Cyt2Aa2 is a mosquito larvicidal and cytolytic toxin produced by Bacillus thuringiensis subsp. darmstadiensis. The toxin becomes inactive when isoleucine at position 150 was replaced by alanine. To investigate the functional role of this position, Ile150 was substituted with Leu, Phe, Glu and Lys. All mutant proteins were produced at high level, solubilized in carbonate buffer and yielded protease activated product similar to those of the wild type. Intrinsic fluorescence spectra analysis suggested that these mutants retain similar folding to the wild type. However, mosquito larvicidal and hemolytic activities dramatically decreased for the I150K and were completely abolished for I150A and I150F mutants. Membrane binding and oligomerization assays demonstrated that only I150E and I150L could bind and form oligomers on lipid membrane similar to that of the wild type. Our results suggest that amino acid at position 150 plays an important role during membrane binding and oligomerization of Cyt2Aa2 toxin.
Bacillus cereus BS229 was identified as a bacteriocin producer with a bactericidal activity against Bacillus thuringiensis subsp. Thomsoni BR-40. Bacillus cereus BS229 and cerein BS229, named tentatively as the bacteriocin produced by Bacillus cereus BS229, showed a narrow spectrum of actibity against Gram-positive and Gram-negative bacteria, along with yeast and molds. Production of cerein BS229 in a 5-1 fermenter followed typical kinetics of primary metabolite synthesis. The antibacterial activity of cerein BS229 on sensitive indicator cells disappeared completely by ${\alpha}-chmotrypsin$ or proteinase K, which indicates its proteinaceous nature. Cerein BS229 seemed to be very stable throughout the pH range of 2.0 of 9.0 and it was relatively heat labile, despite the fact that bacteriocin activity was still detected after being boied for 30min. Cerein BS229 actibity has been changed with some of the organic solvents such as toluene, ethanol, and chloroform. Direct detection of cerein BS229 actibity on SDS-PAGE suggested that it had an apparent molecular mass of about 8.2 kDa.
Kim, Geun-Seob;Heo, Hye-Jung;Park, Jung-A;Yu, Yong-Suk;Hahm, Eun-Hye;Kang, Sung-Young;Kwon, Ki-Myeon;Lee, Keon-Hyung;Kim, Yong-Gyun
Korean journal of applied entomology
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v.47
no.4
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pp.435-445
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2008
Due to internal feeding behavior, the oriental tobacco budworm, Helicoverpa assulta ($Guen\acute{e}e$), infesting hot pepper has been regarded to be effectively controlled by targeting egg and neonate larval stages just before entering the fruits. This study aimed to develop an efficient biological control method focusing on these susceptible stages of H. assulta. An egg parasitoid wasp, Trichogramma evanescens Westwood, was confirmed to parasitize the eggs of H. assulta. A mixture of Gram-positive soil bacterium, Bacillus thuringiensis subsp. kurstaki, and Gram-negative entomopathogenic bacterium, Xenorhabdus nematophila ANU101, could effectively kill neonate larvae of H. assulta. A sex pheromone trap monitored the occurrence of field H. assulta adults. The microbial insecticide mixture was proved to give no detrimental effects on immature development and adult survival of the wasp by both feeding and contact toxicity tests. A combined treatment of egg parasitoid and microbial pesticide was applied to hot pepper fields infested by H. assulta. The mixture treatment of both biological control agents significantly decreased the fruit damage, which was comparable to the chemical insecticide treatment, though either single biological control agent did not show any significant control efficacy. This study also provides morphological and genetic characters of T. evanescens.
Entomopathogenic bacteria (Xenorhabdus nematophila, X. sp. and Photorhabdus temperata subsp. temperata) isolated from entomopathogenic nematodes express potent insecticidal activity in insect hemocoel. They are also known to suppress insect immune mediation by inhibiting phospholipase $A_2$, leading to host immunosuppression. This study analyzed effects of their cultured broths on inhibiting insect immunosuppression. For this, we removed all bacterial cells using $0.2\;{\mu}m$ pore sized membrane from the bacteria-cultured broth. All three sterilized cultured media, in dose-dependent manners, significantly inhibited hemocyte-spreading behavior of 5th instar larvae of Spodoptera exigua. However, they showed differential inhibitory activities among different bacterial species, in which X. nematophila showed the most potent inhibitory activity. This immunosuppressive effect was applied to increase the pathogenicity of Bacillus thuringiensis (Bt). All three bacterial cultured broths including bacterial cells significantly potentiated Bt pathogenicity against young S. exigua larvae when each of them was orally administered in a mixture of low dose of Bt. Finally, we tested the effect of oral administration of the cultured media containing the immunosuppressive compound(s) secreted by the bacteria. The membrane-sterilized cultured broths were mixed with the low dose of Bt and then orally administered to the young S. exigua. Only the cultured medium of X. nematophila showed increase of Bt pathogenicity. These results indicated that the; cultured media of the three bacteria possessed immunosuppressive factor(s), which may act to potentiate Bt toxicity to young S. exigua larvae.
The study was conducted to isolate and identify insecticidal bacteria for biological control of larvae of mushroom fly, Lycoriella mali, which is one of serious pests to oyster mushrooms during its cultivation period. Among eight bacteria isolated from the soil in the oyster mushroom beds and the dead body of L. mali, two bacteria, Bti-D and Bti-U showed more toxicity with mortality rate than other six-bacteria isolates. The two bacteria showed more toxicity in three instar of the period of development of the mushroom fly than in other instar. Symptoms of the larvae of L. mali infected by the two bacteria developed as follows: at the early infection, the front middle gut changed color to light brown, the middle gut to brown, whole body to black brown, and eventually, the fly died. For the identification of these isolates, cultural and biochemical characteristics by Bergey's manual and Biolog system, cell morphology by TEM, endospore and endotoxin by phase-contrast microscope, and test using 33H antisera were examined. According to the results, these two isolates, Bti-D and Bti-U were identified as Bacillus thuringiensis subsp. israelensis respectively.
The expression in Escherichia coli of a cloned insecticidal protein (ICP) gene from Bacillus thuringiensis var. kurstaki HD1 in pHLN1-80 (+) and pHLN2-80(-) plasmids was investigated through deletions in promoters, transcription start point, and termination region. Six recombinant plasmids were constructed in an attempt to analyze the overexpression of the ICP in relations to its gene structure. The amounts of ICP produced from the recombinants were measured by SDS-PAGE and confirmed by Western blot analysis. One clone was not overexpressed which having only -80 bp (contained BtI promoter) part of the ICP gene promoter (without Plac promoter), the right-oriented ICP gene and the termination region. Removal of 350 bp from upstream region of the Plac of the clone pHLN2-80 (-) resulted in overexpression of the ICP. One clone was not overexpressed in which the clone consisted of -72 bp part of the ICP promoter without the transcription start point and the transcriptional termination region, and having the right-oriented ICP gene sequence. One clone consisting of the inverted ICP gene sequence, the -72 bp ICP gene promoter, and without the termination region caused overexpression. One clone which consisted of the inverted ICP gene, the -72 bp ICP gene promoter and the termination sequence was overexpressed. These results indicated that the Plac promoter, transcription termination region, the inverted ICP gene insertion, and the -80 bp or -72 bp part of the ICP gene promoters were concerned in the overexpression of the ICP gene in the recombinant plasmid, and also the overexpression mechanism might result from the disruption of the transcription-suppressing regions in the promoter regions.
Six protein-degrading bacteria were isolated from digestive organ of Harmonia axyridis. These isolates were categorized as Staphylococcus sciuri subsp. sciuri (3 strains), Bacillus subtilis (1 strain), and Bacillus thuringiensis (2 strains) by 16S rRNA gene sequence analysis. The Staphylococcus sp. CB2-3 was selected as a protease-producing bacterium which showed the highest protease activity of 58.5 U/ml at the pH 5.0 medium. The optimal pH and temperature of protease activity were pH 5.0 and $40^{\circ}C$, respectively. This acid protease had a relatively high stability of 80% between $30-50^{\circ}C$ at broad temperature range. The opimal medium compositions of carbon, nitrogen and mineral source for cell growth and protease activity were investigated. When sorbitol (0.5%) was used as carbon source, enzyme activity was increased about 2 times than that of the basal medium. When skim milk (0.5%) was used as nitrogen source, activity was increased about 2.5 times than that of the control. Cell growth and enzyme activity were increased by mineral source such as KCl, $K_2HPO_4$, $FeSO_4$, but was completely inhibited by divalent ions such as $Co^{2+}$, $Zn^{2+}$, $Mn^{2+}$, $Cu^{2+}$.
Journal of The Korean Society of Grassland and Forage Science
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v.17
no.1
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pp.11-18
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1997
This study was to provide the basic data in improving protoplast formation and regeneration of antagonistic bacteria against phytopathogenic fungi and pest. The antagonistic rhizobacterium, BS 101, against Rhizoctonia solrmi and Fusurium oxyspomm was isolated and identified as Bacillus subtilis. Another bacterium for protoplast formation and regeneration was B. thuringiensis subsp. kurstcJtiHD-l (BT 37669) which have insectcidal toxin in the orders Coleopteria, Dipteria etc.. Auxotrophic mutants, BS 1013 and BT 69, were isolated by treating with NTG 300 ug/ml for 40 min. at $37^{\circ}C$, and with NTG 300 ug/ml for 30 min. at $37^{\circ}C$, respectively. The BS 1013 and BT 69 were converted to protoplas by treating with lysozyme 300 ugh1 for 30 min. at 37C, and lysozyme 9 mglml for 60 min. at $37^{\circ}C$, respectively. The fequencies of the protoplast formation of BS 1013 and BT 69 were 90.00 and 92.83% respectively, after 1~2 day at $37^{\circ}C$. The regeneration kequencies of the protoplasts BS 1013 and B T 69 were 0.52 and 0.10%, respectively, after 4~6 days at $37^{\circ}C$.
Hyun, Jeongwoo;Abigail, Maria;Choo, Jin Woo;Ryu, Jin;Kim, Hyung Kwoun
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.26
no.10
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pp.1708-1716
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2016
Glucose dehydrogenase (GDH) is an oxidoreductase enzyme and is used as a biocatalyst to regenerate NAD(P)H in reductase-mediated chiral synthesis reactions. In this study, the glucose 1-dehydrogenase B gene (gdhB) was cloned from Bacillus thuringiensis subsp. kurstaki, and wild-type (GDH-BTWT) and His-tagged (GDH-BTN-His, GDH-BTC-His) enzymes were produced in Escherichia coli BL21 (DE3). All enzymes were produced in the soluble forms from E. coli. GDH-BTWT and GDH-BTN-His showed high specific enzymatic activities of 6.6 U/mg and 5.5 U/mg, respectively, whereas GDH-BTC-His showed a very low specific enzymatic activity of 0.020 U/mg. These results suggest that the intact C-terminal carboxyl group is important for GDH-BT activity. GDH-BTWT was stable up to 65℃, whereas GDH-BTN-His and GDH-BTC-His were stable up to 45℃. Gel permeation chromatography showed that GDH-BTWT is a dimer, whereas GDH-BTN-His and GDH-BTC-His are monomeric. These results suggest that the intact N- and C-termini are required for GDH-BT to maintain thermostability and to form its dimer structure. The homology model of the GDH-BTWT single subunit was constructed based on the crystal structure of Bacillus megaterium GDH (PDB ID 3AY6), showing that GDH-BTWT has a Rossmann fold structure with its N- and C-termini located on the subunit surface, which suggests that His-tagging affected the native dimer structure. GDH-BTWT and GDH-BTN-His regenerated NADPH in a yeast reductase-mediated chiral synthesis reaction, suggesting that these enzymes can be used as catalysts in fine-chemical and pharmaceutical industries.
Cyt2Aa2 is a mosquito-larvicidal protein produced as a 29 kDa crystalline protoxin from Bacillus thuringiensis subsp. darmstadiensis. To become an active toxin, proteolytic processing is required to remove amino acids from its N- and C-termini. This study aims to investigate the functional role of amino acid residues on the N-terminal ${\beta}1$ and C-terminal ${\alpha}F$ of Cyt2Aa2 protoxin. Mutant protoxins were constructed, characterized and compared to the wild type Cyt2Aa2. Protein expression data and SDS-PAGE analysis revealed that substitution at leucine-33 (L33) of ${\beta}1$ has a critical effect on dimer formation and structural stability against proteases. In addition, amino acids N230 and I233-F237 around the C-terminus ${\alpha}F$ demonstrated a crucial role in protecting the protoxin from proteolytic digestion. These results suggested that ${\beta}1$ and ${\alpha}F$ on the Nand C-terminal ends of Cyt2Aa2 protoxin play an important role in the molecular interaction and in maintaining the structural stability of the protoxin.
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