of Pharmacal Research
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제22권4호
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pp.428-431
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1999
Seven known oleanolic acid glycosides (1-7) were isolated form the MeOH extract of Tiarella polyphylla. The structures were identified to be 3-O-($\beta$-glucopyranosyl) oleanolic acid (1), 3-O-[$\beta$-D-glucopyranosyl-(1 3)-$\beta$-D-glucopyranosyl] oleanolic acid (2), 3-O-D-[$\beta$-D-glucopyranosyl-(1 2)-$\beta$-D-glycopyranosyl] oleanolic acid (3), 3-O-[$\beta$-D-glucopyranosyl-(1 3)-$\beta$-D-glucopyranosyl] oleanolic acid 28-O-$\beta$D-glucopyranosyl ester (4), 3-O-[$\beta$-D-glucopyranosyl-(1 2)-$\beta$-D-glucopyranosyl] oleanolic acid 28-O-$\beta$-D-glucopyranosyl ester (5), 3-O-[a-L-rahmnopyranosyl-(1 3)-$\beta$-D-glucururonopyranosyl] oleanolic acid (6), and 3-O-[$\alpha$-L-rhamnopyranosyl-(1 3)-$\alpha$-D-glucuronopyranosyl] oleanolic acid 28-O-$\alpha$-D-glucopyranosyl ester (7) on the basis of physicochemical and spectral data. These triterpene glycosides were tested for the anti-complement activity and hemolytic activity. Bisdesmosidic saponins, 4, 5, and 7, showed anti-complement activity; in contrast, monodesmosidic saponins, 1-3, and 6, showed direct hemolytic activity. Methyl esterified monodesmosidic saponins showed anti-complement activity at a low concentration and hemolytic activity at a high concentration.
Mutants having altered levels and/or types of EPS in exopolysaccharide biosynthesis were isolated after NTG mutagenesis of Zoogloea ramigera 115SLR. Mutant candidates were classfied with five groups based on the observed characteristics for EPS biosynthesis pattern. The recombinant plasmids pLEX3BS and pLEX3BM were constructed from pEX3B which was previously isolated from genomic DNA of Z. ramigera 115SLR. Plasmid pLEX3BM with a 7.8 kb insert DNA contains an additional 1.8kb DNA fragment which is not present in pLEX3BS containing 13 kb insert DNA. Plasmid pLEX3BM was able to complement the mutation responsible for the changes in morphology of Z. ramigera 115SLR. However, the complementation of EPS negative mutant strains was not successful with pLEX3BM. Plasmid pLEX3BS on the other hand complemented the mutation responsible for the loss of EPS biosynthesis, resulting in the restoration of Z. ramigera 115SLR phenotype. But this plasmid was not able to complement the morphological mutant strain, Z. ramigera 115SLR.
Fumonisins are a group of mycotoxins produced by a pathogen Fusarium verticillioides in infected maize kernels. Consumption of fumonisin-contaminated maize has been implicated in a number of animal and human illnesses, including esophageal cancer and neural tube defects. Since the initial discovery, chemistry, toxicology, and biology of fumonisins as well as the maize-Fusarium pathosystem have been extensively studied. Furthermore, in the past decade, significant progress has been made in terms of understanding the molecular biology of toxin biosynthetic genes. However, there is a critical gap in our understanding of the regulatory mechanisms involved in fumonisin biosynthesis. Here, we review and discuss our current knowledge about the molecular mechanisms by which fumonisin biosynthesis is regulated in F. verticillioides. In addition, we discuss the impact of maize kernel environment, particularly sugar and lipid molecules, on fumonisin biosynthesis.
Nikkomycins are a group of peptidyl nucleoside antibiotics with potent fungicidal, insecticidal, and acaricidal activities. sanN was cloned from the partial genomic library of Streptomyces ansochromogenes 7100. Gene disruption and complementation analysis demonstrated that sanN is essential for nikkomycin biosynthesis in S. ansochromogenes. Primer extension assay indicated that sanN is transcribed from two promoters (sanN-P1 and sanN-P2), and sanN-P2 plays a more important role in nikkomycin biosynthesis. Purified recombinant SanN acts as a dehydrogenase to convert benzoate-CoA to benzaldehyde in a random-order mechanism in vitro, with respective $K_{cat}/K_m$$ values of $3.8mM^{-1}s^{-1}\;and\;12.0mM^{-1}s^{-1}$ toward benzoate-CoA and NADH, suggesting that SanN catalyzes the formation of picolinaldehyde during biosynthesis of nikkomycin X and Z components in the wild-type stain. These data would facilitate us to understand the biosynthetic pathway of nikkomycins and to consider the combinatorial synthesis of novel antibiotic derivatives.
The enzymatic characteristics of Alcaligenes latus were investigated by measuring the variations of various enzyme activities related to biosynthesis and degradation of poly-${\beta}$-hydroxybutyrate (PHB) during cultivation. All PHB biosynthetic enzymes, ${\beta}$-ketothiolase, acetoacetyl-CoA reductase, and PHB synthase, were activated gradually at the PHB accumulation stage, and the PHB synthase showed the highest value among three enzymes. This indicates that the rate of PHB biosynthesis is mainly controlled by either ${\beta}$-ketothiolase or acetoacetyl-CoA reductase rather than PHB synthase. The enzymatic activities related to the degradation of PHB were also measured, and the degradation of PHB was controlled by the activity of PHB depolymerase. The effect of supplements of metabolic regulators, citrate and tyrosine, was also investigated, and the activity of glucose-6-phosphate dehydrogenase was increased by metabolic regulators, especially by tyrosine. The activities of ${\beta}$-ketothiolase and acetoacetyl-CoA reductase were also activated by citrate and tyrosine, while the activity of PHB depolymerase was depressed. The increased rate and yield of PHB biosynthesis by metabolic regulators may be due to the increment of acetyl-CoA concentration either by the repression of the TCA cycle by citrate through product inhibition or by the activation of sucrose metabolism by the supplemented tyrosine.
In the purification of elaiophylin from a culture of Streptomyces hygroscopicus MCY -846, mono- and di-methyl-elaiophylin were obtained through a O-methylation of the hemiketal hydroxy group of elaiophylin. All the three elaiophylins showed cytotoxicity against several human tumor cell lines and murine cell lines. Elaiophylin and monomethyl-elaiophylin also showed antimicrobial activities against gram-positive bacteria and potent inhibitory effects on the activation of B cells by lipopolysaccharide as well as on the proliferation of mouse splenic lymphocytes stimulated by mitogens but dimethyl-elaiophylin did not. This result indicates that elaiophylin and monomethyl-elaiophylin would be strong immunosuppressants. Furthermore this result revealed an interesting structure-activity relationship suggesting that the lack of symmetry and/or the free OH group at C-11 of elaiophylin might be important in conferring biological activities.
Melanin 생합성에 key enzyme인 tyrosinase 억제가 melanin색소 억제에 주된 요인으로 알려져 있지만, 생합성기작에는 여러 다른 요인들이 작용하기 때문에 일차적인 탐색 단계에서 tyrosinase 저해 활성뿐만 아니라 S. bikiniensis의 melanin생합성 억제 연구를 병행하여 천연물을 탐색하였다. 그 중 선택된 궁궁이 (Angelica poiymorpha MAXIM)에서 3가지 물질을 분리하였으며, 3가지 물질 모두가 100$\mu\textrm{g}$/$m\ell$ 이상 농도에서도 tyrosinase억제 활성이 나타나지 않는 반면, S. bikiniensis melanin 생합성 저해 효과를 보여 주었다. 동일 농도에서 S. bikinieffsis의 생장에는 영향을 미치지 않았다.
Kim Sang-Kuk;Lee Sang-Chul;Kim Kil-Ung;Choo Yeon Sik;Kim Hak Yoon;Lee In-Jung
한국작물학회지
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제49권4호
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pp.300-304
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2004
Gibberellic acid did not affect ethylene production, whereas gibberellin biosynthesis inhibitors triggered ethylene production in dormant tubers. Gibberellic acid did not induce sprouting of dormant tubers, however, treatment of gibberellin biosynthesis retardants enhanced sprouting rates. Sprouting rate in ancymidol-treated tubers was highest among gibberellin biosynthesis retardants. Sprouting rate of tubers treated with ancymidol increased to $91.4\%$. Batatasin-III content in $GA_3$ treated tuber was increased in the highest concentration $(30{\mu}g\;I^{-1})$. Tubers treated with mepiquat chloride, Batatasin-I was increased steadily, but contents of Batatasin-III and V showed dramatic decrease at the $ 1,000{\mu}g\;I^{-1})$ concentration. This infers that gibberellin biosynthesis retardants play key roles in promoting breaking dormancy on dormant tubers of Chinese yam.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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