Background: Due to the unavailability of an effective vaccine or antiviral drug against the African swine fever virus (ASFV), rapid diagnosis methods are needed to prevent highly contagious African swine fever. Objectives: The objective of this study was to establish the ladder-shape melting temperature isothermal amplification (LMTIA) assay for the detection of ASFV. Methods: LMTIA primers were designed with the p72 gene of ASFV as the target, and plasmid pUC57 was used to clone the gene. The LMTIA reaction system was optimized with the plasmid as the positive control, and the performance of the LMTIA assay was compared with that of the commercial real-time polymerase chain reaction (PCR) kit in terms of sensitivity and detection rate using 200 serum samples. Results: Our results showed that the LMTIA assay could detect the 104 dilution of DNA extracted from the positive reference serum sample, which was the same as that of the commercial real-time PCR kit. The coincidence rate between the two assays was 100%. Conclusions: The LMTIA assay had high sensitivity, good detection, and simple operation. Thus, it is suitable for facilitating preliminary and cost-effective surveillance for the prevention and control of ASFV.
일차아민과 반응하여 형광활성화합물을 형성하는 fluorescamine을 이용하여 어떤 시료중에 포함된 극미량의 trypsin inhibitor의 함량 또는 그 활성도를 측정하는 형광방법을 기술하였다. 세 가지 두류종실 즉 대두, 녹두 및 팥의 상대적 antitryptic activity 측정을 예로들어 본방법의 분석화학 우적수성을 여러 각도에서 검토하였던바, 효소반응속도론적 접근으로 이루어진 본방법은 동일한 접근으로 이루어진 기존의 흡광광도방법과 비교하여 측정감도는 대략 100배이상이였으며 casein과 같은 천연기질을 사용하는 경우에서는 실험과정이 보다 단순하여 빠른 방법으로 판정되었다.
NADPH-cytochrome P450 reductase (CPR) transfers electrons from NADPH to cytochrome P450, and catalyzes the one-electron reduction of many drugs and foreign compounds. Various forms of spectrophotometric titration have been performed to investigate the electron-accepting properties of CPR, particularly, to examine its ability to reduce cytochrome c and ferricyanide. In this study, the reduction of 1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl (DPPH) by CPR was assessed as a means of monitoring CPR activity. The principle advantage of DPPH is that its reduction can be assayed directly in the reaction medium by a continuous spectrophotometry. Thus, electrons released from NADPH by CPR were transferred to DPPH, and DPPH reduction was then followed spectrophotometrically by measuring $A_{520}$ reduction. Optimal assay concentrations of DPPH, CPR, potassium phosphate buffer, and NADPH were first established. DPPH reduction activity was found to depend upon the strength of the buffer used, which was optimal at 100 mM potassium phosphate and pH 7.6. The extinction coefficient of DPPH was $4.09\;mM^{-1}\;cm^{-1}$. DPPH reduction followed classical Michaelis-Menten kinetics ($K_m\;=\;28\;{\mu}M$, $K_{cat}\;=\;1690\;min^{-1}$). This method uses readily available materials, and has the additional advantages of being rapid and inexpensive.
A novel method is developed to yield virus titers in 10 h, is easy to .perform using 96-well plates, and applicable to both any Autographa californica nucleopolyhyderovirus (AcNPV) and Bombyx mori nucleopolyhedrovirus (BmNPV)-based recombinant baculovirus. This assay uses an antibody to a DNA-binding protein to detect the infected cells via immune-staining. The titer is determined by counting foci produced due to infection of virus under a fluorescent microscopy. The required incubation period was shortened considerably because infected cells expressed viral antigens at the post infection time of 4 h. Therefore, 10 hours were enough to estimate the virus titer including virus infection time, insect cell culture, and estimation of virus titer.
A simple method for studying the lectin-like interactions between Helicobacter pylori and cultured human epithelial cell lines was developed using an enzyme-linked, biotin-streptavidin bacterial-adhesion assay. The present study suggests that this method is suitable for evaluating the participation of lectin interactions in the adhesion of H. pylori to cultured HeLa S3 and Kato III cells, both fixed and glycosidase-treated cells, as well as assessing glycoconjugated binding inhibition studies. The time-course and dose-dependent kinetics of the biotin-labeled H. pylori adhesion th the formaldehyde-fixed Hela S3 and Kato III cell lines exhibited saturation. In addition, the binding of the biotin-labeled H. pylori to the formaldehyde-fixed cultured cells was partially blocked by pre-incubation with glycoconjugates and polyclonal antibodies against a heparan sulfate binding protein from H. pylori.
The Glycoprotein D (gD) gene of the HSV-1 strain F was cloned, sequenced, recombinated into the HcNPV (Hyphantria cunea nuclear polyhedrosis virus) expression vector and expressed in insect cells. The gD gene was located in the 6.43 kb BamHI fragment of the strainF. The open reading frame (ORF) of the gD gene was 1,185 by and codes 394 amino acid residues. Recombinant baculoviruses, GD-HcNPVs, expressing the gD protein were constructed. Spodoptera frugiperda cells, infected with the recombinant virus, synthesized a matured gX-gD fusion protein with an approximate molecular weight of 54 kDa and secreted the gD proteins into the culture media by an immunoprecipitation assay The fusion gD protein was localized on the membrane of the insect cells, seen by using an immunofluorescence assay The deduced amino acid sequence presents additional characteristics compatible with the structure of a viral glycoprotein: signal peptide, putative glycosylation sites and a long C-terminal transmembrane sequence. These results indicate the utility of the HcNPV-insect cell system for producing and characterizing eukaryotic proteins.
Kim, Gi-Young;Morgan, Mark;Ess, Daniel;Hahm, Byoung-Kwon;Kothapalli, Aparna;Bhunia, Arun
Food Science and Biotechnology
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제16권3호
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pp.337-342
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2007
Conventional methods for pathogen detection and identification are labor-intensive and take days to complete. Biosensors have shown great potential for the rapid detection of foodborne pathogens. Fiber-optic biosensors have been used to rapidly detect pathogens because they can be very sensitive and are simple to operate. However, many fiber-optic biosensors rely on manual sensor handling and the sandwich assay, which require more effort and are less sensitive. To increase the simplicity of operation and detection sensitivity, a binding inhibition assay method for detecting Listeria monocytogenes in food samples was developed using an automated, fiber-optic-based immunosensor: RAPTOR (Research International, Monroe, WA, USA). For the assay, fiber-optic biosensors were developed by the immobilization of Listeria antibodies on polystyrene fiber waveguides through a biotin-avidin reaction. Developed fiber-optic biosensors were incorporated into the RAPTOR to evaluate the detection of L. monocytogenes in frankfurter samples. The binding inhibition method combined with RAPTOR was sensitive enough to detect L. monocytogenes ($5.4{\times}10^7\;CFU/mL$) in a frankfurter sample.
Screening microorganisms that can produce glucan hydrolases for industrial, environmental, and biomedical applications is important. Herein, we describe a novel approach to perform glucan hydrolase screening-based on analysis of matrix-assisted laser desorption/ionization mass spectrometry (MALDI-MS) spectra-which involves degradation of the oligo- and polysaccharides. As a proof-of-concept study, glucan hydrolases that could break down glucans made of several glucose units were used to demonstrate the MALDI-MS-based enzyme assay. First, the enzyme activities of ${\alpha}$-amylase and cellulase on a mixture of glucan oligosaccharides were successfully discriminated, where changes of the MALDI-MS profiles directly reflected the glucan hydrolase activities. Next, we validated that this MALDI-MS-based enzyme assay could be applied to glucan polysaccharides (i.e., pullulan, lichenan, and schizophyllan). Finally, the bacterial glucan hydrolase activities were screened on 96-well plate-based platforms, using cell lysates or samples of secreted enzyme. Our results demonstrated that the MALDI-MS-based enzyme assay system would be useful for investigating bacterial glucoside hydrolases in a high-throughput manner.
세포배양 유래 생물의약품 생산 공정에서 다양한 바이러스가 오염된 사례가 있기 때문에 바이러스 안전성 검증이 필수적이다. MVM은 동물 세포주와 동물 세포 배양 공정에 오염되는 대표적인 바이러스이다. 세포배양 유래 생물의약품의 MVM 안전성을 확보하기 위해, 세포주, 원료물질, 제조공정, 완제품에서 MVM을 정량적으로 검출하고, 제조공정에서 MVM 제거 검증을 위한 시험법으로 활용이 가능한 real-time PCR 시험법을 확립하였다. MVM에 특이적인 primer를 선별하였으며, 형광염료 SYBR Green I을 사용하여 MVM DNA 정량 검출 시험법을 최적화하였다. 세포배양 법에 의한 감염역가와 비교한 결과 real-time PCR 민감도는 $6{\times}10^{-2}TCID_{50}/mL$이었다. 확립된 시험법의 신뢰성(reliability)을 보증하기 위해 시험법 검증을 실시한 결과 특이성(specificity)과 재현성(reproducibility)이 우수함을 확인하였다. 확립된 real-time PCR을 생물의약품 제조공정 검증에 적용할 수 있는지 확인하기 위하여 인위적으로 MVM을 오염시킨 CHO 세포에서 MVM검출 시험을 실시한 결과 MVM을 감염시킨 CHO 세포와 세포배양 상청액에서 MVM을 정량적으로 검출할 수 있었다. 또한 바이러스 필터 공정에서 MVM제거 효과를 감염역가 시험법과 비교 검증한 결과 더 높은 민감도로 빠른 시간에 동일한 결과를 얻을 수 있었다. 위와 같은 결과에서 확립된 MVM real-time PCR시험법은 생물의약품 안전성 보증을 위한 세포주 검증, 생물의약품 생산 공정 검증, 바이러스 제거 공정 검증 등에서 감염역가 시험법을 대신할 수 있는 신속하고, 특이성과 민감성이 우수한 시험법임을 확인하였다.
Yadav, Dil Raj;Kim, Sang Woo;Adhikari, Mahesh;Babu, Anam Giridhar;Um, Yong Hyun;Gim, Eun Bi;Yang, Jae Seok;Lee, Hyug Goo;Lee, Youn Su
한국균학회소식:학술대회논문집
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한국균학회 2014년도 추계학술대회 및 정기총회
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pp.49-49
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2014
In order to find indigenous beneficial fungal species from crop field soils of Nigeria, 23 soil samples were collected from various places of Nigeria in June, 2013 and fungi were isolated through serial dilution technique. Isolated fungi were purified and differentiated according to their morphological and microscopic characteristics. In total, 38 different representative isolates were recovered and the genomic DNA of each isolates was extracted using QIAGEN$^{(R)}$ Plasmid Mini Kit (QIAGEN Sciences, USA) and the identification of fungi was carried out by sequence analysis of internal transcribed spacer (ITS) region of the 18S ribosomal DNA (18S rDNA). Recovered isolates belonged to 9 fungal genera comprising Fusarium, Aspergillus, Chaetomium, Coniothyrium, Dipodascaceae, Myrothecium, Neosartorya, Penicillium and Trichoderma. Aspergillus spp., Penicillium spp. and Trichoderma spp. were the most dominant taxa in this study. The antagonistic potentiality of species belonged to Trichoderma against 10 phytopathogenic fungi (F. oxysporum, C. gloesporoides, P. cytrophthora, A. alternata, A. solani, S. rolfsii, F. solani, R. solani, S. sclerotiorum and P. nicotiana) was assessed in vitro using dual culture assay. The dual culture assay results showed varied degree of antagonism against the tested phytopathogens. The potential Trichoderma spp. will be further evaluated for their antagonistic and plant growth promotion potentiality under in vivo conditions.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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